p85S6K维持突触GluA1以改善阿尔茨海默病的认知缺陷

p85S6K sustains synaptic GluA1 to ameliorate cognitive deficits in Alzheimer's disease

作者信息Jia-Bing Li, Xiao-Yu Hu, Mu-Wen Chen, Cai-Hong Xiong, Na Zhao, Yan-Hui Ge, Hao Wang, Xiao-Ling Gao, Nan-Jie Xu, Lan-Xue Zhao, Zhi-Hua Yu, Hong-Zhuan Chen, Yu Qiu
PMID36624510
发布时间2023-01-09
DOI10.1186/s40035-022-00334-w

实验完整度

包含PSD组分分离、免疫共沉淀、体外磷酸化、原代神经元培养、行为学测试、AD模型小鼠及人脑样本等多层级实验,并进行功能与机制验证。

主要模型

原代海马神经元 C57BL/6J小鼠 APP/PS1转基因小鼠 5×FAD转基因小鼠 S845A突变小鼠 AD患者脑组织样本

重点核对

p85S6K特异性敲低通过共表达S6K1 shRNA和p70S6K实现,病毒颗粒比例为4:1(体外)或2.5:1(体内) p85S6K过表达使用AAV(血清型2/9)表达p85S6K或对照AAV,注射2个月后进行行为学检测 行为学评估使用7月龄APP/PS1小鼠,MWM训练6天,每天4次试验,探针测试30秒 体外磷酸化实验使用GST-GluA1 C末端(残基810-889)和Flag-p85S6K,ATP浓度1mM,30°C孵育30分钟 SYNPLA检测使用化学LTP诱导,条件为无MgCl2 ACSF含100 nM rolipram、50 µM forskolin和100 µM picrotoxin,处理16分钟

摘要

背景:核糖体蛋白S6激酶1(S6K1)是一种丝氨酸-苏氨酸激酶,具有两种主要亚型:p70S6K(70-kDa亚型)和p85S6K(85-kDa亚型)。p70S6K及其上游的哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)已被证明参与学习和记忆,并参与阿尔茨海默病(AD)的病理生理过程。然而,由于p85S6K与p70S6K的高度相似性,其功能长期被忽视。p85S6K在学习和记忆中的作用仍然很大程度上未知。方法:我们分离了突触后致密区(PSD),以说明p85S6K和p70S6K的差异分布。通过免疫共沉淀揭示p85S6K与AMPA受体GluA1亚基之间的相互作用。通过特异性敲低或过表达p85S6K,结合免疫荧光、Western blot、原位邻近连接技术、形态学染色和行为学检测等多种方法,评估p85S6K在GluA1突触靶向及学习和记忆中的作用。此外,测量了AD患者和AD模型小鼠脑中p85S6K的表达水平。结果:p85S6K(而非p70S6K)富集于突触后致密区。此外,敲低p85S6K导致空间和识别记忆缺陷。并且,p85S6K可通过突触相关蛋白97和A激酶锚定蛋白79/150与AMPA受体GluA1亚基相互作用。机制研究表明,p85S6K可直接磷酸化GluA1的Ser845位点,增加突触中GluA1的数量,从而维持突触功能和树突棘密度。此外,发现AD患者和AD小鼠脑的突触体组分中p85S6K特异性减少。在转基因AD模型小鼠中过表达p85S6K改善了突触缺陷和认知障碍。结论:这些结果强烈提示p85S6K通过与GluA1相互作用在维持突触和认知功能中发挥重要作用。这些发现为合理靶向p85S6K作为AD的治疗潜力提供了见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
p85S6K是否参与学习和记忆的维持,并且在AD中是否发挥作用?
核心机制
p85S6K通过与SAP97和AKAP79/150形成复合物与GluA1相互作用,直接磷酸化GluA1的Ser845位点,促进GluA1的突触定位和表面表达,维持突触功能和树突棘密度,从而支持认知功能。
主要证据
通过PSD组分分离和胰蛋白酶切割实验证明p85S6K富集于PSD;免疫共沉淀和PLA显示p85S6K与GluA1特异性结合;体外磷酸化实验证明p85S6K直接磷酸化GluA1 Ser845;p85S6K敲低导致认知缺陷,过表达改善AD模型小鼠认知和突触缺陷,且S845A小鼠中无效应。
研究意义
本研究揭示p85S6K-GluA1信号在记忆调节中的新机制,为靶向p85S6K作为AD治疗策略提供理论依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

PSD组分分离与定位

验证p85S6K与p70S6K在突触后致密区的差异分布

通过超速离心和蔗糖梯度离心从小鼠海马分离PSD组分,用免疫印迹检测p85S6K、p70S6K及PSD标志物PSD95和突触前标志物突触素,并用胰蛋白酶切割实验验证p85S6K在突触后的定位。

2

p85S6K与GluA1相互作用验证

验证p85S6K是否与GluA1特异性结合

通过免疫共沉淀检测p85S6K与GluA1、GluA2、GluA3的相互作用,并在HEK293细胞中共表达Flag-p85S6K、Myc-GluA1和AKAP79验证复合物形成,通过原位PLA实验在脑片中确认体内相互作用。

3

p85S6K磷酸化GluA1 Ser845

验证p85S6K是否直接磷酸化GluA1 Ser845并影响其磷酸化水平

通过体外磷酸化实验将GST-GluA1 C末端与Flag-p85S6K共孵育,检测Ser845磷酸化;在原代神经元中敲低或过表达p85S6K,检测GluA1 Ser845磷酸化水平;使用激酶失活突变体p85S6KT421A验证其活性依赖。

4

p85S6K对突触GluA1和树突棘的影响

验证p85S6K是否通过磷酸化GluA1 Ser845调控GluA1表面表达和突触整合

通过表面生物素化检测表面GluA1水平,免疫荧光共定位分析GluA1与PSD95的共定位,Golgi染色和原代神经元染色分析树突棘密度,SYNPLA检测突触GluA1插入。

5

p85S6K在AD脑中的表达变化

检测AD患者和AD模型小鼠中p85S6K的表达是否异常

通过西方印迹检测AD患者和5×FAD小鼠脑组织中P2组分和PSD-1组分中p85S6K和p70S6K的表达水平,并分析p85S6K水平与Braak分期的相关性。

6

p85S6K过表达对AD认知和突触的影响

验证p85S6K过表达是否能改善AD小鼠的认知缺陷和突触损伤

向APP/PS1小鼠海马注射表达p85S6K的AAV或对照AAV,2个月后进行Morris水迷宫和新型物体识别测试,检测GluA1磷酸化水平和树突棘密度。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
脂质体转染试剂3000Thermo Fisher Scientific--
DMEM培养基----
多聚赖氨酸Millipore Sigma--
Pierce™免疫沉淀裂解液Thermo Fisher Scientific--
蛋白A/G琼脂糖树脂Santa Cruz Biotechnology--
Alexa 488标记山羊抗兔抗体Jackson ImmunoResearch--
Alexa 633标记山羊抗小鼠抗体Jackson ImmunoResearch--
Leica TCS SP8激光共聚焦显微镜Leica Microsystems--
硫代-NHS-LC-生物素Thermo Fisher Scientific--
链霉亲和素磁珠Thermo Fisher Scientific--
聚偏二氟乙烯膜Millipore Sigma--
IRDye山羊抗兔IgGLi-Cor Biosciences--
IRDye山羊抗小鼠IgGLi-Cor Biosciences--
Li-Cor Odyssey Fc成像系统Li-Cor Biosciences--
Duolink原位PLA试剂盒(小鼠/兔,红色)Millipore Sigma--
谷胱甘肽琼脂糖Santa Cruz Biotechnology--
FD快速高尔基染色试剂盒FD Neuro Technologies--
视频跟踪系统Mobile Datum--
抗Flag (M2)抗体Millipore SigmaF1804
抗c-Myc (9E10)抗体Millipore SigmaM4439
抗GluA1抗体Millipore SigmaMAB2263
抗p70S6K抗体Cell Signaling Technology9202
抗GluA1 N端抗体Millipore SigmaPC246
抗PSD95抗体Santa Cruz Biotechnologysc-32291
抗p70S6K Thr389磷酸化抗体Cell Signaling Technology9205
抗p70S6K Thr389磷酸化抗体R&D SystemsMAB8963
抗S6抗体Affinity BiosciencesAF6354
抗S6 Ser235磷酸化抗体Affinity BiosciencesAF3354
抗SAP97抗体Santa Cruz Biotechnologysc-9961
抗AKAP79抗体Santa Cruz Biotechnologysc-17772
抗AKAP150抗体Santa Cruz Biotechnologysc-377055
抗GluA1 Ser845磷酸化抗体Abcamab76321
抗GluA1抗体Abcamab109450
抗GluA2抗体Abcamab133477
抗GluA3抗体Cell Signaling Technology4676
抗突触素抗体Santa Cruz Biotechnologysc-17750
抗Flag抗体Cell Signaling Technology8146
抗Myc抗体Cell Signaling Technology2278
抗PKA C-α抗体Cell Signaling Technology5842
抗GAPDH抗体Millipore SigmaG9545
抗GluA2抗体Santa Cruz Biotechnologysc-517265

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
PSD组分分离
起始材料为小鼠海马(10只/次),匀浆缓冲液含0.32 M蔗糖、4 mM HEPES、2 mM EDTA等,离心步骤包括1000 g、10,000 g、25,000 g、150,000 g等;需要核对梯度离心条件
阅读提示:Methods: Postsynaptic density (PSD) fractionation
免疫共沉淀
裂解缓冲液为Pierce™ IP裂解缓冲液,使用1 μg抗体(anti-Flag M2、anti-c-Myc 9E10等),蛋白量500 μg,孵育过夜,然后用蛋白A/G琼脂糖旋转孵育2小时
阅读提示:Methods: Co-immunoprecipitation
原代神经元培养与感染
原代神经元取自新生SD大鼠(24小时内),接种密度1×10^6细胞/皿或/孔,培养18-24天,第9天感染慢病毒;特异性敲低使用S6K1 shRNA和p70S6K以4:1比例共感染
阅读提示:Methods: Primary hippocampal neuron culture and infection
海马注射
小鼠麻醉使用2%异氟烷;注射位点:前后1.95 mm,旁开1.0 mm,深度2.2 mm;和前后2.9 mm,旁开3.0 mm,深度3.2 mm;注射体积1 μl,10分钟注射完成,然后等待10分钟扩散,2分钟后缓慢抬针;敲低时使用S6K1 shRNA和p70S6K以2.5:1比例共注射
阅读提示:Methods: Hippocampal injection
行为学测试
MWM使用150 cm直径水池,水温19-22°C,平台直径6 cm,训练6天每天4次试验,探针测试30秒;NOR对象识别测试包括第一天适应5分钟,第二天训练10分钟,24小时后测试;需使用2-3月龄WT小鼠和7月龄APP/PS1小鼠
阅读提示:Methods: Behavioral tests, Morris water maze, Novel object recognition