不可逆电穿孔增强β-葡聚糖诱导的训练免疫治疗胰腺导管腺癌

Irreversible electroporation augments β-glucan induced trained innate immunity for the treatment of pancreatic ductal adenocarcinoma

作者信息Matthew R Woeste, Rejeena Shrestha, Anne E Geller, Shu Li, Diego Montoya-Durango, Chuanlin Ding, Xiaoling Hu, Hong Li, Aaron Puckett, Robert A Mitchell, Traci Hayat, Min Tan, Yan Li, Kelly M McMasters, Robert C G Martin, Jun Yan
PMID37072351
发布时间2023-04
DOI10.1136/jitc-2022-006221

实验完整度

包含多层级验证:体外训练反应、体内原位肿瘤模型(野生型和Rag−/−)、患者样本(PBMC和CyTOF),并涉及功能验证如吞噬和细胞毒性实验。

主要模型

小鼠原位胰腺癌模型(C57Bl/6和Rag−/−) KPC细胞系(LSL-KrasG12D/+; LSL-Trp53R172H/+; Pdx1-Cre) 人外周血单核细胞(CD14+) 患者外周血样本(阶段III PDAC)

重点核对

β-葡聚糖给药途径(腹腔注射1 mg/只或口服1 mg/只连续6天) IRE参数(1000 V/cm,100脉冲,0.1 ms持续时间,0.1 s脉冲间隔) 肿瘤细胞系KPC和S2013 Rag−/−小鼠模型以验证适应性免疫非依赖性 治疗时间线:肿瘤接种后7天给予β-葡聚糖,14天进行IRE

摘要

背景:胰腺癌(PC)是一种具有挑战性的诊断,尚未从免疫肿瘤治疗的进展中获益。不可逆电穿孔(IRE)是一种非热消融技术,用于治疗部分局部晚期不可切除的PC患者,并已增强某些免疫疗法的效果。酵母来源的颗粒性β-葡聚糖可诱导训练免疫,并成功降低小鼠PC肿瘤负荷。本研究检验了IRE可能增强β-葡聚糖诱导的训练免疫治疗PC的假说。方法:离体评估β-葡聚糖训练的胰腺髓系细胞在暴露于消融和未消融肿瘤条件培养基后的训练反应和抗肿瘤功能。在野生型和Rag−/−小鼠的原位小鼠PC模型中测试β-葡聚糖和IRE联合治疗。通过流式细胞术评估肿瘤免疫表型。评估口服β-葡聚糖在小鼠胰腺中的作用,并与IRE联合治疗PC。对接受IRE后口服β-葡聚糖的PC患者外周血进行质谱流式细胞术评估。结果:IRE消融的肿瘤细胞在离体诱导强效训练反应并增强抗肿瘤功能。在体内,β-葡聚糖联合IRE减少局部和远处肿瘤负荷,延长小鼠原位PC模型的生存期。该联合治疗增强了PC肿瘤微环境中的免疫细胞浸润,并增强了肿瘤浸润髓系细胞的训练反应。这种双重治疗的抗肿瘤作用独立于适应性免疫反应。此外,口服β-葡聚糖被确定为诱导小鼠胰腺训练免疫的替代途径,并与IRE联合延长PC生存期。β-葡聚糖体外处理也诱导了来自初治PC患者外周血单核细胞的训练免疫。最后,发现口服β-葡聚糖显著改变了五名接受IRE的III期局部晚期PC患者外周血中的先天细胞格局。结论:这些数据突出了训练免疫在外科消融环境中的相关和新颖应用,可能使PC患者受益。关键词:肿瘤微环境;免疫,先天;吞噬作用;免疫治疗。关于本主题的已知信息:近期证据表明,通过卡介苗和流感疫苗以及天然化合物如β-葡聚糖诱导训练免疫能够减少肿瘤进展并控制肿瘤转移。理解肿瘤细胞如何引发训练反应以及训练免疫的强度或水平是否与治疗效果相关至关重要。本研究新增内容:我们证明了IRE消融的肿瘤细胞引发强效训练反应并增强抗肿瘤先天免疫。在体内,β-葡聚糖联合IRE减少局部和远处肿瘤负荷,延长小鼠原位胰腺癌(PC)模型的生存期。在接受IRE的III期PC患者中,口服β-葡聚糖也诱导了外周血单核细胞的训练免疫表型。本研究可能如何影响研究、实践或政策:基于我们的发现,建议在PC患者中诱导训练免疫可能引发抗肿瘤先天免疫,并增强当前的免疫治疗方式,如免疫检查点阻断疗法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
IRE是否增强β-葡聚糖诱导的训练免疫以治疗胰腺导管腺癌?
核心机制
IRE消融肿瘤细胞释放DAMPs(如MIF),作为二次刺激增强β-葡聚糖训练髓系细胞的训练反应,从而增强抗肿瘤先天免疫,且不依赖适应性免疫。
主要证据
离体实验中,IRE条件培养基增强训练CD11b+细胞的TNF-α/IL-6分泌、吞噬和细胞毒性;体内联合治疗减少原位KPC模型肿瘤负荷、延长生存期,并在Rag−/−小鼠中同样有效。
研究意义
揭示训练免疫在外科消融中的新应用,为胰腺癌患者提供潜在联合治疗策略,并支持进一步临床研究。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外训练反应评估

验证IRE消融的肿瘤细胞是否增强β-葡聚糖训练的胰腺髓系细胞的训练反应和抗肿瘤功能。

从β-葡聚糖腹腔注射的小鼠胰腺中分离CD11b+细胞,用IRE条件培养基或肿瘤条件培养基再刺激,检测TNF-α/IL-6产生、吞噬能力及细胞毒性。

2

原位肿瘤模型治疗

评估β-葡聚糖与IRE联合治疗在原位胰腺癌模型中的疗效。

C57Bl/6和Rag−/−小鼠原位植入KPC细胞,7天后腹腔注射β-葡聚糖或PBS,14天行IRE或假手术,监测肿瘤生长和生存。

3

免疫表型分析

分析联合治疗对肿瘤免疫细胞浸润和训练表型的影响。

流式细胞术分析肿瘤中免疫细胞数量和功能(TNF-α产生),以及T细胞表型(PD-1、Granzyme B等)。

4

远处转移评估

评估联合治疗对肺转移的影响。

在PBS对照组达到肿瘤负荷终点时,收获肺组织,H&E染色评估转移结节数量。

5

口服β-葡聚糖给药

探索口服β-葡聚糖是否可诱导胰腺训练免疫并联合IRE治疗。

小鼠连续6天口服DTAF标记的β-葡聚糖,评估胰腺摄取和训练反应;随后在肿瘤模型中测试口服β-葡聚糖与IRE的联合治疗。

6

人单核细胞训练实验

验证β-葡聚糖对人类单核细胞的训练作用。

从健康供体和PC患者外周血分离CD14+单核细胞,体外β-葡聚糖训练后,用LPS或IRE条件培养基再刺激检测TNF-α产生。

7

患者外周血CyTOF分析

评估口服β-葡聚糖对接受IRE的PDAC患者外周血先天免疫细胞的影响。

收集5名III期PDAC患者IRE前和术后口服β-葡聚糖3个月后的外周血,进行CyTOF分析免疫细胞亚群变化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
β-葡聚糖Biothera--
DTAFSigma-Aldrich--
胶原酶ISigma--
透明质酸酶Sigma--
脱氧核糖核酸酶Sigma--
ACK缓冲液Thermo Fisher Scientific--
RPMI 1640培养基----
DMEM培养基----
BTX 830方波电穿孔系统Harvard apparatus--
Safety Stand 630B----
autoMACS Pro分离器Miltenyi Biotec--
CD11b磁珠Miltenyi Biotec--
CyTEK Aurora流式细胞仪CyTEKbio--
FlowJo软件BD--
小鼠TNF-α ELISA试剂盒BioLegend--
小鼠IL-6 ELISA试剂盒BioLegend--
人TNF-α ELISA试剂盒BioLegend--
人MIF ELISA试剂盒R&D Systems--
小鼠MIF ELISA试剂盒R&D Systems--
组蛋白提取试剂盒Active Motif40028
EpiQuik总组蛋白H3定量试剂盒Epigentek--
EpiQuik乙酰化组蛋白H3K27定量试剂盒Epigentek--
EpiQuik三甲基组蛋白H3K4定量试剂盒Epigentek--
EpiQuik三甲基组蛋白H3K27定量试剂盒Epigentek--
TRIzol试剂Thermo Fisher--
iScript cDNA合成试剂盒Bio-Rad--
iQ SYBR Green SupermixBio-Rad--
CFX Connect PCR仪Bio-Rad--
KPC细胞系Ximbio--
S2013细胞系----
Matrigel基质胶Corning35623
异氟烷----
Vicryl缝线Ethicon--
尼龙缝线CP Medical--
淋巴细胞分离液----
BD FACSAria流式细胞分选仪BD--
CyTOF质谱流式系统Fluidigm--
MaxPar X8聚合物试剂盒Fluidigm--
MCP9聚合物试剂盒Fluidigm--
顺铂Fluidigm--
Maxpar细胞染色缓冲液Fluidigm--
Maxpar Perm-S缓冲液Fluidigm--
Maxpar核抗原染色缓冲液Fluidigm--
铱嵌入剂Fluidigm--
EQ 4元素校准微球Fluidigm--
抗TNF-α抗体BioLegend--
抗CD11b抗体BioLegend--
TNF-α ELISA试剂盒BioLegend--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小鼠饲养
小鼠品系、性别、年龄、来源、饲养环境
阅读提示:Methods: Mice
β-葡聚糖给药
β-葡聚糖剂量、给药途径、频率、时间
阅读提示:Methods: β-glucan preparation, Results: Oral β-glucan
肿瘤模型建立
细胞系、细胞数量、植入部位、麻醉、镇痛
阅读提示:Methods: In vivo orthotopic tumor model
IRE处理
电压、脉冲数、持续时间、电极类型、肿瘤大小
阅读提示:Methods: IRE and sham surgery
免疫表型分析
流式抗体、染色方案、分析软件
阅读提示:Methods: Surface staining for flow cytometry
细胞功能实验
效应细胞、靶细胞、效靶比、孵育时间
阅读提示:Methods: Phagocytosis assay, Cytotoxicity assay
人单核细胞训练
健康供体和PC患者来源、β-葡聚糖浓度、训练和刺激时间
阅读提示:Methods: In vitro training assay with β-glucan
CyTOF分析
抗体、染色步骤、数据采集和标准化
阅读提示:Methods: CyTOF mass cytometry sample preparation, CyTOF data acquisition and analysis