大鼠AAV模型建立与卡格列净干预
评估卡格列净对实验性AAV肾损伤和肺损伤的治疗效果及干预时间窗的影响。
Wistar-Kyoto大鼠经人MPO免疫建立AAV模型,随机分为HSA免疫+溶媒对照组、人MPO免疫+溶媒疾病组、早期干预组(0–8周卡格列净灌胃)和晚期干预组(4–8周卡格列净灌胃);第8周处死,检测血尿、蛋白尿、新月体形成、肾小管间质损伤评分和肺出血。
Canagliflozin Alleviates Experimental ANCA-Associated Vasculitis through Suppression of Pathogenic T-Cell Responses
包含大鼠AAV模型、小鼠过继转移模型及人原代T/B细胞体外实验,并有功能验证与p38通路机制救援验证。
Wistar-Kyoto大鼠实验性AAV模型 Mpo−/−小鼠经MPO免疫后脾细胞过继转移至Rag1−/−小鼠模型 活动性MPO-AAV患者外周血单个核细胞(PBMC)
大鼠AAV模型分组:HSA免疫+溶媒对照组、人MPO免疫+溶媒疾病组、早期干预组(0–8周卡格列净10 mg/kg/天灌胃)、晚期干预组(4–8周卡格列净10 mg/kg/天灌胃),每组n=6 过继转移模型:Mpo−/−供体小鼠随机分两组,自第0天起分别给予卡格列净10 mg/kg/天灌胃或等体积溶媒,第46天取脾细胞5×10^7个经尾静脉转移至Rag1−/−受体,转移后第14天处死取材,每组n=6 人T细胞激活实验:活动性MPO-AAV患者PBMC(n=8)以anti-CD3/CD28 beads刺激,卡格列净10 µM或0.1% DMSO溶媒对照,24小时后检测CD25和CD69 人Th1/Th17极化实验:活动性AAV患者原代CD4+ T细胞在Th1或Th17极化条件下培养5天,卡格列净处理组与对照组比较T-bet、RORγt、IFN-γ+和IL-17A+(n=4) p38通路救援实验:人CD4+ T细胞转染EGFP或组成性激活MKK6 mRNA,anti-CD3/CD28激活并在卡格列净10 µM或溶媒存在下培养24小时,ELISA检测IFN-γ和IL-17A(n=6)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估卡格列净对实验性AAV肾损伤和肺损伤的治疗效果及干预时间窗的影响。
Wistar-Kyoto大鼠经人MPO免疫建立AAV模型,随机分为HSA免疫+溶媒对照组、人MPO免疫+溶媒疾病组、早期干预组(0–8周卡格列净灌胃)和晚期干预组(4–8周卡格列净灌胃);第8周处死,检测血尿、蛋白尿、新月体形成、肾小管间质损伤评分和肺出血。
阐明卡格列净在AAV大鼠中肾脏保护作用的转录组机制。
取早期卡格列净治疗组和溶媒治疗组大鼠肾脏皮质组织和淋巴结提取总RNA,构建cDNA文库并在Illumina HiSeq2500平台测序;使用DESeq2鉴定差异表达基因,进行GO、Reactome富集分析和GSEA。
验证转录组提示的T细胞免疫抑制,并评估卡格列净对肾脏免疫细胞浸润和炎症因子表达的影响。
通过免疫组织化学检测肾脏CD4+、CD8+ T细胞、CD20+ B细胞、CD68+巨噬细胞、CD43+白细胞和MHC class 2表达;流式细胞术检测淋巴结CD3+CD4+CD45RA−和CD3+CD8+CD45RA− T细胞比例;RT-qPCR检测肾脏皮质Il1b、Il4、Il6、Il10、Il17a和Ifng mRNA水平;ELISA检测血清抗MPO IgG滴度。
验证T细胞调节对卡格列净肾脏保护作用的因果贡献。
Mpo−/−供体小鼠经鼠MPO免疫并随机分为卡格列净组和溶媒组,第46天取脾细胞经尾静脉过继转移至Rag1−/−受体小鼠;通过ELISpot检测供体脾细胞再刺激后IFN-γ和IL-17A分泌,流式细胞术检测供体脾脏Th1、Th17、CD8+ T、Treg和B细胞比例;受体小鼠转移后第14天处死,评估肾脏新月体形成。
将发现转化至人相关背景,并解析卡格列净对T细胞和B细胞作用的细胞特异性。
从活动性MPO-AAV患者PBMC中分离细胞,检测卡格列净对CD4+ T细胞活化标志物CD25和CD69的影响,对Th1/Th17极化条件下T-bet、RORγt、IFN-γ和IL-17A的影响;纯化B细胞在CpG ODN2006或模拟T细胞辅助刺激下检测CD69、CD80、CD86表达和IgG分泌。
确定卡格列净抑制T细胞功能的关键信号通路及p38抑制的功能相关性。
网络药理学分析整合卡格列净预测靶点、AAV相关基因和TCR相关基因,鉴定MAPK1(ERK)和MAPK14(p38α)为候选枢纽节点;Western blot检测活化人CD4+ T细胞中p-p38/p38和p-ERK;人CD4+ T细胞转染EGFP或组成性激活MKK6 mRNA,在卡格列净存在下激活后检测IFN-γ和IL-17A。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 大鼠AAV模型建立 | 人髓过氧化物酶 | EMD Millipore | 475911 |
| 蛋白尿检测 | 蛋白尿ELISA试剂盒 | Chondrex | 9040 |
| 小鼠ANCA-GN模型建立 | 纯化鼠髓过氧化物酶 | R&D Systems | 3667-MP-250 |
| 红细胞裂解 | 裂解缓冲液 | Solarbio | R1010 |
| 肺出血染色 | Perl普鲁士蓝染色液 | Solarbio | G1426 |
| RNA测序 | Agilent 2100生物分析仪 | Agilent Technologies | -- |
| Illumina HiSeq2500测序平台 | Illumina | -- | |
| PBMC分离 | Ficoll密度梯度离心液 | Cytiva | 17144002 |
| 细胞培养 | 人血浆样培养基 | Gibco | A4899101 |
| T细胞激活 | 可溶性抗CD3/CD28磁珠 | STEMCELL | 10971 |
| 药物处理 | 卡格列净 | MedChemExpress | JNJ 28431754 |
| B细胞分离 | MojoSortTM人CD19分选试剂盒 | BioLegend | -- |
| B细胞刺激 | CpG寡脱氧核苷酸2006 | -- | -- |
| 可溶性CD40L | BioLegend | 591702 | |
| F(ab′)2抗人IgM/IgG | Jackson ImmunoResearch | 109-006-127 | |
| 白细胞介素-4 | BioLegend | 574002 | |
| 白细胞介素-21 | BioLegend | 571202 | |
| B细胞活化标志物检测 | PE标记抗CD69抗体 | Thermo Fisher | 12-0699-42 |
| PE标记抗CD80抗体 | Thermo Fisher | 12-0809-41 | |
| PE标记抗CD86抗体 | Thermo Fisher | 12-0869-41 | |
| IgG分泌检测 | IgG ELISA试剂盒 | Beyotime | PI484 |
| ELISpot检测 | 小鼠IL-17A ELISpot PLUS试剂盒(碱性磷酸酶) | Mabtech | 3521-4APW-2 |
| 小鼠IFN-γ ELISpot PLUS试剂盒(碱性磷酸酶) | Mabtech | 3321-4APW-2 | |
| CD4+ T细胞分离 | MojoSortTM人CD4初始T细胞分选试剂盒 | BioLegend | 480014 |
| T细胞转染 | ProteanFect Max转染试剂盒 | Nanoportal Biotech | PT02 |
| X-VIVOTM 15培养基 | Lonza | 04-418Q | |
| Opti-MEMTM I培养基 | Gibco | 31985-062 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 大鼠AAV模型及卡格列净干预 | 大鼠品系、周龄、性别和来源;人MPO免疫剂量和途径;卡格列净剂量10 mg/kg/天、灌胃途径、早期(0–8周)和晚期(4–8周)干预窗口;每组n=6;第8周处死终点;HSA对照和溶媒对照设置。 阅读提示:Methods中“The Construction of Rat AAV Model and Treatment Protocol”及Figure 1 legend。 |
| 小鼠脾细胞过继转移模型 | Mpo−/−供体小鼠周龄、性别和来源;鼠MPO免疫剂量(第0天20 µg+CFA,第21/35天10 µg+IFA,处死前4天10 µg静脉加强)和途径;卡格列净10 mg/kg/天灌胃起始时间(第0天);第46天分离脾细胞;每只受体转移5×10^7个脾细胞;Rag1−/−受体周龄、性别和来源;转移后第14天处死;每组n=6。 阅读提示:Methods中“The Construction of ANCA-GN Mouse Model by Passive Transfer of Anti-MPO Splenocytes”和“Treatment Protocol for Splenocyte Adoptive Transfer”及Figure 4 legend。 |
| 人AAV患者原代T细胞实验 | 患者纳入标准(活动性MPO-AAV、免疫抑制治疗前);PBMC分离方法(Ficoll密度梯度离心);T细胞活化实验中卡格列净10 µM、0.1% DMSO溶媒对照、anti-CD3/CD28 beads刺激24小时、n=8;Th1/Th17极化实验极化条件培养5天、n=4;患者特征见Supplemental Table 2A和2B。 阅读提示:Methods中“Cell Isolation”“T-Cell Activation Assays”及Figure 5 legend;Supplemental Table 2A和2B。 |
| 人AAV患者B细胞实验 | B细胞分离试剂盒(MojoSortTM Human CD19 Selection Kit);卡格列净10 µM预处理30分钟;CpG ODN2006(1 µM)或CD40L(500 ng/ml)+F(ab′)2 anti-human IgM/IgG(10 µg/ml)+IL-4(20 ng/ml)+IL-21(50 ng/ml)刺激;活化标志物检测培养48小时,IgG分泌检测培养6天(第3天半量换液);n=4;患者特征见Supplemental Table 2C。 阅读提示:Methods中“Qualification of Effects of Canagliflozin on Human B Cells”及Figure 5 legend;Supplemental Table 2C。 |
| p38通路机制救援实验 | 人CD4+ T细胞分离试剂盒(MojoSortTM Human CD4 Naïve T Cell Isolation Kit);anti-CD3/CD28 beads激活;IL-2 300 IU/ml;转染在第6天进行,每孔0.5 µg MKK6-CA或EGFP mRNA与48 µl ProteanFect试剂混合物;卡格列净10 µM;转染后培养24小时检测IFN-γ和IL-17A,n=6;Western blot n=3独立实验。 阅读提示:Methods中“T-Cell Transfection”和“Western blot”相关描述及Figure 6 legend;Supplemental Table 3(MKK6-CA序列)。 |