PPIA在HSPC中的丰度与功能缺失表型分析
确定PPIA在造血干/祖细胞中的表达丰度及其缺失对造血干细胞功能的影响。
通过2D凝胶电泳和质谱分析小鼠HSPC蛋白质组;进行竞争性骨髓移植和连续移植,流式细胞术分析外周血和骨髓嵌合、髓系/淋系比例、HSPC和CD150high HSC比例及长期再增殖能力。
Cyclophilin A supports translation of intrinsically disordered proteins and affects haematopoietic stem cell ageing.
包含体外细胞系、原代小鼠HSPC、骨髓移植模型、衰老小鼠及多组学验证,并有功能与机制验证
小鼠造血干/祖细胞(HSPC) Ppia敲除与杂合小鼠骨髓移植模型 HeLa与293T细胞系 OCI-AML3细胞系
竞争性骨髓移植:CD45.2+ Ppia−/−或Ppia+/−供体细胞与等量CD45.1+野生型支持细胞共移植,每组n=10起始 PPIA底物鉴定:比较野生型PPIA与G104A突变体共免疫沉淀,底物定义为野生型PSM丰度至少高1.5倍 PPIA敲低效率:Kd1和Kd2构建体经免疫印迹验证>80%敲低效率 应激颗粒诱导:sodium arsenite 50 μM处理1小时,G3BP1免疫染色定量 衰老比较:年轻(4-6月或5月)与年老(23月、28月或31-33月)小鼠HSPC的蛋白质组与转录组比较
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定PPIA在造血干/祖细胞中的表达丰度及其缺失对造血干细胞功能的影响。
通过2D凝胶电泳和质谱分析小鼠HSPC蛋白质组;进行竞争性骨髓移植和连续移植,流式细胞术分析外周血和骨髓嵌合、髓系/淋系比例、HSPC和CD150high HSC比例及长期再增殖能力。
验证PPIA表达水平与造血干细胞衰老表型之间的因果关系。
将18月龄小鼠lin−/Sca1+/c-Kit+细胞用表达Ppia或对照(反向互补)的慢病毒转导,移植入致死照射受体,随访6个月分析外周血嵌合和髓系偏斜。
鉴定PPIA的直接底物蛋白并分析其结构特征。
在293T细胞中转染3XF-WT PPIA或3XF-G104A突变体PPIA,进行共免疫沉淀和质谱鉴定差异结合蛋白;用IUPred2A预测IDR含量并与总蛋白质组比较;用IP-免疫印迹验证内源性PPIA与PABPC1、DDX6、NPM1、G3BP1的相互作用。
验证PPIA是否在翻译水平促进其底物的合成。
在HeLa和293T细胞中进行脉冲SILAC实验,比较对照和PPIA敲低细胞中新合成蛋白质的重/轻同位素比值;用荧光嘌呤霉素类似物(OPP)标记原代HSPC,检测PPIA抑制剂TMN355处理后的翻译速率。
验证PPIA是否影响其底物的液-液相分离及无膜细胞器形成。
在HeLa细胞中敲低PPIA,用sodium arsenite诱导应激颗粒,免疫染色G3BP1定量应激颗粒;免疫染色DDX6定量P小体;在NPM1-mCherry敲入OCI-AML3细胞中定量核仁大小和形态;用PLA在原代HSC中验证PPIA与PABPC1、DDX6、NPM1的相互作用。
验证PPIA表达和IDR丰富蛋白水平是否随造血干细胞衰老而下降。
用PLA定量年轻(5月龄)和年老(23月龄)小鼠HSC中PPIA蛋白水平;用TMT MS/MS和RNA-seq比较年轻与年老及Ppia+/−与Ppia−/−小鼠HSPC蛋白质组和转录组中IDR含量。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 二维凝胶电泳 | Zoom IPGRunner系统 | Invitrogen | -- |
| CyDyes DIGE荧光染料 | Amersham | -- | |
| Typhoon FLA 9000扫描仪 | GE Healthcare | -- | |
| 质谱分析 | LTQ线性离子阱质谱仪 | Thermo | -- |
| LTQ Orbitrap Elite质谱仪 | Thermo Scientific | -- | |
| Q Exactive Plus质谱仪 | Thermo Scientific | -- | |
| Orbitrap Fusion三合一质谱仪 | Thermo Scientific | -- | |
| Orbitrap Fusion Lumos三合一质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 纳升高效液相色谱1000系统 | Thermo Scientific | -- | |
| UltiMate 3000二元纳升液相色谱系统 | Dionex | -- | |
| 细胞培养与处理 | TMN355 | Selleckchem | -- |
| MG132 | -- | -- | |
| 免疫沉淀与免疫印迹 | 抗FLAG抗体(M2克隆) | Millipore Sigma | -- |
| 抗PPIA抗体(ab58144) | Abcam | ab58144 | |
| 抗PABPC1抗体(4992) | Cell Signaling Technology | 4992 | |
| 抗DDX6抗体(14632-1-AP) | Proteintech | 14632-1-AP | |
| 抗NPM1抗体(10306-1-AP) | Proteintech | 10306-1-AP | |
| 抗G3BP1抗体(13057-2-AP) | Proteintech | 13057-2-AP | |
| 邻近连接 assay | Duolink原位红色起始试剂盒(小鼠/兔)(DUO92101) | Millipore Sigma | DUO92101 |
| RNA测序 | TruSeq链特异性总RNA文库制备试剂盒 | Illumina | -- |
| SMARTer链特异性总RNA测序试剂盒v.2(634418) | Takara Bio | 634418 | |
| HiSeq2500测序仪 | Illumina | -- | |
| NovaSeq 6000系统 | Illumina | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 竞争性骨髓移植 | 供体细胞类型与数量(CD45.2+总骨髓细胞375,000)、竞争细胞数量(等量CD45.1+)、致死照射剂量(9.5 Gy)、每组起始n=10、分析时间点(移植后6个月和7个月) 阅读提示:Methods 'Transplantations'和'PB and BM cell analysis'小节;Fig. 1c,d,e,f图注 |
| 连续移植 | 每轮供体细胞数(500,000)、竞争细胞数(500,000)、二次移植时间(首次移植后2个月)、第三次移植时间(二次后2个月)、最终评估时间(第三次移植后7个月)、每组n=5(第一轮)和n=8(第二和第三轮) 阅读提示:Methods 'Serial transplantations'小节;Fig. 1g,h图注 |
| PPIA底物鉴定 | PPIA突变体(G104A)选择依据、转染时间(48小时)、免疫沉淀抗体(抗FLAG M2克隆,4 μl,1 μg/μl)、底物判定阈值(野生型PSM至少1.5倍于突变体)、质谱平台(LTQ Orbitrap Elite和Q Exactive Plus) 阅读提示:Methods 'Immunoprecipitations and western blots'和'MS/MS'小节;Fig. 3a,c图注 |
| 脉冲SILAC | 标记时间(24小时)、重同位素氨基酸浓度(0.46 mM赖氨酸-2HCl,0.47 mM精氨酸-HCl)、细胞类型(HeLa和293T)、PPIA敲低构建体(Kd1/Kd2,>80%敲低效率)、嘌呤霉素筛选浓度(2 μg/ml) 阅读提示:Methods 'Pulsed SILAC'和'Cell culture and drug treatments'小节;Fig. 4a,b,c图注 |
| 应激颗粒和P小体形成 | sodium arsenite浓度(50 μM)和处理时间(1小时)、PPIA敲低细胞系(HeLa Kd1)、TMN355浓度(10 μM)和处理时间(24-48小时)、G3BP1和DDX6抗体货号、成像设备(Celldiscoverer 7) 阅读提示:Methods 'Cell culture and drug treatments'小节;Fig. 5a,b图注 |
| 衰老比较蛋白质组与转录组 | 小鼠年龄(年轻4-6月或5月,年老23月、28月或31-33月)、HSPC分离方法(EasySep试剂盒)、TMT标记试剂(TMTsixplex)、RNA-seq平台(HiSeq2500或NovaSeq 6000)、每组n=3(Ppia+/− vs Ppia−/−)或n=2(年轻 vs 年老) 阅读提示:Methods 'Tandem-mass-tag isobaric labelling'和'RNA sequencing'小节;Fig. 6b,c图注;Extended Data Fig. 4b,c,d |