构建可降解三敲除小鼠ESC体系
建立可在1小时内急性降解全部三种H3K9me3 KMTs的细胞模型,以高时间分辨率研究H3K9me3异染色质动态。
从cTKO小鼠ESC出发,在Suv39h2纯合缺失背景中对Suv39h1敲入mini-IAA7、对Setdb1敲入dTAG,并将atAFB2敲入TIGRE安全港位点,获得dTKO细胞;验证多能性标志物表达、嵌合体分化能力和H3K9me3 ChIP信号与亲本细胞一致。
Distinct H3K9me3 heterochromatin maintenance dynamics govern different gene programmes and repeats in pluripotent cells.
构建dTKO小鼠ESC,结合 degron降解、ChIP-seq/ATAC-seq/TT-seq、质谱、数学建模及siRNA敲低进行功能与机制验证
dTKO小鼠胚胎干细胞(Suv39h2敲除背景,Suv39h1-IAA7和Setdb1-dTAG标记) 亲本cTKO小鼠胚胎干细胞
auxin 100 μg/ml与dTAG13 0.5 μM处理降解时间进程(0、1、3、6、12、24、48小时) 1 mM thymidine处理6小时阻断DNA合成以区分被动稀释 QC6352 100 nM抑制KDM4或KDM4A-C siRNA敲低(各6.7 nM) NFYA siRNA敲低3天后进行降解时间进程 Dppa2 siRNA敲低3天后进行降解时间进程
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立可在1小时内急性降解全部三种H3K9me3 KMTs的细胞模型,以高时间分辨率研究H3K9me3异染色质动态。
从cTKO小鼠ESC出发,在Suv39h2纯合缺失背景中对Suv39h1敲入mini-IAA7、对Setdb1敲入dTAG,并将atAFB2敲入TIGRE安全港位点,获得dTKO细胞;验证多能性标志物表达、嵌合体分化能力和H3K9me3 ChIP信号与亲本细胞一致。
确定KMTs降解后H3K9me3的衰减速率及被动稀释与主动移除的相对贡献。
用auxin和dTAG13同时处理dTKO细胞,Western blot检测染色质组分中SETDB1-HA、SUV39H1-V5、H3K9me3和组蛋白H3;质谱分析酸提组蛋白和染色质组分;通过thymidine阻断DNA合成及KDM4A-C敲低或QC6352抑制评估被动稀释和主动移除的贡献。
在全基因组水平解析H3K9me3和HP1β的衰减动力学及染色质开放和转录激活的关系。
进行spike-in归一化H3K9me3和HP1β ChIP-seq、ATAC-seq、TT-seq及染色质组分质谱,选取1、3、12、24、48小时时间点分析结构域水平变化、衰减速率拟合及残留HP1β峰。
根据H3K9me3丢失时序划分稳定性簇,并用数学模型和染色质状态模型解释不同稳定性的决定因素。
基于相对丢失时间将H3K9me3结构域分为early(1498个)、intermediate(30660个)、late(8772个)和residual(1960个)四簇;拟合指数衰减模型;构建K+/K-数学模型模拟初始水平和衰减速率;用16状态ChromHMM模型分析染色质特征与衰减速率的关系。
检验HP1阈值水平如何控制染色质压缩,以及先锋因子结合是否促进H3K9me3进一步丢失和基因/重复序列激活。
比较H3K9me3或HP1β信号与ATAC信号的相关性及阈值;ATAC footprinting分析转录因子结合;ChIP-qPCR检测OCT4结合;NFYA siRNA敲低后Western blot检测H3K9me3并RT-qPCR检测MMERVK10C;Dppa2 siRNA敲低后检测L1Md_T和总LINE1转录水平。
确定H3K9me3丢失对干细胞自我更新、谱系基因和重复序列表达的影响。
进行碱性磷酸酶染色评估自我更新能力;TT-seq分析激活的蛋白编码基因和转座元件;比较与已发表HP1 TKO数据的重叠;分析下调基因的Dppa2结合和H3K27me3变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 高糖DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| GlutaMAX添加剂 | -- | -- | |
| MEM非必需氨基酸 | -- | -- | |
| ESGRO白血病抑制因子 | -- | -- | |
| PD0325901 | -- | -- | |
| CHIR99021 | -- | -- | |
| 细胞传代 | TryLE胰蛋白酶样酶 | Thermo | 12605010 |
| TryPLE酶 | -- | -- | |
| 细胞培养 | Lipofectamine 3000转染试剂 | -- | -- |
| 细胞筛选 | 杀稻瘟菌素S盐酸盐 | Thermo | R21001 |
| 质粒构建 | Gibson组装试剂盒 | NEB | E2611 |
| eSpCas9(1.1)质粒 | addgene | 71814 | |
| 蛋白降解处理 | 生长素 | -- | -- |
| dTAG13降解剂 | -- | -- | |
| 细胞周期阻断 | 胸苷 | -- | -- |
| EdU检测 | Click-iT EdU细胞增殖检测试剂盒 | Thermo | C10337 |
| 流式分析 | BD Accuri C6流式细胞仪 | BD | -- |
| KDM4抑制 | QC6352 | MedChemExpress | HY-104048 |
| KDM4A-C敲低 | KDM4A SMARTpool siRNA | Dharmacon | 230674 |
| KDM4B SMARTpool siRNA | Dharmacon | 193796 | |
| KDM4C SMARTpool siRNA | Dharmacon | 76804 | |
| Silencer Select非靶向对照siRNA | Thermo | 4390843 | |
| siRNA转染 | Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Thermo | 13778150 |
| 蛋白提取 | Trizol试剂 | Thermo | 15596026 |
| Western blot | LDS样品缓冲液 | Thermo | NP0008 |
| 样品还原剂 | Thermo | NP004 | |
| H3K9me3抗体 | Abcam | ab8898 | |
| 组蛋白H3抗体 | Abcam | ab1791 | |
| H4K20me3抗体 | Millipore | 07-463 | |
| H3K9me2抗体 | Abcam | ab1120 | |
| H3K27me3抗体 | Millipore | 07-449 | |
| NF-YA抗体 | Santa Cruz | sc-17753 | |
| α-微管蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | 2144 | |
| Dppa2抗体 | Millipore | MAB4356 | |
| Kdm4a抗体 | Thermo Fisher | PA5-14782 | |
| Kdm4b抗体 | Bethyl | A301-478A | |
| HP1α抗体 | Cell Signaling Technology | 2616 | |
| HP1β抗体 | Cell Signaling Technology | 8676 | |
| HP1γ抗体 | Cell Signaling Technology | 2619 | |
| Mpp8抗体 | Proteintech | 16796-1-AP | |
| TRIM28抗体 | Abcam | ab22553 | |
| YTHDC1抗体 | Cell Signaling Technology | 77422 | |
| Mettl3抗体 | Bethyl | A301-567A | |
| HA抗体 | BioLegend | 901533 | |
| V5抗体 | eBioscience | 14-6796-82 | |
| Suv39h1抗体 | Thermo Fisher | 702443 | |
| Setdb1抗体 | Proteintech | 11231-1-AP | |
| 驴抗小鼠HRP二抗 | Jackson ImmunoResearch laboratories | 715-035-150 | |
| 驴抗兔HRP二抗 | Jackson ImmunoResearch laboratories | 711-035-152 | |
| 驴抗山羊HRP二抗 | Jackson ImmunoResearch laboratories | 705-035-003 | |
| 质谱样品制备 | Pierce C18吸头 | Thermo Scientific | -- |
| ChIP-seq | 果蝇spike-in染色质 | -- | -- |
| Protein A/G磁珠 | -- | -- | |
| H4K20me3抗体 | Abcam | ab8896 | |
| Dppa2/4抗体 | R&D Systems | AF3730 | |
| Qubit高灵敏度DNA检测试剂盒 | -- | -- | |
| ChIP-seq建库 | NEBNext Ultra II DNA文库构建试剂盒 | NEB | E7645 |
| Ampure XP磁珠 | -- | -- | |
| 高灵敏度D1000 DNA ScreenTape | Agilent | 5067-5584 | |
| Agilent Tapestation 4150 | Agilent | -- | |
| ATAC-seq | Zymo DNA纯化浓缩试剂盒 | Zymo | D4014 |
| TT-seq | 4-硫尿苷 | Glentham Life Sciences | GN6085 |
| 4-硫尿嘧啶 | Sigma | 440736 | |
| MTSEA生物素-XX连接子 | Biotium | BT90066 | |
| μMACS链霉亲和素微珠 | Miltenyi | 130-074-101 | |
| μMACS磁力分离器 | Miltenyi | 130-042-602 | |
| MACS多支架 | Miltenyi | 130-042-303 | |
| RNeasy MinElute纯化试剂盒 | Qiagen | 74204 | |
| TT-seq建库 | NEBNext Ultra II定向RNA文库构建试剂盒 | NEB | E7760 |
| 质谱分析 | QExactive HF质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 超声打断 | Covaris超声破碎仪 | Covaris | -- |
| 测序 | Illumina NextSeq 500测序仪 | Illumina | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| KMTs急性降解与H3K9me3衰减时间进程 | auxin终浓度100 μg/ml、dTAG13终浓度0.5 μM、处理时间点0/1/3/6/12/24/48小时、超过24小时需每日补充degron 阅读提示:Methods中Mouse ESC derivation, culture, and maintenance小节及Fig. 1b图注 |
| 被动稀释与主动移除的区分 | 1 mM thymidine处理6小时、每24小时补充、EdU掺入验证DNA合成阻断;KDM4A-C siRNA各6.7 nM或QC6352 100 nM预处理2天 阅读提示:Methods中Thymidine treatment and KDM4 inhibition or knockdown小节及Fig. 1e–h图注 |
| HP1β和H3K9me3 ChIP-seq的spike-in归一化 | 20 μg小鼠染色质加12.5 ng Drosophila spike-in染色质、H3K9me3抗体0.5 μg、HP1β抗体1 μg 阅读提示:Methods中Chromatin Immunoprecipitation小节 |
| ATAC-seq和TT-seq时间点与重复 | ATAC-seq含0/3/6/12/24/48小时、TT-seq含0/3/12/24/48小时、生物学重复三次、4SU 1 mM标记10分钟 阅读提示:Methods中ATAC-seq和TT-seq小节及Fig. 2a图注 |
| NFYA和Dppa2敲低验证 | siRNA处理3天后进行降解时间进程、RT-qPCR以TBP为内参、生物学重复三次 阅读提示:Methods中Thymidine treatment and KDM4 inhibition or knockdown小节、Fig. 7a–b、8h–i图注 |
| 数学建模与ChromHMM参数 | K+/K-模型参数扫描范围及模拟重复次数、四簇结构域数量、16状态ChromHMM所用数据集 阅读提示:Methods中Mathematical modeling of H3K9me3 decay和ChromHMM modeling小节及Fig. 3d–e图注 |