靶向FTO抑制癌症干细胞维持和免疫逃逸

Targeting FTO Suppresses Cancer Stem Cell Maintenance and Immune Evasion.

作者信息Rui Su, Lei Dong, Yangchan Li, Min Gao, Li Han, Mark Wunderlich, Xiaolan Deng, Hongzhi Li, Yue Huang, Lei Gao, Chenying Li, Zhicong Zhao, Sean Robinson, Brandon Tan, Ying Qing, Xi Qin, Emily Prince, Jun Xie, Hanjun Qin, Wei Li, Chao Shen, Jie Sun, Prakash Kulkarni, Hengyou Weng, Huilin Huang, Zhenhua Chen, Bin Zhang, Xiwei Wu, Mark J Olsen, Markus Müschen, Guido Marcucci, Ravi Salgia, Ling Li, Amir T Fathi, Zejuan Li, James C Mulloy, Minjie Wei, David Horne, Jianjun Chen
PMID32531268
发布时间2020-07-13
DOI10.1016/j.ccell.2020.04.017

实验完整度

高

包含体外细胞系、原代细胞、小鼠模型、PDX模型、患者样本及多组学数据,并有功能与机制验证(敲除/过表达、突变体、体内成像等)。

主要模型

人AML细胞系(MONOMAC 6、NOMO-1、U937等) 原代AML患者CD34+细胞 小鼠AML模型(MA9、FLT3ITD/NPM1mut) PDX AML小鼠模型(2017–38、AML 3448、AML 2016–9)

重点核对

FTO抑制剂CS1和CS2的浓度(如CS1 100 nM、CS2 200 nM处理48 h;体内5 mg/kg/day隔日给药10次) FTO结合关键残基(CS1: H231/E234;CS2: K216/S229/H231)的突变验证 LILRB4表达变化(qPCR、Western blot、流式细胞术) 体内LIMITING DILUTION ASSAY的细胞剂量梯度(如1×10^6至1×10^2) RNA-seq的生物学重复数(至少3次独立重复)

摘要

FTO是一种RNA N6-甲基腺苷(m6A)去甲基化酶,在多种癌症中发挥致癌作用,为开发有效的靶向治疗提供了机会。在此,我们报道了两种有效的小分子FTO抑制剂,在多种类型的癌症中表现出强烈的抗肿瘤作用。我们发现,FTO的基因缺失和药理抑制通过抑制免疫检查点基因(尤其是LILRB4)的表达,显著减弱白血病干细胞/起始细胞的自我更新能力并重编程免疫反应。FTO抑制使白血病细胞对T细胞细胞毒性敏感,并克服低甲基化药物诱导的免疫逃逸。我们的研究表明,FTO在癌症干细胞自我更新和免疫逃逸中发挥关键作用,并突显了靶向FTO用于癌症治疗的广泛潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
FTO抑制剂能否通过调控m6A修饰抑制癌症干细胞自我更新和免疫逃逸,从而发挥抗癌作用?
核心机制
FTO通过m6A依赖性方式正向调控LILRB4表达(抑制YTHDF2介导的m6A修饰LILRB4 mRNA降解),从而促进免疫逃逸;FTO抑制可降低LILRB4等免疫检查点基因表达,增强T细胞毒性。
主要证据
体外和体内实验表明,CS1/CS2直接结合并抑制FTO活性,降低白血病干细胞频率,抑制LILRB4表达,使AML细胞对T细胞杀伤敏感;在PDX和小鼠模型中延长生存期。
研究意义
靶向FTO可抑制癌症干细胞自我更新和免疫逃逸,为癌症治疗(尤其是AML)提供了有潜力的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

虚拟筛选与FTO抑制剂鉴定

从化合物库中筛选潜在FTO抑制剂

基于FTO晶体结构对NCI DTP库(约260,000化合物)进行分层虚拟筛选(HTVS、SP、XP),选取top370,获得213个化合物,通过MTT和m6A去甲基化酶实验验证,鉴定CS1和CS2。

2

CS1/CS2与FTO直接结合的验证

确认CS1/CS2与FTO蛋白的直接相互作用及结合位点

通过NMR(CPMG、STD)、DARTS、CETSA以及突变体(FTOH231A/E234A、FTOK216A/S229A/H231A)结合实验验证直接结合。

3

FTO抑制对AML细胞活力和干细胞自我更新的影响

评估FTO抑制对AML细胞增殖、凋亡、分化及LSC/LIC自我更新的作用

通过MTT、流式细胞术(凋亡、细胞周期)、集落形成实验和体外/体内极限稀释实验(LDA)检测CS1/CS2或FTO KD对AML细胞及LSC/LIC频率的影响。

4

FTO/m6A轴调控LILRB4表达的机制研究

探究FTO是否通过m6A途径调控免疫检查点基因LILRB4表达

通过qPCR、Western blot、流式细胞术检测LILRB4表达;m6A dot blot和MeRIP-qPCR检测LILRB4 mRNA m6A修饰;mRNA稳定性实验(放线菌素D)分析FTO和YTHDF2对LILRB4 mRNA半衰期的影响。

5

FTO抑制增强T细胞杀伤和克服免疫逃逸

验证FTO抑制是否通过下调LILRB4使AML细胞对T细胞毒性敏感

体外共培养AML细胞(CS1/CS2预处理)与活化T细胞,流式检测GFP+ AML细胞存活;体内联合T细胞治疗或DAC治疗,监测生存期。

6

FTO抑制剂的体内抗白血病及抗实体瘤效果评估

评估CS1/CS2在动物模型中的治疗效力和毒性

在PDX AML模型、鼠AML模型、人乳腺癌皮下移植瘤模型中给予CS1(游离或胶束/β-环糊精包裹)或CS2,监测肿瘤负荷、生存期及毒性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI1640培养基Gibco--
胎牛血清Gemini Bio-Products--
青霉素-链霉素Thermo Fisher Scientific15-140-122
Plasmocin预防剂InvivoGenant-mpp
CellTiter 96非放射性细胞增殖检测试剂盒PromegaG4100
PE Annexin V凋亡检测试剂盒IBD Biosciences559763
碘化丙啶Sigma-AldrichP4170
Hoechst 33342Sigma-AldrichB2261
派洛宁YSigma-AldrichP9172
m6A抗体Synaptic Systems202003
抗FTO抗体Abcamab124892
GAPDH抗体Santa Cruzsc-47724
β-肌动蛋白抗体Cell Signaling Technology3700S
LILRB4抗体Abcamab229747
山羊抗兔IgG H&L(HRP)Abcamab6721
山羊抗小鼠IgG H&L(HRP)Abcamab6789
抗人CD34 FITC抗体eBioscience11-0349-42
抗人LILRB4 PE抗体BioLegend333008
抗人LILRB4 APC抗体eBioscience17-5139-42
抗小鼠Lilrb4 Alexa Fluor 647抗体BioLegend144906
FTOΔN31蛋白----
链霉蛋白酶Roche10165921001
m6A去甲基化酶检测试剂盒Abcamab233489
重组FTO蛋白Active Motif31572
重组ALKBH5蛋白Active Motif31589
重组TET1蛋白Active Motif31417
miRNeasy迷你试剂盒Qiagen217004
QuantiTect逆转录试剂盒Qiagen205314
Maxima SYBR Green qPCR预混液Thermo Fisher ScientificK0253
Magna MeRIP m6A试剂盒Millipore17-10499
D-荧光素GoldbioLUCK
β-环糊精Sigma-AldrichC0926
甲氧基聚乙二醇-聚乳酸嵌段共聚物Sigma-Aldrich900661
地西他滨Sigma-AldrichA3656
嘌呤霉素Sigma-AldrichP8833
G418硫酸盐Thermo Fisher Scientific10131027
杀稻瘟菌素Invivogenant-bl-1
CD3磁珠Miltenyi Biotec130-050-101
CD34磁珠试剂盒Miltenyi Biotec130-046-702
CD14磁珠Miltenyi Biotec130-118-906

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
FTO抑制剂处理
CS1和CS2的浓度、处理时间及溶剂(DMSO)浓度
阅读提示:Methods: Cell Viability and Proliferation Assay; Figure legends 2A-2D
体内给药
给药剂量(5 mg/kg/day)、给药频率(隔日一次)、给药次数(10次)、给药途径(i.p.或i.v.)及制剂(游离、β-CD包裹或胶束包裹)
阅读提示:STAR Methods: Animal Procedures
极限稀释实验
细胞接种密度梯度(体外:100、50、20、10、5、1细胞/孔;体内:1×10^6至1×10^2细胞/小鼠)及重复孔数(12孔/剂量)
阅读提示:STAR Methods: Limiting dilution assays
T细胞共培养
AML细胞与T细胞的比例、共培养时间(12–16小时)及T细胞活化方式(CD3/CD28 Dynabeads和IL-2)
阅读提示:STAR Methods: Co-culture Assay with AML Cells and T cells
RNA-seq
生物学重复数(3–4次)、测序平台(Illumina Hiseq 2500)及数据分析流程(STAR、RSEM、GSEA)
阅读提示:STAR Methods: RNA Sequencing and Data Analysis