建立iNeuron分化系统并监测ER重塑
确认体外神经发生过程中ER蛋白质组和形态的动态变化。
将hESC分化为iNeuron,在分化第0、4、12天等时间点收集样本,通过蛋白质组学、免疫荧光和免疫印迹检测ER蛋白丰度和ER形态。
Combinatorial selective ER-phagy remodels the ER during neurogenesis.
包含体外iNeuron模型、基因编辑突变体、蛋白质组学、流式细胞术、活细胞成像和cryo-ET等多种独立证据层级,并进行了功能验证和机制验证。
人胚胎干细胞(hESC)来源的诱导神经元(iNeuron) ER自噬受体单敲除和组合敲除hESC系 表达Keima报告基因的iNeuron
iNeuron分化天数(day 0, 4, 12, 20, 30) 基因敲除验证(测序和免疫印迹) Keima流式细胞术中的BAFA(100 nM, 4 h)归一化 VPS34抑制剂SAR405(1 μM)处理时间 TMT蛋白质组学的生物学重复数(n=3-4)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认体外神经发生过程中ER蛋白质组和形态的动态变化。
将hESC分化为iNeuron,在分化第0、4、12天等时间点收集样本,通过蛋白质组学、免疫荧光和免疫印迹检测ER蛋白丰度和ER形态。
分析单个和组合ER自噬受体在ER重塑中的功能。
使用CRISPR-Cas9基因编辑技术,在hESC中依次敲除FAM134A、FAM134B、FAM134C、TEX264和CCPG1,获得单敲、双敲、三敲、四敲和五敲细胞系,并通过测序和免疫印迹验证。
定量评估不同受体突变对ER蛋白向溶酶体递送的影响。
在突变细胞中表达Keima-RAMP4或Keima-REEP5报告基因,通过流式细胞术和荧光成像测量酸性/中性Keima荧光比值,计算ER自噬通量。
观察ER自噬受体在神经元突起中的自噬体捕获和运输。
在iNeuron中表达TEX264-GFP或FAM134C-GFP与mCherry-LC3B,通过活细胞成像追踪puncta运动,并结合免疫荧光和cryo-ET观察自噬体中的ER。
全面鉴定不同ER自噬受体敲除后ER蛋白丰度变化,揭示底物选择性。
对单敲和组合敲除iNeuron(day 12)进行TMT标记的定量蛋白质组学,结合线性模型分析β系数,鉴定受体特异性 cargo。
确认候选底物的自噬依赖性降解及受体贡献。
通过免疫印迹、Keima-VAPA通量实验和FAM134C-GFP回补实验,验证特定ER蛋白(如REEP1, VAPA)的积累和受体依赖性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 基质胶 | Corning | 354230 |
| DMEM/F12培养基 | Thermo Fisher Scientific | 11330057 | |
| 神经基础培养基 | Thermo Fisher Scientific | 21103049 | |
| N-2添加剂 | Thermo Fisher Scientific | 17502048 | |
| B27添加剂 | Thermo Fisher Scientific | 17504001 | |
| 脑源性神经营养因子 | Peprotech | 450-02 | |
| 神经营养因子3 | Peprotech | 450-03 | |
| 多西环素 | Sigma-Aldrich | D9891 | |
| 药物处理 | 巴弗洛霉素A1 | Cayman Chemical | 88899-55-2 |
| SAR405 | Apexbio | A8883 | |
| 衣霉素 | Cell Signaling | 12819S | |
| 转染 | Lipofectamine 3000 | Invitrogen | L3000008 |
| 基因编辑 | GeneArt Precision gRNA合成试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | A29377 |
| SpCas9蛋白 | -- | -- | |
| 蛋白质组学 | TMTpro 16plex标记试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | A44520 |
| 胰蛋白酶 | Promega | V511C | |
| Lys-C蛋白酶 | Wako Chemicals | 129-02541 | |
| 免疫印迹 | 兔抗ATG5单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | 12994S |
| 兔抗FAM134B多克隆抗体 | Proteintech | 21537-1-AP | |
| 免疫荧光 | 兔抗钙联蛋白多克隆抗体 | Proteintech | 10427-2-AP |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| iNeuron分化 | 分化培养基成分(ND1和ND2)、多西环素浓度(2 mg/ml)、分化时间线(day 0-12) 阅读提示:Methods: Neural differentiation of AAVS1-TRE3G-NGN2 pluripotent stem cells |
| 基因敲除细胞系 | sgRNA序列、CRISPR-Cas9递送方法、克隆筛选和验证(MiSeq和免疫印迹) 阅读提示:Methods: Gene editing 和 Extended Data Fig. 4 |
| Keima通量实验 | BAFA浓度(100 nM)和处理时间(4 h)、VPS34i浓度(1 μM)和处理方案、流式细胞术门控策略 阅读提示:Methods: Flow cytometry 和 Figure legends 3, 6 |
| 定量蛋白质组学 | TMT标记方案、肽段分级、质谱参数、生物学重复数(n=3-4) 阅读提示:Methods: Quantitative proteomics 和 Supplementary Tables |
| cryo-ET | iNeuron在EM网格上的培养、冷冻保存参数、数据采集和处理流程 阅读提示:Methods: Cryo-electron tomography 和 Extended Data Fig. 3 |