CDK依赖的Hsp70磷酸化控制G1期周期蛋白丰度与细胞周期进程

CDK-dependent Hsp70 Phosphorylation controls G1 cyclin abundance and cell-cycle progression.

作者信息Andrew W Truman, Kolbrun Kristjansdottir, Donald Wolfgeher, Naushaba Hasin, Sigrun Polier, Hong Zhang, Sarah Perrett, Chrisostomos Prodromou, Gary W Jones, Stephen J Kron
PMID23217712
期刊Cell
发布时间2012-12-07
DOI10.1016/j.cell.2012.10.051

实验完整度

高

包含酵母遗传突变体、体外激酶实验、蛋白质组学、哺乳动物细胞过表达等多层级证据,并有功能与机制验证。

主要模型

酿酒酵母ssa1-4Δ菌株表达Ssa1 WT/T36A/T36E HEK293T细胞过表达HaloTag-Hsc70 WT/T38A/T38E

重点核对

酵母菌株:ssa1-4Δ背景,以URA3质粒补偿,经5-FOA置换后仅表达Ssa1 WT、T36A或T36E αF处理:20 μM αF处理2.5小时(用于蛋白质组学) 氮饥饿处理:5小时(用于Pho85相关实验) Cdk1-as1抑制:15 μg/ml nocodazole ± 10 μM 1-NM-PP1处理3小时 哺乳动物细胞转染:HaloTag-Hsc70 WT/T38A/T38E与HA-Cyclin D1 T286A共转染,72小时后检测

摘要

在芽殖酵母中,Hsp70分子伴侣Ssa1–4的基本功能通过表达水平、亚型特异性和共伴侣活性进行调控。我们发现,在Hsp70蛋白中保守的CDK共识位点内,Ssa1 T36的磷酸化改变了共伴侣和客户蛋白的相互作用,提示了一种新的调控范式。T36磷酸化触发Ydj1的置换,使Ssa1能够结合G1期周期蛋白Cln3并促进其降解。在氮饥饿或信息素刺激下,应激CDK Pho85磷酸化T36,使Cln3不稳定从而延迟S期起始。反过来,有丝分裂CDK Cdk1磷酸化T36以阻止Cln3在G2/M期积累。从酵母到人可能广泛保守,Hsc70 T38的CDK依赖磷酸化同样调控Cyclin D1的结合和稳定性。这些结果确立了Hsp70分子伴侣作为信号转导子介导G1期周期蛋白丰度和活性生长控制的积极作用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Hsp70分子伴侣是否通过CDK磷酸化调控G1期周期蛋白的丰度和细胞周期进程?
核心机制
CDK(Cdk1和Pho85)磷酸化Ssa1 T36,触发Ydj1解离,促进Ssa1与Cln3结合,导致Cln3降解,从而抑制G1/S转录并延迟S期起始。
主要证据
酵母遗传学显示T36E突变导致Cln3蛋白减少、G1/S延迟;体外激酶实验证实Cdk1和Pho85磷酸化Ssa1 T36;蛋白质组学揭示T36磷酸化改变Ssa1相互作用组;哺乳动物细胞中Hsc70 T38磷酸化调控Cyclin D1结合和稳定性。
研究意义
确立了Hsp70分子伴侣作为信号转导子整合环境信号与细胞周期进程,调控G1期周期蛋白丰度;提示Hsc70 T38磷酸化可能作为癌症治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建Ssa1 T36磷酸化位点突变酵母菌株

探究T36磷酸化对Ssa1功能和细胞周期的影响。

在ssa1-4Δ背景下表达Ssa1 WT、T36A(非磷酸化模拟)或T36E(磷酸化模拟)作为唯一Ssa蛋白,通过5-FOA置换URA3质粒。

2

评估T36突变对细胞生长和细胞周期的影响

验证T36磷酸化是否影响细胞增殖和G1/S进程。

通过系列稀释点板实验检测温度敏感性;流式细胞术分析DNA含量和细胞大小;氮饥饿同步释放实验检测G1/S进程;αF halo实验检测信息素 arrest。

3

分析T36磷酸化对Ssa1相互作用组的影响

鉴定T36磷酸化调控的Ssa1相互作用蛋白。

αF处理表达His6-Ssa1 WT或T36A的细胞,纯化相互作用组,进行18O标记和LC-MS/MS定量比较。

4

验证T36磷酸化对Ydj1和Cln3结合的影响

确定T36磷酸化是否调控Ydj1解离和Cln3结合。

Pull-down实验检测Ydj1和Sis1共沉淀;使用稳定化Cln3(缺失PEST域)检测Ssa1-Cln3结合;Ydj1缺失背景下检测Cln3结合。

5

鉴定磷酸化Ssa1 T36的CDK

确定Cdk1和Pho85是否磷酸化Ssa1 T36。

体外激酶实验:从nocodazole、氮饥饿或αF处理的细胞中纯化HA-Cdk1或HA-Pho85,与重组His6-Ssa1孵育;体内实验:使用Cdk1-as1菌株和1-NM-PP1抑制;pho85Δ突变体分析。

6

验证Pho85和Cln3在T36磷酸化下游的作用

确定Pho85是否通过磷酸化T36调控Cln3降解。

在pho85Δ背景下表达Ssa1 WT、T36A或T36E,检测氮饥饿或αF处理下Cln3水平和Ssa1-Cln3结合;体外激酶实验检测Pho85对Cln3的磷酸化。

7

鉴定Pho85的Pcl周期蛋白伙伴

确定哪些Pcl周期蛋白引导Pho85磷酸化Ssa1。

酵母双杂交实验检测Ssa1-4与Pcl蛋白的相互作用;共沉淀实验检测Clg1/Pcl2与Ssa1的结合;clg1Δ pcl2Δ背景下检测Pho85-Ssa1结合。

8

验证哺乳动物Hsc70 T38磷酸化的保守功能

检验CDK磷酸化Hsc70是否调控Cyclin D1。

在HEK293T细胞中转染HaloTag-Hsc70 WT、T38A或T38E,检测T38磷酸化、Cyclin D1结合和稳定性、Rb磷酸化及Cyclin A1启动子活性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
His标签分离磁珠Invitrogen--
多克隆山羊抗Cln3抗体Santa Cruz Biotechnologies--
鸡抗山羊IgG-HRP偶联物Millpore--
Tetra-HIS抗体QIAGEN--
磷酸化苏氨酸-脯氨酸小鼠单克隆抗体Cell Signaling Technologies--
抗小鼠IgG-HRP偶联物GE Healthcare--
抗HaloTag多克隆抗体PromegaG9281
抗兔IgG-HRP偶联物GE Healthcare--
磷酸化Rb (Ser780) 抗体Cell Signaling9307
Restore Western Blot Stripping BufferThermo--
His标签磁珠Invitrogen--
Slide-A-Lyzer透析卡Thermo--
抗HA抗体偶联磁珠Sigma--
JN-3000 plus 弗氏压碎器JNBIO--
Chelating Sepharose FF金属亲和树脂GE--
Superdex 200柱GE--
Shimadzu UV-2501分光光度计Shimadzu--
ITC200微量热仪Microcal--
Thermo LTQ Orbitrap XL质谱仪Thermo--
Dulbecco改良Eagle最低必需培养基Invitrogen--
胎牛血清Invitrogen--
青霉素Invitrogen--
链霉素Invitrogen--
Lipofectamine 2000转染试剂盒Invitrogen--
HaloTag哺乳动物Pull-Down系统Promega--
荧光素酶报告基因构建体GeneCopoeia--
Quickchange定点突变试剂盒Agilent Technologies--
合成α因子肽----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
酵母菌株构建
ssa1-4Δ背景,URA3质粒补偿,经5-FOA置换后仅表达Ssa1 WT、T36A或T36E
阅读提示:Extended Experimental Procedures, Yeast Culture, Strains, and Plasmids;Figure 1C
αF处理
αF浓度20 μM,处理时间2.5小时(蛋白质组学)
阅读提示:Experimental Procedures, Analysis of the Ssa1 Interactome by Mass Spectrometry
氮饥饿处理
氮饥饿时间5小时
阅读提示:Figure 4E, 4G, 5A, 5C, 5D; Extended Experimental Procedures
Cdk1-as1抑制
nocodazole 15 μg/ml,1-NM-PP1 10 μM,处理3小时
阅读提示:Figure 4C; Results
哺乳动物细胞转染
HEK293T细胞,HaloTag-Hsc70 WT/T38A/T38E与HA-Cyclin D1 T286A共转染,72小时后检测
阅读提示:Figure 6A, 6B; Extended Experimental Procedures, Purification of HaloTag-Hsc70 from HEK293T Cells