探索骨髓增生异常综合征中SF3B1突变与环形铁粒幼细胞形成之间的机制联系

Exploring the mechanistic link between SF3B1 mutation and ring sideroblast formation in myelodysplastic syndrome

作者信息Tetsuro Ochi, Tohru Fujiwara, Koya Ono, Chie Suzuki, Maika Nikaido, Daichi Inoue, Hiroki Kato, Koichi Onodera, Satoshi Ichikawa, Noriko Fukuhara, Yasushi Onishi, Hisayuki Yokoyama, Yukio Nakamura, Hideo Harigae
PMID36028755
期刊Sci Rep
发布时间2022-08-26
DOI10.1038/s41598-022-18921-2

实验完整度

包含细胞模型(HUDEP-2、K562)、功能验证(shRNA敲低、过表达)、机制验证(剪接分析、蛋白质印迹)及临床样本验证(RNA-seq),证据层级丰富。

主要模型

HUDEP-2细胞(稳定表达SF3B1K700E或ABCB7敲低) K562细胞(过表达SF3B1K700E) MDS患者骨髓样本(SF3B1突变型与野生型)

重点核对

HUDEP-2细胞稳定表达SF3B1K700E后红系分化诱导条件(与OP9细胞共培养6-7天) ABCB7敲低效率(shRNA克隆5和6,mRNA和蛋白水平) CHX处理浓度(100 μg/mL)用于增强异常剪接检测 RNA-seq数据分析流程(HISAT2比对、StringTie定量、MISO剪接分析)

摘要

获得性铁粒幼细胞性贫血以骨髓环形铁粒幼细胞(RS)为特征,主要与骨髓增生异常综合征(MDS)相关。尽管参与RNA剪接机制的剪接因子3b亚基1(SF3B1)的体细胞突变在MDS-RS中频繁出现,但促成RS形成的详细机制尚不清楚。为探索该机制,我们建立了稳定表达SF3B1K700E的人脐带血来源的红系祖细胞-2(HUDEP-2)细胞。表达SF3B1K700E的细胞在红系分化过程中表现出比对照细胞更高比例的RS,表明突变SF3B1在红系母细胞中的表达直接促成RS形成。在表达SF3B1K700E的细胞中,已知的先天性铁粒幼细胞性贫血致病基因ABCB7和ALAS2被下调。此外,在表达SF3B1K700E的细胞中观察到ABCB7的异常剪接。ABCB7敲低的HUDEP-2细胞在红系分化过程中显示出RS形成频率增加,直接证明了ABCB7缺陷与RS形成之间的分子联系。在ABCB7敲低细胞中,ALAS2蛋白水平明显降低,表明由于ABCB7缺陷导致的Fe-S簇输出受损而引起ALAS2翻译减少。最后,对MDS临床样本的RNA-seq分析表明,SF3B1突变导致ABCB7表达降低。我们的发现有助于阐明MDS-RS中RS形成的复杂机制。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
SF3B1突变如何导致MDS-RS中环形铁粒幼细胞的形成?
核心机制
SF3B1K700E通过诱导ABCB7和MAP3K7的异常3'剪接位点使用(A3SS),导致其mRNA被无义介导的衰变(NMD)降解而下调,进而减少ABCB7介导的Fe-S簇输出,激活IRP1,抑制ALAS2翻译;同时MAP3K7下调损害GATA-1功能,降低ALAS2转录,最终导致RS形成。
主要证据
HUDEP-2细胞表达SF3B1K700E后RS比例升高,ABCB7和MAP3K7下调及异常剪接;ABCB7敲低增加RS形成并降低ALAS2蛋白;K562细胞过表达证实剪接异常;临床样本RNA-seq显示SF3B1突变型ABCB7和MAP3K7表达降低。
研究意义
该研究阐明了SF3B1突变导致MDS-RS中RS形成的复杂机制,为理解该疾病的分子病因和开发新的治疗策略提供了基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立SF3B1K700E表达的MDS-RS模型

验证SF3B1K700E表达是否直接导致红系细胞形成环形铁粒幼细胞。

通过逆转录病毒转导在HUDEP-2细胞中稳定表达密码子优化的SF3B1WT或SF3B1K700E,并与OP9细胞共培养诱导红系分化,然后用May-Grünwald-Giemsa染色和普鲁士蓝染色评估RS比例,并用电子显微镜观察线粒体铁沉积。

2

基因表达分析

鉴定SF3B1K700E表达引起的差异表达基因,特别是CSA相关基因。

对HUDEP-2细胞进行RNA-seq和定量RT-PCR,检测ABCB7、ALAS2、GLRX5、MAP3K7、GATA-1等基因的表达,并用Western blot验证蛋白水平。

3

替代剪接分析

检测SF3B1K700E是否诱导异常剪接事件,特别是A3SS。

使用MISO和IGV分析RNA-seq数据,检测ABCB7、MAP3K7和RNH1的A3SS事件,并用CHX处理抑制NMD以增强检测。

4

K562细胞验证

在另一种细胞系中验证SF3B1K700E诱导的ABCB7和MAP3K7异常剪接和下调。

通过电穿孔在K562细胞中瞬时过表达SF3B1K700E或SF3B1WT,然后进行Western blot、RT-qPCR和剪接分析。

5

ABCB7敲低实验

验证ABCB7缺陷是否直接导致RS形成并影响ALAS2表达。

使用shRNA在HUDEP-2细胞中敲低ABCB7,诱导红系分化后评估RS比例,并检测ALAS2的mRNA和蛋白水平。

6

临床样本分析

验证SF3B1突变患者中ABCB7和MAP3K7表达降低及异常剪接。

分析MDS患者骨髓样本的RNA-seq数据,比较SF3B1突变型与野生型中ABCB7和MAP3K7的表达及剪接事件。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
StemSpan无血清扩增培养基STEMCELL Technologies--
干细胞因子PEPROTECH--
促红细胞生成素Kyowa Hakko Kirin--
多西环素Sigma-Aldrich--
地塞米松Sigma-Aldrich--
α-MEM培养基Thermo Fisher Scientific--
胎牛血清Biological Industries USA--
青霉素/链霉素Sigma-Aldrich--
pcDNA载体Invitrogen--
pBABE-puro载体Addgene1764
Amaxa细胞核转染仪IILonza--
FuGene HD转染试剂Promega--
嘌呤霉素Sigma-Aldrich--
DNeasy血液和组织试剂盒Qiagen--
pGIPZ慢病毒shRNAmirOpen BiosystemsClone
SMARTer超低量RNA试剂盒Illumina--
TruSeq链特异性mRNA文库构建试剂盒Illumina--
NEBNext Ultra II RNA文库制备试剂盒NEB--
Illumina NovaSeq6000测序仪Illumina--
人类寡核苷酸芯片25kToray--
May-Grünwald-Giemsa染液Merck--
普鲁士蓝ScyTek Laboratories--
H-7600透射电子显微镜Hitachi--
α-微管蛋白抗体EMD MilliporeCP06
SF3B1抗体Proteintech27684-1-AP
ALAS2抗体Abcamab184964
ABCB7抗体Lifespan BioSciencesLS-B13035
MAP3K7抗体Cell Signaling Technology5206
RNH1抗体Proteintech10345-1-AP
FLAG抗体Cell Signaling Technology14793
GATA-1抗体Cell Signaling Technology3535

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与分化
HUDEP-2细胞培养条件(SCF 50 ng/mL、EPO 3 IU/mL、DOX 1 μg/mL、DEX 1 μM);分化诱导时间为6-7天
阅读提示:Methods - Cell culture
SF3B1过表达
密码子优化SF3B1表达载体(Addgene #82576, #82577);感染后筛选浓度(1 μg/mL 嘌呤霉素)
阅读提示:Methods - Codon-optimized SF3B1WT or SF3B1K700E overexpression
CHX处理
CHX浓度100 μg/mL
阅读提示:Methods - Cycloheximide treatment
ABCB7敲低
shRNA克隆选择(shRNA5和shRNA6)
阅读提示:Methods - shRNA-mediated ABCB7-knockdown
RNA-seq分析
比对和定量工具(HISAT2, StringTie);剪接分析参数(ΔPSI≥0.20,Bayes factor≥10)
阅读提示:Methods - Expression profiling analysis, Alternative splicing analysis