建立高血压动物模型
通过AngII输注诱导小鼠高血压和血管重塑,以评估3HNA的体内保护作用。
雄性C57BL/6小鼠(8-10周龄)通过皮下植入渗透微泵以1 μg/kg/min输注AngII或假手术,持续2周,同时隔日腹腔注射3HNA(100 mg/kg)或生理盐水对照。
Endoplasmic Reticulum Chemical Chaperone 3-Hydroxy-2-Naphthoic Acid Reduces Angiotensin II-Induced Vascular Remodeling and Hypertension In Vivo and Protein Synthesis In Vitro
包含体内动物模型(AngII输注小鼠)、体外细胞实验(VSMCs和成纤维细胞),以及组织学、免疫荧光、免疫印迹等验证,涉及功能验证和机制验证。
C57BL/6小鼠(AngII输注诱导的高血压模型) 大鼠血管平滑肌细胞(原代培养) 大鼠血管外膜成纤维细胞(原代培养)
动物模型:雄性C57BL/6小鼠,8-10周龄,每组8只,随机分组,盲法 AngII输注:1 μg/kg/min,持续2周,通过皮下植入渗透微泵 3HNA剂量:100 mg/kg,隔日腹腔注射,共14天 细胞实验:VSMCs和成纤维细胞, 血清饥饿2天,3HNA预处理30分钟或1小时,AngII或衣霉素刺激 蛋白合成检测:SUnSET法,5 μmol/L嘌呤霉素脉冲30分钟
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
通过AngII输注诱导小鼠高血压和血管重塑,以评估3HNA的体内保护作用。
雄性C57BL/6小鼠(8-10周龄)通过皮下植入渗透微泵以1 μg/kg/min输注AngII或假手术,持续2周,同时隔日腹腔注射3HNA(100 mg/kg)或生理盐水对照。
检测3HNA是否影响AngII诱导的血压升高和心脏肥大。
采用尾套法测量收缩压(day 0, 8, 14),并计算心脏重量/体重比。
评估3HNA对AngII诱导的血管中膜增厚和纤维化的影响。
通过Masson三色染色和天狼星红染色分析主动脉和心脏组织,测量主动脉中膜厚度、冠脉中膜面积和血管周围纤维化。
初步评估3HNA是否在体内抑制主动脉UPR。
对主动脉切片进行免疫荧光染色,检测磷酸化IRE1α和α-SMA,量化平均荧光强度。
验证3HNA是否在血管外膜成纤维细胞中减轻衣霉素诱导的ER应激。
原代大鼠血管成纤维细胞用3HNA(0.5-1 mmol/L)预处理后,使用衣霉素(2 μg/mL)刺激24小时,通过免疫印迹检测UPR标志物(ATF6、CHOP、IRE1α、GRP78、eIF2α)。
检测3HNA能否抑制AngII诱导的VSMC蛋白质合成增加。
血清饥饿的VSMC用3HNA(500 μmol/L)预处理后,用AngII(100 nmol/L)刺激6小时,使用SUnSET法检测嘌呤霉素掺入。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型 | Alzet微量渗透泵 | Alzet | -- |
| 血管紧张素II | Bachem | 4006473 | |
| 3-羟基-2-萘甲酸钠盐 | TCI America | H0284 | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Corning | 10-014-CV |
| 胎牛血清 | VWR International | 970685-085 | |
| 3-羟基-2-萘甲酸 | TCI America | H0281 | |
| 细胞处理 | 衣霉素 | Research Product International | T22500 |
| 蛋白合成检测 | 嘌呤霉素 | Sigma | P7255 |
| 免疫印迹 | ATF6抗体 | Novus Biologicals | NBP1-40256 |
| CHOP抗体 | Cell Signaling | 2895 | |
| GRP78抗体 | Proteintech | 11587-1-AP | |
| IRE1α(Ser724磷酸化)抗体 | MyBioSource | MBS9610512 | |
| IRE1α抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-390960 | |
| eIF2α(Ser51磷酸化)抗体 | Cell Signaling | 3398 | |
| eIF2α抗体 | Cell Signaling | 2103 | |
| GAPDH抗体 | Sigma-Aldrich | MAB374 | |
| β-actin抗体 | Cell Signaling Technology | 4970 | |
| 二抗(IRDye 800CW, IRDye 680RD) | LI-COR | 926-32211, 926-68071, 926-32210, 926-68070 | |
| 免疫荧光 | AlexaFluor 488抗兔IgG | Invitrogen | A11034 |
| AlexaFluor 594抗小鼠IgG | Invitrogen | A11005 | |
| TrueVIEW自发荧光淬灭试剂 | Vector Laboratories | SP-8400 | |
| 含DAPI的Vectashield封片剂 | Vector Laboratories | H-1200-10 | |
| EVOS2100显微镜 | -- | -- | |
| 血压测量 | CODA无创血压系统 | Kent Scientific | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系、性别、年龄、体重、每组动物数、随机化与盲法;AngII剂量、输注速度、持续时间;3HNA剂量、给药途径、频率、溶剂和浓度;渗透泵植入方式 阅读提示:Methods - Animal Protocols |
| 血压测量 | 测量方法(尾套法)、仪器、预热时间、适应天数、记录次数、取平均值方法、排除标准 阅读提示:Methods - Blood Pressure Assessment |
| 组织学分析 | 主动脉和心脏的取材、固定、脱水、包埋及切片厚度;染色方法(Masson三色、天狼星红);测量指标(中膜厚度、纤维化面积等)及定量方法 阅读提示:Methods - Histology |
| 免疫荧光 | 主动脉切片厚度、抗原修复、封闭透化条件、一抗浓度和孵育条件、二抗浓度和孵育条件、防淬灭试剂使用、封片剂、显微镜型号、图像定量方法 阅读提示:Methods - Immunofluorescent Staining |
| 细胞培养与处理 | 细胞来源(大鼠品系、主动脉部位)、分离方法、培养条件(培养基、血清、抗生素)、传代代数、血清饥饿时间、3HNA浓度和溶剂、刺激剂浓度和时间 阅读提示:Methods - Cell Culture, Results - 相应部分 |
| 蛋白质合成检测 | SUnSET方法细节:嘌呤霉素浓度、脉冲时间、细胞处理时间、裂解和免疫印迹方法、归一化方法 阅读提示:Methods - Protein Synthesis |
| 免疫印迹 | 蛋白提取、上样量、SDS-PAGE凝胶浓度、转膜条件、封闭液、一抗浓度和二抗浓度、显色系统、归一化内参 阅读提示:Methods - Immunoblotting |