3D球体中的Cell Painting高内涵形态学分析

High-content morphological profiling by Cell Painting in 3D spheroids.

作者信息Christa Ringers, David Holmberg, Anders Larsson, Bomi Jung, Malin Jarvius, Anna Luchniak, Dan Rosén, Martin Johansson, Polina Georgiev, Brinton Seashore-Ludlow, Torkild Visnes, Åsmund Flobak, Jordi Carreras-Puigvert, Ola Spjuth
PMID42907469
发布时间2026-10-21
DOI10.1038/s41467-026-78596-5

实验完整度

高

包含2D/3D细胞培养、3D球体成像、单细胞分析、EdU/γH2AX验证及bulk RNA-seq,多层次功能与机制验证。

主要模型

HCT116结直肠癌细胞系 HT29结直肠癌细胞系 3D球体培养模型

重点核对

HCT116和HT29球体分别以270和300个细胞/孔接种于384孔ULA板,24小时形成球体后药物处理48小时 52种药物设4个浓度(10、3、1、0.3 µM),每条件4个重复,每板20个DMSO对照 3D Cell Painting采用18小时染色和72小时果糖-甘油透明化 成像使用Nikon ECLIPSE Ti2-E转盘共聚焦,30×总放大,12个光学层,间距5 µm EdU/γH2AX实验:5-FU 10 µM、奥拉帕利3 µM、依托泊苷2.5 µM处理48小时,EdU脉冲5 µM 2小时

摘要

Cell Painting是一种广泛应用的高内涵成像检测方法,可在规模上捕获2D细胞培养物的形状和内部组织。虽然3D细胞培养物是更接近生理相关性的模型——尤其是在研究药物扰动时——但由于光在到达培养物内部之前会发生散射,对其进行成像仍然具有挑战性。在此,我们介绍一种可扩展的方法,将Cell Painting适配于3D球体。我们表明,组织透明化——一种使球体透明的技术——与一种在飞行中定位球体的聚焦程序相结合,能够在完整球体内实现单细胞水平的Cell Painting。通过分析52种临床相关药物,我们表明单细胞指纹按生物通路聚类,并且比扁平化球体整体视图更稳健地解析药物效应。值得注意的是,两种药物5-氟尿嘧啶和奥拉帕利在2D单层中几乎无法区分,但在球体中出现了分歧。这一发现随后通过DNA损伤、细胞周期和基因表达检测得到了证实。该工作流程在标准384孔板格式的转盘共聚焦显微镜上运行,使已经进行Cell Painting的实验室能够使用单细胞3D分析。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
能否将Cell Painting适配于3D球体,并在单细胞水平上解析药物诱导的形态学变化,比较2D与3D培养格式下的药物响应差异。
核心机制
5-FU和奥拉帕利通过不同机制影响DNA复制:奥拉帕利作为PARP抑制剂引起更多DNA损伤(γH2AX),而5-FU更强地抑制S期进入并激活p53/p21程序;3D培养格式改变了这些应激信号整合为p53/p21响应的方式,导致两种药物在3D中形态学分歧。
主要证据
在HCT116和HT29球体中进行3D Cell Painting,单细胞聚合特征比MIP投影更稳健地聚类药物;5-FU与奥拉帕利在2D中形态相似但在3D中分歧,经EdU、γH2AX免疫染色和bulk RNA-seq证实。
研究意义
建立了一个在3D球体中进行单细胞图像表型探索的框架,使单细胞3D分析能够在标准高内涵筛选设备上进行,并可用于2D难以捕捉的培养模型。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

3D球体形成与药物处理

建立均一的3D球体模型并进行药物扰动。

在384孔ULA板中接种HCT116或HT29细胞,离心促进球体形成,24小时后加入药物库化合物处理48小时。

2

3D Cell Painting染色与透明化

使染料渗透球体并实现单细胞水平成像。

固定、透化、染料孵育18小时,然后用果糖-甘油溶液透明化72小时。

3

转盘共聚焦成像与球体检测

在3D球体内获取单细胞分辨的多通道图像。

使用自定义on-the-fly聚焦算法定位球体,在30×下采集12个光学层,每层5 µm间距。

4

图像分割与特征提取

从单细胞中提取形态学特征并进行标准化。

使用Cellpose分割细胞和细胞核,CellProfiler提取>2000个形态学特征,按切片标准化后聚合。

5

单细胞与MIP特征比较及药物聚类

评估单细胞聚合特征是否比球体整体投影更好地解析药物效应。

计算grit分数、重复相关性、UMAP和层次聚类,比较scAgg与MIP特征。

6

2D与3D药物响应比较

比较相同药物在2D单层和3D球体中的形态学响应差异。

用相同52种药物处理2D贴壁细胞,进行标准Cell Painting,计算余弦相似性并比较2D与3D的差异。

7

DNA损伤、细胞周期和基因表达验证

验证5-FU与奥拉帕利在3D球体中的分歧机制。

EdU/γH2AX免疫染色和bulk RNA-seq分析5-FU、奥拉帕利和对照处理的球体。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基Gibco31870
胎牛血清SigmaF7524
青霉素-链霉素Gibco15140-122
GlutaMaxGibcoA1286001
胰蛋白酶-EDTA (0.25%)Gibco15400054
Lonza支原体检测试剂盒LonzaLT07-418
AMG-232SigmaTA9H93ED7611
5Z-7-氧代玉米赤霉烯醇SigmaO9890
依托泊苷SigmaE1383
芬苯达唑SigmaF5396
星形孢菌素Sigma19-123
D-山梨醇SigmaS1876
二甲基亚砜SigmaD2438
Corning 384孔微板CorningCLS 3656
I.DOTDispendix--
I.DOT PURE S Plate 100DispendixD16110021800
PhenoPlate 384孔微板Revvity6057302
384孔ULA球体微板Corning3830
ViaFlo 384Integra--
Biotek 405 LSBiotek--
Biotek MultiFlo FXBiotek--
1× PBSGibco18912014
Triton X-100 0.2%Thermo Scientific85111
RNAqueous-Micro试剂盒Thermo FisherAM1931
SEQguard Dino PreserveGenovisPS-SDP-024

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
3D球体形成与药物处理
细胞接种密度(HCT116 270细胞/孔,HT29 300细胞/孔)、ULA板类型(Corning 3830)、离心条件(120×g,2分钟)、球体形成时间(24小时)、药物处理时间(48小时)
阅读提示:Methods中'3D Spheroid cell painting'小节及Fig. 1图注
Cell Painting染色与透明化
固定时间(1小时)、透化时间(1小时)、染料孵育时间(18小时,4°C)、透明化溶液组成(40%甘油/40%果糖)及透明化时间(72小时,4°C)
阅读提示:Methods中'The cell painting assay'小节及Fig. 1图注
3D成像
显微镜型号(Nikon ECLIPSE Ti2-E)、物镜(20×加1.5×变焦,总30×)、光学层数(12层)、层间距(5 µm)、球体检测算法参数
阅读提示:Methods中'3D Image acquisition'和'Spheroid detection method'小节
图像分割与特征提取
Cellpose版本(v2.0)、按细胞系重新训练模型、CellProfiler特征提取参数、Pycytominer标准化流程(per-plate和per-section标准化、clipping ±40)
阅读提示:Methods中'Feature extraction and preprocessing'小节及Supplementary Table 3
EdU/γH2AX验证实验
药物浓度(5-FU 10 µM,奥拉帕利3 µM,依托泊苷2.5 µM)、处理时间(48小时)、EdU脉冲浓度和时间(5 µM,2小时)、每条件球体数(n=13,依托泊苷n=8)、统计方法(Kruskal-Wallis和Mann-Whitney U)
阅读提示:Methods中'EdU and γH2AX assay'小节及Fig. 6图注
bulk RNA-seq
HCT116细胞代次(p+9)、每条件孔数(128孔/板)、3′端计数测序平台(Illumina NovaSeq X Plus)、差异表达分析工具(edgePython v0.2.5)和GSEA工具(GSEApy v0.12)
阅读提示:Methods中'Bulk RNA-seq'小节及Supplementary Fig. 6a