NF1缺失与患者预后及内分泌治疗耐药的相关性分析
探究NF1突变在ER+乳腺癌中的频率及其与患者预后的关系
分析TCGA和METABRIC数据库中ER+乳腺癌原发灶和转移灶的NF1突变频率;利用ACOSOG Z1031临床试验数据比较NF1低表达和高表达肿瘤在AI治疗前后的多基因增殖评分(MGPS)。
Neurofibromin Is an Estrogen Receptor-α Transcriptional Co-repressor in Breast Cancer.
包含细胞系、小鼠异种移植模型和患者样本数据,进行了功能验证(细胞生长、基因表达)和机制验证(ChIP、免疫共沉淀、报告基因等)。
MCF-7 ER+乳腺癌细胞系 ZR-75B和T47D ER+乳腺癌细胞系 MCF-7异种移植小鼠模型 WHIM16患者来源异种移植(PDX)模型
NF1敲低或敲除的MCF-7、ZR-75B、T47D细胞在charcoal-stripped血清条件下对4-OHT和E2的生长反应 NF1-I417M(M1突变)和NF1-R1362Q(GAP突变)敲入MCF-7细胞的ER结合和转录活性 ChIP-qPCR检测ER和NF1在ERE位点的招募(配体依赖) MCF-7异种移植模型中DOX诱导NF1敲低后的他莫昔芬和E2处理(剂量、分组) WHIM16 PDX模型中fulvestrant与MEK抑制剂(selumetinib、binimetinib)联合治疗的效果
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究NF1突变在ER+乳腺癌中的频率及其与患者预后的关系
分析TCGA和METABRIC数据库中ER+乳腺癌原发灶和转移灶的NF1突变频率;利用ACOSOG Z1031临床试验数据比较NF1低表达和高表达肿瘤在AI治疗前后的多基因增殖评分(MGPS)。
验证NF1缺失是否导致他莫昔芬激动和雌二醇超敏
在MCF-7、ZR-75B、T47D细胞中通过DOX诱导shRNA或CRISPR敲除NF1,在charcoal-stripped血清条件下用4-OHT或E2处理,检测细胞生长;并在MCF-7异种移植小鼠模型中验证。
确定NF1缺失是否增强ER依赖的转录和ER在ERE上的招募
通过qPCR检测ER靶基因(GREB1、TFF1)表达;RNA-seq分析E2和4-OHT调控的基因表达变化;ChIP-qPCR检测ER在ERE位点的招募。
验证神经纤维瘤蛋白通过M1/M2基序直接结合ER并抑制其转录活性,且独立于GAP活性
免疫共沉淀检测内源性NF1与ER的相互作用;体外pull-down检测纯化NF1-M2/GAP与ER的结合;构建M1(I417A/I418A)和M2(V1308A/V1309A)突变体以及GAP突变体(R1362Q、K1444R),通过双杂交和ERE-luciferase报告基因检测ER结合和抑制活性;CRISPR敲入NF1-I417M和NF1-R1362Q突变细胞,检测生长和基因表达。
研究NF1的亚细胞定位调控及其与ER-ERE复合物的结合
使用Leptomycin B(LMB)阻断核输出,细胞分级分离检测核内NF1;免疫荧光显微镜观察NF1核定位;HeLa核提取物体外ERE pull-down检测NF1与ER-ERE的结合;ChIP-qPCR检测NF1在ERE上的招募。
评估SERD和MEK抑制剂联合治疗NF1缺失ER+乳腺癌的疗效
在NF1敲低的MCF-7、ZR-75B、T47D细胞中检测fulvestrant单药及联合MEK抑制剂(selumetinib、trametinib+dabrafenib)对细胞生长和凋亡的影响;在MCF-7 NF1KD异种移植模型和WHIM16 PDX模型中测试联合治疗对肿瘤生长和消退的作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 活性炭处理胎牛血清 | Sigma-Aldrich | -- |
| 无酚红培养基 | -- | -- | |
| 药物处理 | 17β-雌二醇 | Sigma-Aldrich | E8875 |
| 环糊精包裹的水溶性雌二醇 | Sigma-Aldrich | E4389 | |
| (Z)-4-羟基他莫昔芬 | Sigma-Aldrich | H7904 | |
| 多西环素 | Sigma-Aldrich | D9891 | |
| Leptomycin B | Sigma-Aldrich | L2913 | |
| 蟾蜍灵 | Sigma-Aldrich | B0261 | |
| MG132 | Millipore-Sigma | 474790 | |
| 曲美替尼 | Selleck Chemicals, MedChem Express, or Novartis | S2673 or HY-10999A | |
| 达拉非尼 | Selleck Chemicals or MedChem Express | S2807 or HY-14660A | |
| 氟维司群 | MedChem Express | HY-13636 | |
| 比美替尼 | MedChem Express | HY-15202 | |
| 司美替尼 | Selleck Chemicals or MedChem Express | S1008 or HY-50706 | |
| Western blot | 小鼠单克隆NF1抗体 | This study | -- |
| 兔多克隆NF1抗体 | This study | -- | |
| NF1抗体 | Bethyl Laboratories | A300-140A | |
| NF1抗体 | Cell Signaling Technology | 14623 | |
| 雌激素受体α抗体 | Cell Signaling Technology | 8644 | |
| 雌激素受体α抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-8002X | |
| 磷酸化ERα (Ser118)抗体 | Millipore-Sigma | 05-793 | |
| ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 9102 | |
| 磷酸化ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 9101 | |
| GAPDH抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-32233 | |
| 组蛋白H3抗体 | Cell Signaling Technology | 4499 | |
| Ran抗体 | Cell Signaling Technology | 4462 | |
| SRC-1抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-6096 | |
| HDAC1抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-81598 | |
| p120/RasGAP抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-63 | |
| ChIP | 雌激素受体α抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-8002X |
| NF1抗体 | Bethyl Laboratories | A300-140A | |
| RNA-seq | TruSeq RNA文库制备试剂盒 | Illumina | RS-122-2001 |
| KAPA文库定量试剂盒 | Kapa Biosystems | KR0405 | |
| 细胞活力检测 | CellTiter 96 Aqueous One Solution细胞增殖检测试剂盒 | Promega | -- |
| 细胞凋亡检测 | FITC-Annexin | Becton Dickinson | -- |
| 荧光素酶报告基因实验 | 双荧光素酶报告基因检测试剂盒 | Promega | -- |
| 体外结合实验 | 重组ERα蛋白 | ThermoFisher Scientific | A15674 |
| 动物实验 | 生长因子减少的基质胶 | BD Biosciences | -- |
| 他莫昔芬缓释片 | Innovative Research of America | -- | |
| 雌二醇胶囊(硅胶管) | Dow Corning | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与基因修饰 | 细胞系来源(MCF-7、ZR-75B、T47D)及培养条件;DOX诱导NF1 shRNA的浓度(2 μg/ml)和处理时间;CRISPR敲除或敲入的克隆验证;E2剥夺培养基(charcoal-stripped serum)处理2天。 阅读提示:参见STAR Methods中Cell lines和Plasmids部分,以及Figure S1D和S1L。 |
| 细胞生长实验 | 细胞接种密度和重复数(n=3或n=8);4-OHT浓度(10^-7 M)和E2浓度范围(如10^-12至10^-9 M);处理时间(6天);培养基更换频率(每3天)。 阅读提示:参见STAR Methods中Assays for cell growth and apoptosis,以及Figure 1D、1E和图例。 |
| 免疫共沉淀和ChIP | 配体处理浓度(E2 10^-11 M,4-OHT 10^-7 M)和时间(IP:4小时;ChIP:45分钟);抗体用量和来源;ChIP-qPCR的ERE位点列表和阴性对照区域。 阅读提示:参见STAR Methods中Immunoprecipitation和ChIP,以及Figure 3B、5B、5C图例。 |
| 动物实验 | 小鼠品系和年龄(5-6周龄雌性裸鼠,ovariectomized);E2胶囊规格(0.5 mg E2,硅胶管);肿瘤细胞接种数量(1×10^6)和基质胶;随机分组和样本量(n=8-15);药物剂量和给药途径(fulvestrant 250 mg/kg每周皮下,MEK抑制剂20 mg/kg每日饲料)。 阅读提示:参见STAR Methods中Animals部分,以及Figure 1F、6C图例。 |
| RNA-seq和数据分析 | E2浓度(10^-11 M)和处理时间(24小时);RNA提取试剂盒;测序平台和读长;差异表达分析软件(EBseq)和FDR cutoff(<0.2);GSEA使用的数据库(MSigDB Hallmark)。 阅读提示:参见STAR Methods中RNA-seq部分。 |