PSD组分分离与定位
验证p85S6K与p70S6K在突触后致密区的差异分布
通过超速离心和蔗糖梯度离心从小鼠海马分离PSD组分,用免疫印迹检测p85S6K、p70S6K及PSD标志物PSD95和突触前标志物突触素,并用胰蛋白酶切割实验验证p85S6K在突触后的定位。
p85S6K sustains synaptic GluA1 to ameliorate cognitive deficits in Alzheimer's disease
包含PSD组分分离、免疫共沉淀、体外磷酸化、原代神经元培养、行为学测试、AD模型小鼠及人脑样本等多层级实验,并进行功能与机制验证。
原代海马神经元 C57BL/6J小鼠 APP/PS1转基因小鼠 5×FAD转基因小鼠 S845A突变小鼠 AD患者脑组织样本
p85S6K特异性敲低通过共表达S6K1 shRNA和p70S6K实现,病毒颗粒比例为4:1(体外)或2.5:1(体内) p85S6K过表达使用AAV(血清型2/9)表达p85S6K或对照AAV,注射2个月后进行行为学检测 行为学评估使用7月龄APP/PS1小鼠,MWM训练6天,每天4次试验,探针测试30秒 体外磷酸化实验使用GST-GluA1 C末端(残基810-889)和Flag-p85S6K,ATP浓度1mM,30°C孵育30分钟 SYNPLA检测使用化学LTP诱导,条件为无MgCl2 ACSF含100 nM rolipram、50 µM forskolin和100 µM picrotoxin,处理16分钟
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证p85S6K与p70S6K在突触后致密区的差异分布
通过超速离心和蔗糖梯度离心从小鼠海马分离PSD组分,用免疫印迹检测p85S6K、p70S6K及PSD标志物PSD95和突触前标志物突触素,并用胰蛋白酶切割实验验证p85S6K在突触后的定位。
验证p85S6K是否与GluA1特异性结合
通过免疫共沉淀检测p85S6K与GluA1、GluA2、GluA3的相互作用,并在HEK293细胞中共表达Flag-p85S6K、Myc-GluA1和AKAP79验证复合物形成,通过原位PLA实验在脑片中确认体内相互作用。
验证p85S6K是否直接磷酸化GluA1 Ser845并影响其磷酸化水平
通过体外磷酸化实验将GST-GluA1 C末端与Flag-p85S6K共孵育,检测Ser845磷酸化;在原代神经元中敲低或过表达p85S6K,检测GluA1 Ser845磷酸化水平;使用激酶失活突变体p85S6KT421A验证其活性依赖。
验证p85S6K是否通过磷酸化GluA1 Ser845调控GluA1表面表达和突触整合
通过表面生物素化检测表面GluA1水平,免疫荧光共定位分析GluA1与PSD95的共定位,Golgi染色和原代神经元染色分析树突棘密度,SYNPLA检测突触GluA1插入。
检测AD患者和AD模型小鼠中p85S6K的表达是否异常
通过西方印迹检测AD患者和5×FAD小鼠脑组织中P2组分和PSD-1组分中p85S6K和p70S6K的表达水平,并分析p85S6K水平与Braak分期的相关性。
验证p85S6K过表达是否能改善AD小鼠的认知缺陷和突触损伤
向APP/PS1小鼠海马注射表达p85S6K的AAV或对照AAV,2个月后进行Morris水迷宫和新型物体识别测试,检测GluA1磷酸化水平和树突棘密度。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养与转染 | 脂质体转染试剂3000 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 原代神经元培养 | 多聚赖氨酸 | Millipore Sigma | -- |
| 免疫共沉淀 | Pierce™免疫沉淀裂解液 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 蛋白A/G琼脂糖树脂 | Santa Cruz Biotechnology | -- | |
| 免疫荧光染色 | Alexa 488标记山羊抗兔抗体 | Jackson ImmunoResearch | -- |
| Alexa 633标记山羊抗小鼠抗体 | Jackson ImmunoResearch | -- | |
| 免疫荧光成像 | Leica TCS SP8激光共聚焦显微镜 | Leica Microsystems | -- |
| 表面生物素化 | 硫代-NHS-LC-生物素 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 链霉亲和素磁珠 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Western blot | 聚偏二氟乙烯膜 | Millipore Sigma | -- |
| IRDye山羊抗兔IgG | Li-Cor Biosciences | -- | |
| IRDye山羊抗小鼠IgG | Li-Cor Biosciences | -- | |
| Western blot成像 | Li-Cor Odyssey Fc成像系统 | Li-Cor Biosciences | -- |
| 原位PLA | Duolink原位PLA试剂盒(小鼠/兔,红色) | Millipore Sigma | -- |
| 体外磷酸化 | 谷胱甘肽琼脂糖 | Santa Cruz Biotechnology | -- |
| Golgi染色 | FD快速高尔基染色试剂盒 | FD Neuro Technologies | -- |
| 行为学分析 | 视频跟踪系统 | Mobile Datum | -- |
| 免疫共沉淀 | 抗Flag (M2)抗体 | Millipore Sigma | F1804 |
| 抗c-Myc (9E10)抗体 | Millipore Sigma | M4439 | |
| 抗GluA1抗体 | Millipore Sigma | MAB2263 | |
| 抗p70S6K抗体 | Cell Signaling Technology | 9202 | |
| 免疫荧光染色 | 抗GluA1 N端抗体 | Millipore Sigma | PC246 |
| 抗PSD95抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-32291 | |
| Western blot | 抗p70S6K Thr389磷酸化抗体 | Cell Signaling Technology | 9205 |
| 抗p70S6K Thr389磷酸化抗体 | R&D Systems | MAB8963 | |
| 抗S6抗体 | Affinity Biosciences | AF6354 | |
| 抗S6 Ser235磷酸化抗体 | Affinity Biosciences | AF3354 | |
| 抗SAP97抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-9961 | |
| 抗AKAP79抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-17772 | |
| 抗AKAP150抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-377055 | |
| 抗GluA1 Ser845磷酸化抗体 | Abcam | ab76321 | |
| 抗GluA1抗体 | Abcam | ab109450 | |
| 抗GluA2抗体 | Abcam | ab133477 | |
| 抗GluA3抗体 | Cell Signaling Technology | 4676 | |
| 抗突触素抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-17750 | |
| 抗Flag抗体 | Cell Signaling Technology | 8146 | |
| 抗Myc抗体 | Cell Signaling Technology | 2278 | |
| 抗PKA C-α抗体 | Cell Signaling Technology | 5842 | |
| 抗GAPDH抗体 | Millipore Sigma | G9545 | |
| 原位PLA | 抗GluA2抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-517265 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| PSD组分分离 | 起始材料为小鼠海马(10只/次),匀浆缓冲液含0.32 M蔗糖、4 mM HEPES、2 mM EDTA等,离心步骤包括1000 g、10,000 g、25,000 g、150,000 g等;需要核对梯度离心条件 阅读提示:Methods: Postsynaptic density (PSD) fractionation |
| 免疫共沉淀 | 裂解缓冲液为Pierce™ IP裂解缓冲液,使用1 μg抗体(anti-Flag M2、anti-c-Myc 9E10等),蛋白量500 μg,孵育过夜,然后用蛋白A/G琼脂糖旋转孵育2小时 阅读提示:Methods: Co-immunoprecipitation |
| 原代神经元培养与感染 | 原代神经元取自新生SD大鼠(24小时内),接种密度1×10^6细胞/皿或/孔,培养18-24天,第9天感染慢病毒;特异性敲低使用S6K1 shRNA和p70S6K以4:1比例共感染 阅读提示:Methods: Primary hippocampal neuron culture and infection |
| 海马注射 | 小鼠麻醉使用2%异氟烷;注射位点:前后1.95 mm,旁开1.0 mm,深度2.2 mm;和前后2.9 mm,旁开3.0 mm,深度3.2 mm;注射体积1 μl,10分钟注射完成,然后等待10分钟扩散,2分钟后缓慢抬针;敲低时使用S6K1 shRNA和p70S6K以2.5:1比例共注射 阅读提示:Methods: Hippocampal injection |
| 行为学测试 | MWM使用150 cm直径水池,水温19-22°C,平台直径6 cm,训练6天每天4次试验,探针测试30秒;NOR对象识别测试包括第一天适应5分钟,第二天训练10分钟,24小时后测试;需使用2-3月龄WT小鼠和7月龄APP/PS1小鼠 阅读提示:Methods: Behavioral tests, Morris water maze, Novel object recognition |