神经发生过程中组合选择性内质网自噬重塑内质网

Combinatorial selective ER-phagy remodels the ER during neurogenesis.

作者信息Melissa J Hoyer, Cristina Capitanio, Ian R Smith, Julia C Paoli, Anna Bieber, Yizhi Jiang, Joao A Paulo, Miguel A Gonzalez-Lozano, Wolfgang Baumeister, Florian Wilfling, Brenda A Schulman, J Wade Harper
PMID38429475
发布时间2024-03
DOI10.1038/s41556-024-01356-4

实验完整度

高

包含体外iNeuron模型、基因编辑突变体、蛋白质组学、流式细胞术、活细胞成像和cryo-ET等多种独立证据层级,并进行了功能验证和机制验证。

主要模型

人胚胎干细胞(hESC)来源的诱导神经元(iNeuron) ER自噬受体单敲除和组合敲除hESC系 表达Keima报告基因的iNeuron

重点核对

iNeuron分化天数(day 0, 4, 12, 20, 30) 基因敲除验证(测序和免疫印迹) Keima流式细胞术中的BAFA(100 nM, 4 h)归一化 VPS34抑制剂SAR405(1 μM)处理时间 TMT蛋白质组学的生物学重复数(n=3-4)

摘要

内质网(ER)利用多样化的蛋白质组景观来协调许多细胞功能,从蛋白质和脂质合成到钙离子通量和细胞器间通讯。一个典型的例子涉及神经发生过程,其中精细的管状ER网络通过ER塑造蛋白组装到新形成的神经元突起中,以创建高度极化的树突和轴突。先前的研究已提示自噬在ER重塑中的作用,因为体内自噬缺陷神经元在突触扣结内显示轴突ER积累,并且膜嵌入的ER自噬受体FAM134B在遗传上与人类感觉和自主神经病相关。然而,我们对选择性去除ER的机制以及单个ER自噬受体的作用的理解有限。在这里,我们结合可遗传操作的诱导神经元(iNeuron)系统来监测体外分化过程中的ER重塑,与蛋白质组学和计算工具,创建通过选择性自噬的ER蛋白质组重塑的定量景观。通过分析单和组合ER自噬受体突变体,我们描绘了每个受体对ER蛋白清除的幅度和选择性的贡献程度。我们将ER膜或腔蛋白的特定子集定义为不同受体的优选客户。使用空间传感器和通量报告基因,我们展示了轴突中受体特异性自噬捕获ER,并通过冷冻电子断层扫描直接可视化神经元突起中自噬体内的管状ER膜。这个ER蛋白质组重塑的分子清单和多功能遗传工具包为理解单个ER自噬受体在细胞状态转换期间重塑ER的贡献提供了定量框架。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
神经发生过程中,选择性ER自噬如何重塑ER蛋白质组,以及单个ER自噬受体(FAM134A/B/C、TEX264、CCPG1)的贡献和底物选择性是什么?
核心机制
FAM134家族成员在ER膜蛋白重塑中起主导且 largely 冗余的作用,而CCPG1主要负责ER腔蛋白的自噬周转,定义了ER重塑的底物特异性。
主要证据
通过iNeuron分化模型、单和组合ER自噬受体敲除、定量蛋白质组学、Keima通量报告、活细胞成像和cryo-ET,发现FAM134A/C敲除导致ER膜蛋白积累,CCPG1敲除导致腔蛋白积累,并可视化轴突自噬体中的管状ER。
研究意义
提供了ER蛋白质组重塑的定量框架和遗传工具包,有助于理解单个ER自噬受体在细胞状态转换过程中如何塑造ER。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立iNeuron分化系统并监测ER重塑

确认体外神经发生过程中ER蛋白质组和形态的动态变化。

将hESC分化为iNeuron,在分化第0、4、12天等时间点收集样本,通过蛋白质组学、免疫荧光和免疫印迹检测ER蛋白丰度和ER形态。

2

构建ER自噬受体基因敲除细胞系

分析单个和组合ER自噬受体在ER重塑中的功能。

使用CRISPR-Cas9基因编辑技术,在hESC中依次敲除FAM134A、FAM134B、FAM134C、TEX264和CCPG1,获得单敲、双敲、三敲、四敲和五敲细胞系,并通过测序和免疫印迹验证。

3

测量ER自噬通量

定量评估不同受体突变对ER蛋白向溶酶体递送的影响。

在突变细胞中表达Keima-RAMP4或Keima-REEP5报告基因,通过流式细胞术和荧光成像测量酸性/中性Keima荧光比值,计算ER自噬通量。

4

分析ER自噬受体的空间动态

观察ER自噬受体在神经元突起中的自噬体捕获和运输。

在iNeuron中表达TEX264-GFP或FAM134C-GFP与mCherry-LC3B,通过活细胞成像追踪puncta运动,并结合免疫荧光和cryo-ET观察自噬体中的ER。

5

定量蛋白质组学分析ER蛋白质组重塑

全面鉴定不同ER自噬受体敲除后ER蛋白丰度变化,揭示底物选择性。

对单敲和组合敲除iNeuron(day 12)进行TMT标记的定量蛋白质组学,结合线性模型分析β系数,鉴定受体特异性 cargo。

6

验证受体特异性底物和功能

确认候选底物的自噬依赖性降解及受体贡献。

通过免疫印迹、Keima-VAPA通量实验和FAM134C-GFP回补实验,验证特定ER蛋白(如REEP1, VAPA)的积累和受体依赖性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
基质胶Corning354230
DMEM/F12培养基Thermo Fisher Scientific11330057
神经基础培养基Thermo Fisher Scientific21103049
N-2添加剂Thermo Fisher Scientific17502048
B27添加剂Thermo Fisher Scientific17504001
脑源性神经营养因子Peprotech450-02
神经营养因子3Peprotech450-03
多西环素Sigma-AldrichD9891
巴弗洛霉素A1Cayman Chemical88899-55-2
SAR405ApexbioA8883
衣霉素Cell Signaling12819S
Lipofectamine 3000InvitrogenL3000008
GeneArt Precision gRNA合成试剂盒Thermo Fisher ScientificA29377
SpCas9蛋白----
TMTpro 16plex标记试剂盒Thermo Fisher ScientificA44520
胰蛋白酶PromegaV511C
Lys-C蛋白酶Wako Chemicals129-02541
兔抗ATG5单克隆抗体Cell Signaling Technology12994S
兔抗FAM134B多克隆抗体Proteintech21537-1-AP
兔抗钙联蛋白多克隆抗体Proteintech10427-2-AP

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
iNeuron分化
分化培养基成分(ND1和ND2)、多西环素浓度(2 mg/ml)、分化时间线(day 0-12)
阅读提示:Methods: Neural differentiation of AAVS1-TRE3G-NGN2 pluripotent stem cells
基因敲除细胞系
sgRNA序列、CRISPR-Cas9递送方法、克隆筛选和验证(MiSeq和免疫印迹)
阅读提示:Methods: Gene editing 和 Extended Data Fig. 4
Keima通量实验
BAFA浓度(100 nM)和处理时间(4 h)、VPS34i浓度(1 μM)和处理方案、流式细胞术门控策略
阅读提示:Methods: Flow cytometry 和 Figure legends 3, 6
定量蛋白质组学
TMT标记方案、肽段分级、质谱参数、生物学重复数(n=3-4)
阅读提示:Methods: Quantitative proteomics 和 Supplementary Tables
cryo-ET
iNeuron在EM网格上的培养、冷冻保存参数、数据采集和处理流程
阅读提示:Methods: Cryo-electron tomography 和 Extended Data Fig. 3