mTORC2驱动的染色质cGAS通过表观遗传重编程介导结直肠癌的化疗耐药

mTORC2-driven chromatin cGAS mediates chemoresistance through epigenetic reprogramming in colorectal cancer.

作者信息Guoqing Lv, Qian Wang, Lin Lin, Qiao Ye, Xi Li, Qian Zhou, Xiangzhen Kong, Hongxia Deng, Fuping You, Hebing Chen, Song Wu, Lin Yuan
PMID39080411
发布时间2024-09
DOI10.1038/s41556-024-01473-0

实验完整度

高

含体外细胞、小鼠异位移植瘤、PDX及AOM/DSS模型,并完成磷酸化位点、CUT&Tag、ChIP和功能回补验证

主要模型

HCT116结直肠癌细胞系 BALB/c nude小鼠皮下异位移植瘤模型 RICTOR+/+和RICTOR−/−结直肠癌PDX模型 AOM/DSS诱导的cGAS-KO小鼠结肠炎相关结直肠癌模型

重点核对

cGAS S37A/S37D及S213D突变体在cGAS敲低/敲除HCT116细胞中的回补实验 RICTOR敲除或敲低及JR-AB2-011处理对cGAS Ser37磷酸化和染色质定位的影响 5-FU浓度梯度处理24 h后的细胞活力及 colony formation 实验 小鼠异位移植瘤中5-FU 23 mg/kg每周两次腹腔注射连续5周 PDX和AOM/DSS模型中5-FU 23 mg/kg与BPTES 30 mg/kg每周两次联合给药5周

摘要

环鸟苷酸-腺苷酸合成酶(cGAS)是一种胞质DNA感受器,启动STING依赖的先天免疫反应,其紧密结合染色质并被抑制催化活性;然而,cGAS被招募至染色质的机制及染色质结合cGAS(ccGAS)的功能尚不清楚。本研究发现,mTORC2介导的人cGAS丝氨酸37磷酸化促进其在结直肠癌细胞中的染色质定位,以STING非依赖方式调控细胞生长和耐药。本研究发现ccGAS在特定染色质区域招募SWI/SNF复合物,改变与谷氨酰胺分解和DNA复制相关基因的表达。尽管ccGAS缺失抑制细胞生长,但在体外和体内诱导对氟尿嘧啶的化疗耐药。此外,阻断ccGAS下游靶点肾型谷氨酰胺酶可克服ccGAS缺失引起的化疗耐药。因此,ccGAS通过表观遗传模式协调结直肠癌的可塑性和获得性化疗耐药。靶向mTORC2–ccGAS和谷氨酰胺酶是消除静息耐药癌细胞的一种有前景的策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
cGAS如何被招募至染色质,染色质结合的ccGAS在结直肠癌中发挥何种功能,以及其与化疗耐药的关系。
核心机制
mTORC2直接磷酸化cGAS丝氨酸37,促进ccGAS在特定染色质区域招募SWI/SNF复合物,调控DNA复制和谷氨酰胺分解相关基因(包括负调控KGA)的表达,从而协调结直肠癌可塑性和获得性化疗耐药。
主要证据
体外激酶实验和质谱鉴定Ser37为mTORC2磷酸化位点;S37D/S37A突变体结合染色质及回补实验;CUT&Tag和ChIP显示ccGAS结合KGA启动子;cGAS敲低后TMT蛋白质组学显示DNA复制蛋白下调和KGA上调;细胞活力、异位移植瘤、PDX和AOM/DSS模型显示ccGAS缺失诱导5-FU耐药,BPTES可逆转。
研究意义
揭示mTOR抑制介导化疗耐药的机制,提示靶向mTORC2–ccGAS–KGA轴可能改善结直肠癌治疗。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

高通量筛选鉴定cGAS–染色质定位调控通路

寻找调控cGAS与染色质相互作用的分子通路。

在HCT116细胞中建立GFP2-cGAS与Rluc8-H2A的eBRET2生物传感器,对8,326种化合物文库进行高通量筛选,并用免疫荧光和染色质分级验证PI3K–mTOR通路作用。

2

确定mTORC2而非mTORC1调控cGAS染色质定位

区分mTORC1和mTORC2在cGAS–染色质定位中的作用。

用shRNA敲低RAPTOR或RICTOR,结合免疫荧光、eBRET2和染色质分级检测cGAS–染色质结合。

3

鉴定mTORC2对cGAS丝氨酸37的磷酸化

验证mTORC2是否直接磷酸化cGAS并确定位点。

体外激酶实验结合LC–MS/MS鉴定磷酸化位点;在RICTOR敲除细胞中检测p-Ser37-cGAS水平及RICTOR回补;用S37D/S37A突变体评估染色质定位。

4

解析ccGAS染色质结合图谱及互作蛋白

明确ccGAS在基因组上的结合区域及招募的染色质重塑复合物。

CUT&Tag检测cGAS染色质结合位点;免疫共沉淀结合LC–MS/MS鉴定ccGAS互作蛋白;Co-IP验证SWI/SNF组分结合。

5

验证ccGAS对下游基因表达的调控

确定ccGAS调控的靶基因及其与SWI/SNF的关系。

TMT定量蛋白质组学比较cGAS敲低细胞;ChIP–qPCR检测cGAS和ARID1A在KGA启动子的占据;qPCR和免疫印迹检测KGA及DNA复制相关基因表达。

6

评估ccGAS缺失对细胞生长和化疗敏感性的影响

验证ccGAS在细胞增殖、细胞周期和5-FU耐药中的作用。

细胞周期FACS分析、平板克隆形成、细胞计数和CCK-8/alamarBlue细胞活力检测,比较cGAS敲低及S37D/S37A/S213D回补条件下对5-FU的敏感性。

7

体内验证ccGAS对肿瘤生长和5-FU应答的作用

在动物模型中验证ccGAS缺失是否抑制肿瘤生长并诱导化疗耐药。

HCT116细胞皮下接种裸鼠,观察肿瘤形成、体积和重量;肿瘤直径达5 mm后腹腔注射5-FU,比较cGAS敲低及S37D/S37A回补组的治疗反应。

8

在PDX和AOM/DSS模型中验证KGA抑制逆转耐药

验证抑制KGA能否克服mTORC2–ccGAS轴破坏引起的5-FU耐药。

建立RICTOR−/−和RICTOR+/+ PDX模型,以及cGAS-KO小鼠AOM/DSS结肠炎相关结直肠癌模型,给予5-FU单药或联合BPTES,评估肿瘤生长和负荷。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
GDC-0941SelleckS1065
BEZ-235SelleckS1009
MK-2206SelleckS1078
雷帕霉素SelleckS1039
KU-0063794SelleckS1226
PF-4708671SelleckS2163
JR-AB2-011SelleckE1151
诺考达唑SelleckS2775
5-氟尿嘧啶SelleckS1209
2′,3′-cGAMPSelleckS7904
BPTESSelleckS7753
生物活性化合物库SelleckL1700
氧化偶氮甲烷SigmaA5486
ADU-S100MedChemExpressHY-12885
抗cGAS抗体(D1D3G)CST15102
抗KGA抗体Proteintech20170-1-AP
抗GAC抗体InvitrogenPA5-40134
抗HA琼脂糖SigmaA2095
抗FLAG M2磁珠SigmaM8823
染色质提取试剂盒Abcamab117152
ProteoExtract蛋白提取试剂盒Millipore539790
EZ-Magna ChIP G试剂盒Sigma-Aldrich17-409
CUTANA pAG-Tn5转座酶Epicycpher15-1117
刀豆蛋白A磁珠(BioMag Plus)--86057
CCK-8细胞活力检测试剂盒Dojindo--
alamarBlue细胞活力检测试剂Invitrogen--
GLS检测试剂盒Biomedical Research Service--
基质胶Corning354234
葡聚糖硫酸钠MP Biomedicals0216011010

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
eBRET2高通量筛选
化合物终浓度约10 µM,处理6 h;每孔5×10^4细胞;DeepBlueC终浓度5 µM
阅读提示:Methods“High-throughput screening based on eBRET2 technique”及Fig. 1b,c图注
mTORC2磷酸化cGAS体外实验
重组Flag–cGAS 4 µg,ATP 200 µM,30 °C 1 h;RICTOR免疫沉淀来源的mTORC2
阅读提示:Methods“In vitro phosphorylation assays”及Fig. 2e图注
cGAS突变体回补及5-FU敏感性
cGAS shRNA稳定敲低HCT116细胞;S37D、S37A、S213D突变体;5-FU浓度梯度处理24 h
阅读提示:Methods“Cell viability measurements”及Fig. 4f–h图注
裸鼠异位移植瘤及5-FU治疗
每只皮下注射2×10^6细胞;肿瘤直径达5 mm后5-FU 23 mg/kg每周两次腹腔注射连续5周;每组5–8只
阅读提示:Methods“Tumour growth assay”及Fig. 5d–g、Fig. 6a图注
PDX和AOM/DSS模型联合BPTES
5-FU 23 mg/kg和BPTES 30 mg/kg每周两次连续5周;AOM 10 mg/kg;DSS浓度2.5%或5%
阅读提示:Methods“PDX establishment”和“Mouse models of colitis-associated colorectal cancer”及Fig. 6g、Fig. 7b–d图注