生成NPHS2变异iPSC系
建立携带不同NPHS2错义变异的同源iPSC系,用于后续分化研究。
使用CRISPR/Cas9技术将五种致病性错义变异(G92C、P118L、R138Q、R168H、R291W)引入健康成纤维细胞,并同时重编程为iPSC。筛选并验证了纯合克隆,同时生成了患者来源的R168H纯合iPSC系。
Kidney Organoids Generated Using an Allelic Series of NPHS2 Point Variants Reveal Distinct Intracellular Podocin Mistrafficking
包含基因编辑细胞系、患者来源iPSC、肾脏类器官、免疫荧光、Western blot、RNA-seq等多层级验证,并进行了功能验证(凋亡)和机制验证(NEPHRIN相互作用)。
人诱导多能干细胞(iPSC)来源的肾脏类器官 基因编辑的NPHS2变异iPSC系(G92C、P118L、R138Q、R168H、R291W) 患者来源的iPSC系(R168H纯合子和健康杂合子亲本)
NPHS2变异类型及纯合性(Sanger测序) iPSC多能性标志物(SSEA4、TRA-1-60、OCT3/4等) 类器官中肾小球形成和足细胞成熟(NEPHRIN、CLAUDIN-1染色) PODOCIN蛋白水平降低(Western blot和免疫荧光定量) PODOCIN亚细胞定位(与KDEL、GM130、EEA1、RAB7等共定位)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立携带不同NPHS2错义变异的同源iPSC系,用于后续分化研究。
使用CRISPR/Cas9技术将五种致病性错义变异(G92C、P118L、R138Q、R168H、R291W)引入健康成纤维细胞,并同时重编程为iPSC。筛选并验证了纯合克隆,同时生成了患者来源的R168H纯合iPSC系。
将iPSC系分化为包含肾小球和足细胞的肾脏类器官,模拟肾脏发育。
采用既定方案将iPSC分化为肾脏类器官,通过CHIR99021和FGF9处理诱导后肾间充质分化,并生物打印成3D聚集体,培养至D7+18天。
确认类器官中包含成熟的肾小球和足细胞,以确保模型的有效性。
通过免疫荧光染色检测NEPHRIN、CLAUDIN-1、LTL、E-CADHERIN等标志物,确认肾小球、近端小管、远端小管等结构的存在。
评估NPHS2变异对PODOCIN蛋白水平和亚细胞定位的影响。
通过免疫荧光和Western blot检测PODOCIN蛋白水平,并使用亚细胞标记物(KDEL、GM130、EEA1、RAB7、LAMP1等)进行共定位分析,量化PODOCIN在不同细胞器中的分布。
探索NPHS2变异对足细胞转录组的影响。
分离肾小球进行bulk RNA-seq,比较变异与对照组的差异表达基因,并进行通路富集分析。
评估NPHS2变异是否诱导足细胞凋亡及其与ER应激的关系。
通过cleaved CASPASE-3免疫荧光染色检测凋亡,通过XBP1剪接和DDIT3表达检测ER应激。
研究PODOCIN变异对NEPHRIN定位的影响。
通过共定位分析NEPHRIN与PODOCIN的重叠,评估不同变异对NEPHRIN结合和运输的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | TrypLE Select | Gibco | 12563-029 |
| Matrigel | Corning | 354277 | |
| DMEM | Thermo Fisher Scientific | 11965-062 | |
| 培养基 | Essential 8培养基 | Thermo Fisher Scientific | A1517001 |
| 基因编辑 | Neon转染系统 | -- | -- |
| 类器官分化 | CHIR99021 | TOCRIS Bioscience | S442350 |
| FGF9 | R&D Systems | 273-F9-025 | |
| 类器官生物打印 | 气密注射器 | Hamilton | 7656-05 |
| 免疫荧光 | DAPI | Molecular Probes | D1306 |
| 蛋白质提取 | RIPA裂解缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | 89900 |
| Halt蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 | Thermo Fisher Scientific | 78440 | |
| 蛋白质定量 | Pierce BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23227 |
| Western blot | Laemmli缓冲液 | Sigma Aldrich | S3401-10VL |
| Mini-PROTEAN TGX Stain-Free蛋白凝胶 | Bio-Rad Laboratories | 4568084 | |
| Trans-Blot Turbo Mini硝酸纤维素转印膜 | Bio-Rad Laboratories | 1704158 | |
| Trans-Blot Turbo系统 | Bio-Rad Laboratories | -- | |
| 丽春红S染色 | Sigma Aldrich | P7170 | |
| Clarity Western ECL底物 | Bio-Rad Laboratories | 1705060 | |
| ChemiDoc成像系统 | Bio-Rad Laboratories | -- | |
| RNA提取 | PureLink RNA小量提取试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 12183018A |
| RNA-seq | TruSeq链式mRNA文库制备试剂盒 | Illumina | -- |
| NovaSeq 6000测序仪 | Illumina | -- | |
| RT-qPCR | NanoDrop 2000分光光度计 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| SensiFAST cDNA合成试剂盒 | Bioline | BIO-65053 | |
| RQ1无RNase的DNase试剂盒 | Promega | M6101 | |
| GoTaq qPCR预混液 | Promega | A6001 | |
| LightCycler 480 II实时荧光定量PCR仪 | Roche | -- | |
| XBP1 PCR | GoTaq G2 Green预混液 | Promega | M7823 |
| 流式细胞术 | LSR II流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 成像 | Dragonfly转盘共聚焦显微镜 | Andor Technology | -- |
| Andor Zyla相机 | Andor Technology | -- | |
| 患者iPSC重编程 | 仙台病毒 | Life Technologies | A167517 |
| 聚凝胺 | -- | -- | |
| StemSpan SFEM II培养基 | Stem Cell Technologies | 09605 | |
| 红系扩增培养基 | Stem Cell Technologies | 02692 | |
| 流式细胞术 | Foxp3固定/破膜缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | 00-5523-00 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| iPSC生成与基因编辑 | 细胞来源、基因编辑方法、转染条件、克隆筛选标准 阅读提示:Methods: iPSC Line Generation - Gene-Edited iPSC Lines |
| 肾脏类器官分化 | CHIR99021和FGF9的浓度处理时间、细胞密度、培养天数 阅读提示:Methods: Kidney Organoid Differentiation |
| PODOCIN表达和定位分析 | 抗体稀释度、固定和染色条件、图像分析参数 阅读提示:Methods: Whole-Mount Immunostaining and Imaging, Image Analysis and Quantification |
| Western blot | 蛋白提取量、上样量、抗体信息、显影条件 阅读提示:Methods: Protein Extraction and Western Blotting |
| 转录组分析 | RNA提取方法、测序平台、分析流程参数 阅读提示:Methods: RNA Extraction, Bulk RNA Sequencing, and Data Analysis |