种系DDX41突变导致无效造血和骨髓增生异常

Germline DDX41 mutations cause ineffective hematopoiesis and myelodysplasia.

作者信息Timothy M Chlon, Emily Stepanchick, Courtney E Hershberger, Noah J Daniels, Kathleen M Hueneman, Ashley Kuenzi Davis, Kwangmin Choi, Yi Zheng, Carmelo Gurnari, Torsten Haferlach, Richard A Padgett, Jaroslaw P Maciejewski, Daniel T Starczynowski
PMID34473945
发布时间2021-11-04
DOI10.1016/j.stem.2021.08.004

实验完整度

高

包含条件敲除与R525H敲入小鼠、骨髓移植、竞争移植、体外HPC集落与细胞周期/凋亡、RNA-seq、HyperTRIBE、CRISPR筛选、核糖体多聚体及患者样本测序

主要模型

Ddx41flox与Ddx41R525H条件敲入小鼠 小鼠MLL-AF9永生化Lin−白血病干/祖细胞(LSPC) 人AML细胞系THP1 MDS/AML患者骨髓样本

重点核对

他莫昔芬诱导:1 mg溶于50 μl玉米油,腹腔注射,连续5天,一周后重复 骨髓移植:尾静脉注射1×10^6 BMNC;竞争移植注射2×10^6 BM细胞(每株1×10^6) 体外Cre诱导:LSPC用1 μM 4-OH-他莫昔芬处理24小时,Lin− BM细胞处理48小时 80:20混合移植:8×10^5 Ddx41f/+;Rosa-Cre-ERT细胞与2×10^5 Ddx41f/KI;Rosa-Cre-ERT细胞 流式检测时间点:他莫昔芬后48或72小时检测Annexin V、EdU、TMRE、HPG

摘要

DDX41突变是成人骨髓增生异常综合征(MDS)中最常见的种系改变。大多数患者携带种系单等位基因移码DDX41突变,随后在其另一个DDX41等位基因上获得体细胞突变,通常为错义突变R525H。携带双等位基因移码和R525H突变的造血祖细胞(HPC)发生细胞周期阻滞和凋亡,导致小鼠骨髓衰竭。在机制上,DDX41对snoRNA加工、核糖体组装和蛋白质合成至关重要。尽管单等位基因DDX41突变在年轻小鼠中不影响造血,但一部分老龄小鼠会发展出MDS特征。在MDS患者骨髓(BM)的非优势造血干细胞克隆中,以低频率观察到DDX41双等位基因突变。嵌合有单等位基因DDX41突变BM细胞和少数双等位基因突变BM细胞的小鼠在更年轻时即出现造血缺陷,提示双等位基因DDX41突变细胞在单等位基因DDX41突变BM背景下具有疾病修饰作用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
DDX41突变如何影响造血干/祖细胞功能,以及单等位与双等位DDX41突变细胞如何共同参与MDS发病。
核心机制
DDX41缺失导致snoRNA加工缺陷,成熟snoRNA减少,rRNA假尿苷化及rRNA加工受损,核糖体组装和蛋白质合成下降,使增殖性造血祖细胞发生细胞周期阻滞和凋亡。
主要证据
条件敲除与R525H敲入小鼠骨髓移植显示双等位突变导致骨髓衰竭,竞争移植显示单等位突变获竞争优势;RNA-seq、HyperTRIBE和qRT-PCR显示snoRNA加工异常;多聚体分析和HPG掺入显示翻译受损;80:20混合移植显示双等位突变小克隆加剧单等位突变骨髓的造血缺陷。
研究意义
研究提出单等位与双等位DDX41突变细胞共存参与DDX41突变患者的造血缺陷,并提示DDX41通过snoRNA加工和核糖体生物发生促进MDS发病。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建DDX41突变小鼠模型并验证等位基因表达

模拟患者种系移码突变与获得性R525H突变。

构建Ddx41外显子7–9 floxed条件敲除小鼠和Ddx41R525H条件敲入小鼠,与Rosa26-CreERT2杂交;从Lin− BM细胞体外4-OH-他莫昔芬处理后验证cDNA序列和蛋白表达。

2

骨髓移植评估DDX41对造血重建的必要性

确定单等位和双等位Ddx41突变对造血重建的影响。

将野生型、单等位和双等位Ddx41突变BM细胞移植入致死照射受体,移植前或移植后给予他莫昔芬,监测生存、血计数、骨髓和脾病理。

3

体外评估HPC集落形成、增殖、细胞周期和凋亡

确定DDX41缺失对造血祖细胞功能的影响。

分离Lin− BM细胞,进行甲基纤维素集落形成、液相培养、细胞周期和Annexin V检测;并用MLL-AF9永生化LSPC及THP1 shDDX41细胞评估增殖和凋亡。

4

竞争性骨髓移植评估HSPC竞争能力

比较单等位和双等位Ddx41突变HSPC在体内的竞争能力。

将CD45.2+ Ddx41突变BM细胞与CD45.1+竞争BM细胞等量混合移植入致死照射CD45.1+受体,4周后他莫昔芬诱导,追踪16周外周血和骨髓嵌合率,并进行二次移植。

5

老龄小鼠评估单等位DDX41突变的年龄依赖造血缺陷

确定单等位Ddx41突变是否随年龄导致造血异常。

移植野生型、Ddx41+/−和Ddx41KI/+ BM细胞,移植前或移植后他莫昔芬诱导,观察15个月,检测血计数、骨髓细胞量、脾重量和组织病理。

6

RNA-seq和HyperTRIBE解析DDX41的RNA结合与snoRNA加工

确定DDX41缺失后的分子改变及DDX41结合的RNA类别。

对Ddx41+/+和Ddx41−/− LSPC进行RNA-seq;在THP1细胞表达DDX41-ADAR(CD)或ADAR(CD)对照,通过RNA-seq鉴定A-to-I编辑位点;qRT-PCR验证snoRNA及其宿主基因表达。

7

评估成熟snoRNA、rRNA假尿苷化、rRNA加工和蛋白质合成

确定snoRNA加工缺陷是否导致核糖体功能和翻译受损。

小RNA组分qRT-PCR和Northern blot检测成熟snoRNA;CMC-qPCR和引物延伸检测rRNA假尿苷化;Northern blot检测45S/19S/12S rRNA加工;HPG掺入和多聚体分析检测蛋白质合成与核糖体组装;shRNA敲低单个snoRNA验证功能。

8

全基因组CRISPR-Cas9筛选DDX41缺失细胞的存活通路

确定完全缺失Ddx41时促进细胞存活的基因和通路。

Ddx41f/f;Rosa-CreERT;Rosa-Cas9 Lin− BM细胞转导Brie sgRNA文库,他莫昔芬处理5天,测序鉴定富集sgRNA,MAGeCK分析。

9

80:20混合移植模拟双等位突变小克隆

模拟患者中低变异等位基因频率的双等位DDX41突变细胞对单等位突变骨髓的影响。

将80% Ddx41+/−与20% Ddx41KI/− BM细胞混合移植入致死照射CD45.1+受体,4周后他莫昔芬诱导,8周后检测血计数、骨髓和脾髓系比例、cleaved caspase和病理。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
兔多克隆抗DDX41抗体AbcamAb210809
兔单克隆抗Vinculin抗体(E1E9V)Cell Signaling TechnologyAB_2728768
兔多克隆Pan-Actin抗体Cell Signaling TechnologyAB_2313904
兔单克隆抗GAPDH抗体(D16H11)Cell Signaling TechnologyAB_10622025
抗B220 APC抗体eBioscienceAB_469395
抗CD11b PE-Cy7抗体eBioscienceAB_469587
抗CD45.1 BV510抗体BioLegendAB_2563378
抗CD45.2 APC-eFluor780抗体eBioscienceAB_1272175
抗CD48 FITC抗体eBiosceinceAB_465078
抗CD117 APC抗体eBioscienceAB_469429
抗CD150 PE-Cy7抗体BioLegendAB_439797
抗Ly-6G(Gr-1)eFluor 450抗体eBioscienceAB_1548788
抗Ly-6A/E(Sca-1)PE抗体eBioscienceAB_466086
链霉亲和素eFluor® 450eBioscienceAB_10359737
小鼠造血谱系生物素抗体 PaneleBioscienceAB_476399
抗CD3e FITC抗体eBioscienceAB_464882
AnnexinV APCeBioscienceAB_2575166
小鼠Flt3配体细胞因子PeproTech250-31
小鼠IL-3细胞因子PeproTech213-13
人IL-6细胞因子PeproTech200-06
小鼠SCF细胞因子PeproTech250-03
人TPO细胞因子PeproTech--
Methocult GF M3434培养基Stem Cell Technologies03434
无钙镁Dulbecco PBSVWR45000-446
A/G Protein PLUS琼脂糖Santa Cruzsc-2003
RPMI培养基FisherSH30027.01
无甲硫氨酸RPMIThermoFisherA1451701
IMDM培养基Corning10-016-CV
DMEM培养基FisherSH30022FS
TransIT-LT1转染试剂MirusMIR2306
胎牛血清Atlanta BiologicalsS11550
青霉素/链霉素ThermoFisherSV30010
Superscript II逆转录酶ThermoFisher18064014
RnaseOUT重组核糖核酸酶抑制剂ThermoFisher10777019
N-环己基-N′-(2-吗啉乙基)碳二亚胺甲基对甲苯磺酸盐(CMC)ThermoFisherC106402-1G
氯化锰SigmaM1787
Bicine缓冲液SigmaB3876
他莫昔芬SigmaT-5648
4-羟基他莫昔芬SigmaH-7904
CellTiterGlo试剂盒PromegaG7570
小鼠造血祖细胞富集试剂盒Stem Cell Technologies19856
Pierce生物素3’端DNA标记试剂盒ThermoFisher89818
NEBNext镁离子RNA片段化模块ThermoFIsherE6150S
POWRUP SYBR green预混液ThermoFisherA25776
Click-IT L-高炔丙基甘氨酸ThermoFisherC10186
NorthernMAX试剂盒ThermoFisherAM1940
mirVana miRNA分离试剂盒ThermoFisherAM1561
GeneAmp Fast PCR预混液2xThermoFisher4359187
Click-IT Edu Alexa Fluor 647ThermoFisherC10424
化学发光核酸检测模块试剂盒ThermoFisher89880
Zymo Quick-RNA小量制备试剂盒Zymo ResearchR1050
THP-1细胞ATCCTIB-202
HEK293T细胞ATCCATC CRL-3216
小鼠:C57Bl/6N Ddx41tm1aKOMPMMRRC_047340-UCD
小鼠:Rosa26-CreERT2JacksonRRID:IMSR_JAX:008463
小鼠:Rosa26-Cas9JacksonRRID:IMSR_JAX:026179
小鼠:Rosa26::FlpeJacksonRRID:IMSR_JAX:009086

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
他莫昔芬诱导与骨髓移植
他莫昔芬剂量1 mg/50 μl玉米油、腹腔注射连续5天并一周后重复;移植细胞数1×10^6 BMNC;竞争移植每株1×10^6;受体为致死照射CD45.1+雌性C57Bl/6 BoyJ小鼠
阅读提示:STAR Methods中Mice小节及图1E、图1I、图2A、图7E图注
体外Cre诱导与细胞功能检测
LSPC用1 μM 4-OH-他莫昔芬处理24小时,Lin− BM细胞处理48小时;集落培养12天;细胞周期和Annexin V在他莫昔芬后72小时检测;每组n=3
阅读提示:STAR Methods中Cell lines、Colony assay、Flow cytometry小节及图1N–O、图5D–E图注
snoRNA加工与假尿苷化检测
RNA-seq取样为他莫昔芬后48小时;CMC浓度0.2 M、37°C 20分钟;qRT-PCR为3个独立生物学重复
阅读提示:STAR Methods中Pseudouridine analysis、RNA-Sequencing of mouse LSPC小节及图4D、图5A图注
蛋白质合成与多聚体分析
HPG掺入n=3独立生物学重复;多聚体分析使用15–20M活细胞、环己酰亚胺100 μg/mL;LSPC处理48小时
阅读提示:STAR Methods中Polysome analysis小节及图6A–B图注
80:20混合移植模拟双等位小克隆
8×10^5 Ddx41f/+;Rosa-Cre-ERT与2×10^5 Ddx41f/KI;Rosa-Cre-ERT混合;移植后4周他莫昔芬;8周后检测血计数和cleaved caspase;图7H n=3独立小鼠
阅读提示:图7D–I图注及Results中“Ineffective hematopoiesis occurs in younger mice…”段落