3D球体形成与药物处理
建立均一的3D球体模型并进行药物扰动。
在384孔ULA板中接种HCT116或HT29细胞,离心促进球体形成,24小时后加入药物库化合物处理48小时。
High-content morphological profiling by Cell Painting in 3D spheroids.
包含2D/3D细胞培养、3D球体成像、单细胞分析、EdU/γH2AX验证及bulk RNA-seq,多层次功能与机制验证。
HCT116结直肠癌细胞系 HT29结直肠癌细胞系 3D球体培养模型
HCT116和HT29球体分别以270和300个细胞/孔接种于384孔ULA板,24小时形成球体后药物处理48小时 52种药物设4个浓度(10、3、1、0.3 µM),每条件4个重复,每板20个DMSO对照 3D Cell Painting采用18小时染色和72小时果糖-甘油透明化 成像使用Nikon ECLIPSE Ti2-E转盘共聚焦,30×总放大,12个光学层,间距5 µm EdU/γH2AX实验:5-FU 10 µM、奥拉帕利3 µM、依托泊苷2.5 µM处理48小时,EdU脉冲5 µM 2小时
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立均一的3D球体模型并进行药物扰动。
在384孔ULA板中接种HCT116或HT29细胞,离心促进球体形成,24小时后加入药物库化合物处理48小时。
使染料渗透球体并实现单细胞水平成像。
固定、透化、染料孵育18小时,然后用果糖-甘油溶液透明化72小时。
在3D球体内获取单细胞分辨的多通道图像。
使用自定义on-the-fly聚焦算法定位球体,在30×下采集12个光学层,每层5 µm间距。
从单细胞中提取形态学特征并进行标准化。
使用Cellpose分割细胞和细胞核,CellProfiler提取>2000个形态学特征,按切片标准化后聚合。
评估单细胞聚合特征是否比球体整体投影更好地解析药物效应。
计算grit分数、重复相关性、UMAP和层次聚类,比较scAgg与MIP特征。
比较相同药物在2D单层和3D球体中的形态学响应差异。
用相同52种药物处理2D贴壁细胞,进行标准Cell Painting,计算余弦相似性并比较2D与3D的差异。
验证5-FU与奥拉帕利在3D球体中的分歧机制。
EdU/γH2AX免疫染色和bulk RNA-seq分析5-FU、奥拉帕利和对照处理的球体。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Gibco | 31870 |
| 胎牛血清 | Sigma | F7524 | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | 15140-122 | |
| GlutaMax | Gibco | A1286001 | |
| 胰蛋白酶-EDTA (0.25%) | Gibco | 15400054 | |
| 支原体检测 | Lonza支原体检测试剂盒 | Lonza | LT07-418 |
| 药物处理 | AMG-232 | Sigma | TA9H93ED7611 |
| 5Z-7-氧代玉米赤霉烯醇 | Sigma | O9890 | |
| 依托泊苷 | Sigma | E1383 | |
| 芬苯达唑 | Sigma | F5396 | |
| 星形孢菌素 | Sigma | 19-123 | |
| D-山梨醇 | Sigma | S1876 | |
| 二甲基亚砜 | Sigma | D2438 | |
| 药物点样 | Corning 384孔微板 | Corning | CLS 3656 |
| I.DOT | Dispendix | -- | |
| I.DOT PURE S Plate 100 | Dispendix | D16110021800 | |
| 2D细胞培养 | PhenoPlate 384孔微板 | Revvity | 6057302 |
| 3D球体培养 | 384孔ULA球体微板 | Corning | 3830 |
| 细胞接种 | ViaFlo 384 | Integra | -- |
| Cell Painting洗涤与分液 | Biotek 405 LS | Biotek | -- |
| Biotek MultiFlo FX | Biotek | -- | |
| Cell Painting洗涤 | 1× PBS | Gibco | 18912014 |
| Cell Painting透化 | Triton X-100 0.2% | Thermo Scientific | 85111 |
| RNA提取 | RNAqueous-Micro试剂盒 | Thermo Fisher | AM1931 |
| RNA稳定 | SEQguard Dino Preserve | Genovis | PS-SDP-024 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 3D球体形成与药物处理 | 细胞接种密度(HCT116 270细胞/孔,HT29 300细胞/孔)、ULA板类型(Corning 3830)、离心条件(120×g,2分钟)、球体形成时间(24小时)、药物处理时间(48小时) 阅读提示:Methods中'3D Spheroid cell painting'小节及Fig. 1图注 |
| Cell Painting染色与透明化 | 固定时间(1小时)、透化时间(1小时)、染料孵育时间(18小时,4°C)、透明化溶液组成(40%甘油/40%果糖)及透明化时间(72小时,4°C) 阅读提示:Methods中'The cell painting assay'小节及Fig. 1图注 |
| 3D成像 | 显微镜型号(Nikon ECLIPSE Ti2-E)、物镜(20×加1.5×变焦,总30×)、光学层数(12层)、层间距(5 µm)、球体检测算法参数 阅读提示:Methods中'3D Image acquisition'和'Spheroid detection method'小节 |
| 图像分割与特征提取 | Cellpose版本(v2.0)、按细胞系重新训练模型、CellProfiler特征提取参数、Pycytominer标准化流程(per-plate和per-section标准化、clipping ±40) 阅读提示:Methods中'Feature extraction and preprocessing'小节及Supplementary Table 3 |
| EdU/γH2AX验证实验 | 药物浓度(5-FU 10 µM,奥拉帕利3 µM,依托泊苷2.5 µM)、处理时间(48小时)、EdU脉冲浓度和时间(5 µM,2小时)、每条件球体数(n=13,依托泊苷n=8)、统计方法(Kruskal-Wallis和Mann-Whitney U) 阅读提示:Methods中'EdU and γH2AX assay'小节及Fig. 6图注 |
| bulk RNA-seq | HCT116细胞代次(p+9)、每条件孔数(128孔/板)、3′端计数测序平台(Illumina NovaSeq X Plus)、差异表达分析工具(edgePython v0.2.5)和GSEA工具(GSEApy v0.12) 阅读提示:Methods中'Bulk RNA-seq'小节及Supplementary Fig. 6a |