β细胞中m6A甲基转移酶METTL3的氧化还原调控控制1型糖尿病的先天免疫反应

Redox regulation of m6A methyltransferase METTL3 in β-cells controls the innate immune response in type 1 diabetes.

作者信息Dario F De Jesus, Zijie Zhang, Natalie K Brown, Xiaolu Li, Ling Xiao, Jiang Hu, Matthew J Gaffrey, Garrett Fogarty, Sevim Kahraman, Jiangbo Wei, Giorgio Basile, Tariq M Rana, Clayton Mathews, Alvin C Powers, Audrey V Parent, Mark A Atkinson, Sirano Dhe-Paganon, Decio L Eizirik, Wei-Jun Qian, Chuan He, Rohit N Kulkarni
PMID38409327
发布时间2024-03
DOI10.1038/s41556-024-01368-0

实验完整度

高

包含人胰岛、EndoC-βH1细胞、人胰腺切片、NOD小鼠模型、m6A-seq及位点突变功能验证等多层级证据

主要模型

人胰岛 EndoC-βH1细胞 人胰腺组织切片 NOD小鼠

重点核对

细胞因子处理:IL-1β (50 U/ml) + IFN-α (2000 U/ml) 处理48h METTL3敲低或过表达后检测OAS蛋白和mRNA稳定性 NOD小鼠4周龄腹腔注射AAV8-Mettl3 (1×10^11 gc/小鼠),随访至25周 位点突变C276A、C294A、C326A、C336A验证S-亚硝基化功能 m6A-seq和RNA-seq分析人胰岛及EndoC-βH1细胞

摘要

1型糖尿病(T1D)的特征是胰腺β细胞被破坏。多项观察重新激发了人们对β细胞RNA传感器和编辑器的兴趣。在此,我们报道N6-甲基腺苷(m6A)是一种适应性β细胞保护机制,在T1D发病时控制抗病毒先天免疫反应的幅度和持续时间。m6A写入蛋白甲基转移酶3(METTL3)的水平在T1D发病时在β细胞中急剧增加,但随着疾病进展迅速下降。m6A测序揭示,在T1D发病时,人胰岛和EndoC-βH1细胞中几个关键先天免疫介质(包括OAS1、OAS2、OAS3和ADAR1)发生m6A超甲基化。沉默METTL3通过增加OAS mRNA稳定性来增强OAS水平。一致地,在非肥胖糖尿病(NOD)T1D小鼠模型中,通过体内基因治疗在β细胞中特异性延长Mettl3过表达可延缓糖尿病进展。机制上,活性氧的积累阻断了细胞因子诱导的METTL3上调,而生理水平的一氧化氮增强了METTL3水平和活性。此外,我们报道METTL3蛋白锌指结构域中C276和C326位点的半胱氨酸对S-亚硝基化(SNO)敏感,并且对于METTL3介导的人β细胞中OAS mRNA稳定性调控具有重要意义。总之,我们报道m6A在人类T1D发病期间在β细胞水平调控先天免疫反应。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
m6A甲基化是否在1型糖尿病发病过程中调控β细胞先天免疫反应,以及其动态调控机制是什么。
核心机制
METTL3介导的m6A超甲基化促进OAS1/2/3 mRNA经YTHDF1和YTHDF3加速降解;METTL3的C276和C326位点半胱氨酸S-亚硝基化调控其功能,而ROS积累和ER应激抑制METTL3上调。
主要证据
人胰岛和EndoC-βH1细胞中细胞因子处理增加METTL3和m6A水平;METTL3敲低增加OAS mRNA稳定性,过表达加速其降解;NOD小鼠中AAV8介导的Mettl3过表达延缓糖尿病进展并降低胰岛炎。
研究意义
研究提示m6A是β细胞在T1D发病时的保护机制,靶向METTL3可能促进β细胞存活和改善分泌功能。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

T1D中METTL3表达动态分析

验证METTL3在T1D发病和进展中的表达变化

利用NOD/NOR小鼠胰岛、人T1D胰岛、人胰腺切片免疫荧光和scRNA-seq数据分析METTL3表达。

2

细胞因子诱导METTL3上调的体外模拟

建立模拟T1D发病时METTL3上调的体外模型

用人胰岛和EndoC-βH1细胞经IL-1β、IFN-α等处理,检测m6A水平和METTL3蛋白。

3

m6A景观和OAS基因甲基化分析

鉴定T1D发病时m6A修饰的靶基因

对细胞因子处理的人胰岛和EndoC-βH1细胞进行RNA-seq和m6A-seq,交集分析差异表达和差异甲基化基因。

4

METTL3调控OAS mRNA稳定性验证

验证METTL3通过m6A调控OAS mRNA衰减

在EndoC-βH1和人假胰岛中敲低或过表达METTL3,用放线菌素D检测OAS mRNA稳定性,并敲低YTHDF1/2/3。

5

OAS过表达对β细胞功能的影响

探讨OAS上调对β细胞转录组和凋亡的影响

在EndoC-βH1细胞中过表达OAS1、OAS2或OAS3,检测凋亡和RNA-seq。

6

体内Mettl3过表达对NOD小鼠糖尿病进展的影响

验证持续Mettl3过表达能否延缓T1D

4周龄NOD雌鼠注射AAV8-Mettl3或对照,随访血糖、体重、胰岛炎和β细胞质量。

7

METTL3 S-亚硝基化位点鉴定和功能验证

确定NO调控METTL3的分子机制

用SNAP处理人胰岛和EndoC-βH1细胞,生物素转换实验和质谱鉴定SNO位点,定点突变验证功能。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Miami培养基#1ACellgro--
基质胶Sigma--
纤连蛋白Sigma--
DMEM培养基(葡萄糖4.5 g/L)Gibco--
RNAiMAX转染试剂Life Technologies--
Lipofectamine 3000转染试剂Invitrogen--
白细胞介素-1βR&D Systems--
干扰素-αPBL Assay Science--
干扰素-γPeprotech--
毒胡萝卜素Selleckchem--
过氧化氢MiliporeSigma--
N-乙酰半胱氨酸Cayman chemical--
S-亚硝基-N-乙酰-DL-青霉胺Cayman chemical--
MG132蛋白酶体抑制剂Cell Signaling--
METTL3抗体Abcam195352
METTL14抗体SigmaHPA038002
OAS1抗体Proteintech14955-1-AP
OAS2抗体Proteintech19279-1-AP
OAS3抗体Proteintech21915-1-AP
ADAR1抗体Cell Signaling14175
EpiQuik m6A RNA甲基化定量试剂盒EpigenTek--
EpiMark N6-甲基腺苷富集试剂盒NEBE1610S
METTL3/METTL14复合物化学发光检测试剂盒BPS Biosciences79614
AAV8-Mettl3腺相关病毒VectorBuilder--
AAV8-eGFP腺相关病毒VectorBuilder--
CD45抗体BiolegendQA17A26

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞因子处理
IL-1β (50 U/ml)、IFN-α (2000 U/ml)、IFN-γ (1000 U/ml)浓度及处理时间48h
阅读提示:Methods 'Human islets and cell treatments' 小节
METTL3敲低
siRNA终浓度15 nmol/L,转染后96h收集
阅读提示:Methods 'Transfections' 小节
mRNA稳定性检测
放线菌素D浓度10 μg/μL,处理时间0、4、8h
阅读提示:Methods 'Actinomycin D treatments' 小节
NOD小鼠AAV8注射
4周龄雌鼠,腹腔注射1×10^11 gc/小鼠,随访至25周
阅读提示:Methods 'In vivo Mettl3 overexpression' 小节
SNAP处理
SNAP浓度10、100、1000 nM,处理24h
阅读提示:Methods 'S-Nitroso-N-Acetyl-D,L-Penicillamine (SNAP) treatments' 小节
S-亚硝基化位点鉴定
重组METTL3与200 μM SNAP孵育,质谱鉴定半胱氨酸位点
阅读提示:Methods 'LC-MS/MS analysis on METTL3 S-nitrosylation (SNO)' 小节