通过突变SOD1的遗传校正识别人类ALS运动神经元中受干扰的通路

Pathways disrupted in human ALS motor neurons identified through genetic correction of mutant SOD1.

作者信息Evangelos Kiskinis, Jackson Sandoe, Luis A Williams, Gabriella L Boulting, Rob Moccia, Brian J Wainger, Steve Han, Theodore Peng, Sebastian Thams, Shravani Mikkilineni, Cassidy Mellin, Florian T Merkle, Brandi N Davis-Dusenbery, Michael Ziller, Derek Oakley, Justin Ichida, Stefania Di Costanzo, Nick Atwater, Morgan L Maeder, Mathew J Goodwin, James Nemesh, Robert E Handsaker, Daniel Paull, Scott Noggle, Steven A McCarroll, J Keith Joung, Clifford J Woolf, Robert H Brown, Kevin Eggan
PMID24704492
发布时间2014-06-05
DOI10.1016/j.stem.2014.03.004

实验完整度

高

研究结合了体外iPSC分化模型、基因校正、RNA测序、功能验证及患者来源C9orf72运动神经元比较,包含机制验证和功能验证。

主要模型

SOD1+/A4V患者来源iPSC分化的运动神经元 基因校正的等基因对照iPSC分化的运动神经元 C9orf72重复扩增患者来源iPSC分化的运动神经元 健康对照iPSC分化的运动神经元

重点核对

iPSC系:39b-SOD1+/A4V、39b-SOD1+/+、11a、18a、19、RB8及对照系 运动神经元分化方案:d1-d6 SB431542 10μM + Dorsmorphin 1μM;d5-d24 BDNF 10ng/mL、ascorbic acid 0.4μg/ml、RA 1μM、SAG 1.3 1μM 生存分析:20K细胞/孔接种于8孔腔室载玻片,与小鼠胶质细胞共培养,d3设为100% RNA-seq:Hb9∷RFP+ MNs FACS纯化,培养15天后测序 线粒体运输:MitoTracker Green FM 50nM染色,5分钟每4秒时间 lapse

摘要

尽管已知多种基因的许多不同突变可导致肌萎缩侧索硬化(ALS),但人们仍对其如何选择性影响运动神经元生物学以及它们是否汇聚于共同通路导致神经元变性知之甚少。在这里,我们将重编程和干细胞分化方法与基因组工程和RNA测序相结合,以定义突变SOD1在人类运动神经元中诱导的转录和功能变化。突变SOD1蛋白诱导了一种转录特征,表明氧化应激增加、线粒体功能降低、亚细胞运输改变以及ER应激和未折叠蛋白反应通路的激活。功能研究表明,这些通路以依赖SOD1突变的方式受到干扰。最后,对携带C9orf72重复扩增的ALS患者产生的干细胞衍生运动神经元的研究表明,这些变化中至少一部分在ALS中更广泛地保守。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
突变SOD1如何选择性影响人类运动神经元生物学,以及不同ALS致病突变是否汇聚于共同通路?
核心机制
突变SOD1A4V诱导氧化应激增加、线粒体功能和运输缺陷、ER应激和未折叠蛋白反应激活,这些通路扰动依赖于SOD1突变;运动神经元固有ER应激与电活动相互关联。
主要证据
SOD1+/A4V iPSC衍生运动神经元显示存活减少、凋亡增加、胞体变小;基因校正 rescue 这些表型;RNA-seq揭示转录变化;功能实验验证线粒体形态和运输缺陷、UPR激活;C9orf72运动神经元中部分转录变化共享。
研究意义
研究证明iPSC和基因组工程可用于验证动物模型假设并在人类运动神经元中扩展,识别的新基因和通路可能作为未来ALS研究的资源和潜在治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立SOD1+/A4V患者iPSC和运动神经元分化体系

获得携带患者突变的人类运动神经元用于表型分析

从两名SOD1A4V女性患者皮肤成纤维细胞重编程为iPSC,并分化为脊髓运动神经元,检测神经元标志物和电生理活性

2

比较SOD1+/A4V与对照运动神经元的存活和形态

确定突变SOD1是否在标准培养条件下导致运动神经元表型

将iPSC分化的运动神经元接种于原代胶质细胞单层,在培养3、15、30天计数ISL/TUJ1+运动神经元,用TUNEL检测凋亡,测量胞体大小和突起

3

用锌指核酸酶校正SOD1A4V突变

验证观察到的表型是否依赖于SOD1A4V等位基因

在39b-SOD1+/A4V iPSC系中进行ZFN介导的两步基因打靶,替换突变外显子1,去除抗性盒,获得39b-SOD1+/+等基因系;通过测序、RFLP、qPCR和Western blot验证

4

检测突变SOD1蛋白溶解性

评估在生理表达水平下SOD1A4V是否形成不溶性聚集体

从SOD1+/+和SOD1+/A4V运动神经元培养物中提取去垢剂可溶(RIPA)和不可溶(UREA)组分,进行免疫印迹;用MG132处理并检测不溶性SOD1

5

RNA测序分析SOD1+/A4V和等基因对照运动神经元

识别突变SOD1诱导的转录变化

将39b-SOD1+/A4V和等基因对照iPSC分化的运动神经元与胶质细胞共培养,转导Hb9∷RFP慢病毒,培养15天后FACS纯化RFP+运动神经元,提取RNA进行RNA-seq

6

验证线粒体形态和运输缺陷

确定RNA-seq提示的线粒体变化是否对应实际功能缺陷

用电子显微镜观察运动神经元线粒体形态;用MitoTracker Green FM标记线粒体,活细胞成像5分钟,生成kymograph分析运动

7

验证ER应激和UPR通路

确定突变SOD1是否激活UPR并影响运动神经元存活

检测pEIF2α蛋白水平和XBP1剪接;用siRNA敲低XBP1和ATF4;用salubrinal处理并计数运动神经元

8

比较C9orf72运动神经元的转录变化

测试不同ALS遗传形式是否共享转录变化

从C9orf72重复扩增患者(19、RB8)和健康对照生成iPSC并分化为运动神经元,FACS纯化Hb9∷RFP+运动神经元,用qRT-PCR检测选定转录本

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
基质胶BD Biosciences--
mTeSR1培养基Stem Cell Technologies--
分散酶Gibco--
ROCK抑制剂Sigma--
SB431542Sigma--
DorsmorphinStemgent--
脑源性神经营养因子R&D--
抗坏血酸Sigma--
维甲酸Sigma--
Smoothened激动剂1.3Calbiochem--
木瓜蛋白酶/DNaseWorthington Bio--
Neurobasal培养基Invitrogen--
B27添加剂Gibco--
N2添加剂Gibco--
胶质细胞源性神经营养因子R&D--
睫状神经营养因子R&D--
原位细胞死亡检测试剂盒Roche Diagnostics--
Multiclamp 700B放大器Molecular Devices--
Digidata 1440A模数接口Molecular Devices--
M768-GLx 12孔板Axion BioSystems--
Axion Maestro设备Axion BioSystems--
Trizol LSInvitrogen--
iSCRIPT试剂盒Bio-Rad--
SYBR greenBio-Rad--
iCycler系统Bio-Rad--
illumina TruSeq RNA试剂盒v2Illumina--
HiSeq 2000测序仪Illumina--
MitoTracker® Green FMInvitrogen--
JEOL 1200EX透射电子显微镜JEOL--
Amaxa™核转染仪Lonza--
Illumina Nexterra DNA试剂盒Illumina--
Illumina HiSeq 2500平台Illumina--
抗磷酸化eIF2α抗体Cell Signaling Technology3597
抗eIF2α抗体Cell Signaling Technology9722
抗α-微管蛋白抗体abcamab4074
抗SOD1抗体AgriseraAS09 540
抗α-微管蛋白抗体Sigma AldrichT6199
MitoBiogenesis™ Western Blot Cocktailabcamab123545

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
运动神经元分化
小分子处理时间和浓度:d1-d6 SB431542 10μM + Dorsmorphin 1μM;d5-d24 BDNF 10ng/mL、ascorbic acid 0.4μg/ml、RA 1μM、SAG 1.3 1μM
阅读提示:Methods 'Motor neuron differentiation'段落;Figure S1
运动神经元存活分析
接种密度20K细胞/8孔腔室载玻片;与小鼠胶质细胞共培养;培养基补充BDNF、GDNF、CNTF各10ng/mL和ascorbic acid 0.4μg/ml;d3设为100%
阅读提示:Methods 'Motor neuron survival assay'段落
基因校正
ZFN打靶策略:替换外显子1,PGK∷Puromycin选择,Flp介导去除抗性盒;核转染2.5百万细胞,1μg ZFN质粒和5μg打靶质粒
阅读提示:Methods 'Gene targeting'段落;Figure 2A
RNA-seq
Hb9∷RFP慢病毒转导,培养15天后FACS纯化RFP+ MNs;RNA-seq平台Illumina HiSeq 2000;数据提交GSE54409
阅读提示:Methods 'RNA preparation, qRT-PCR and RNA-seq'段落
线粒体运输分析
MitoTracker Green FM 50nM染色;活细胞成像5分钟,每4秒间隔;运动阈值>0.017 μm/秒;63×物镜
阅读提示:Methods 'Mitochondrial transport assays and EM analysis'段落;Figure 4D-G
ER应激/UPR验证
siRNA敲低XBP1和ATF4;salubrinal浓度15μM,处理d15-d30;检测pEIF2α蛋白和XBP1剪接
阅读提示:Methods 'XBP1 splicing assay'和'Western Blot assays'段落;Figure 5
C9orf72运动神经元转录比较
C9orf72患者系19和RB8(>50 GGGGCC重复);对照6系15重复;C9orf72系2系8重复;qRT-PCR检测MTX3、CAT、KIF14、DNAJC12、EIF2B3、SCN1A、KCNN3
阅读提示:Results 'A Subset of Transcriptional Changes in SOD1+/A4V are Shared in C9orf72 MNs'段落;Figure 7D