建立基因敲除细胞系
研究特定翻译因子在米托核糖体翻译中的功能
利用CRISPR-Cas9基因组编辑技术构建mtRF1L、mtRF1、mtRRF、ICT1、mtRF-R、HEMK1等基因敲除的HeLa细胞,mtRF1敲除的C2C12细胞,使用已有mtIF3敲除HEK293细胞和mtRES1敲除HAP1细胞。
Mitochondrial translation termination, recycling, reinitiation, and rescue for in-frame and out-of-frame contexts.
体外细胞模型(多种KO细胞系)结合Ribo-Seq/Disome-Seq、Western blot、mito-FUNCAT、结构建模及功能验证
HeLa细胞(野生型及mtRF1L、mtRF1、mtRRF、ICT1、mtRF-R、HEMK1等基因敲除) HEK293细胞(mtIF3敲除及野生型) HAP1细胞(mtRES1敲除及野生型) C2C12小鼠细胞(mtRF1敲除及野生型)
细胞模型与基因型:HeLa、HEK293、HAP1、C2C12及相应基因敲除细胞系(包括mtRF1L、mtRF1、mtRRF、mtIF3、ICT1、mtRF-R、mtRES1、HEMK1 KO) MitoIP-Thor-Ribo-Seq和MitoIP-Thor-Disome-Seq的测序平台、读长模式及A位点偏移估计 on-gel mito-FUNCAT处理条件:50 µM HPG、100 µg/ml anisomycin处理3小时 Western blot所用抗体及稀释比例(如anti-mtRF1 1:200或1:1000等) CRISPR-Cas9敲除的sgRNA序列及敲除验证方法(Sanger测序和Western blot)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
研究特定翻译因子在米托核糖体翻译中的功能
利用CRISPR-Cas9基因组编辑技术构建mtRF1L、mtRF1、mtRRF、ICT1、mtRF-R、HEMK1等基因敲除的HeLa细胞,mtRF1敲除的C2C12细胞,使用已有mtIF3敲除HEK293细胞和mtRES1敲除HAP1细胞。
在全转录组水平分析线粒体核糖体在不同终止密码子处的停顿、碰撞及3'UTR/poly(A)尾部累积
裂解细胞、免疫沉淀纯化线粒体、RNase消化、蔗糖垫超速离心、凝胶筛选17-50 nt(单核糖体)和50-80 nt(双核糖体)足迹,建库测序。
验证基因敲除对全局线粒体翻译及特定蛋白合成的影响
细胞在无甲硫氨酸培养基中加50 µM HPG和100 µg/ml anisomycin处理3小时,裂解后用Click-it反应标记新生肽,SDS-PAGE分离,Odyssey CLx检测荧光信号。
验证敲除效率及线粒体编码蛋白的稳态水平
使用特异性抗体检测mtRF1L、mtRF1、mtRRF、MT-CO1、MT-CO2、MT-ATP8、MT-ATP6、MT-CYB、MT-ND4L、MT-ND4等蛋白。
从结构角度解释mtRF1L识别非经典终止密码子的可能性
基于已报道的mtRF1L与UAA密码子复合物冷冻电镜结构(PDB ID: 7NQH),用Coot手动替换密码子为AGA/AGG并拟合邻近残基,进行局部正则化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 支原体PCR检测试剂盒 | iNtRON Biotechnology | -- |
| 基因敲除 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| pL-CRISPR.EFS.GFP质粒 | Addgene | 57818 | |
| pL-CRISPR.EFS.tRFP质粒 | Addgene | 57819 | |
| MitoIP-Thor-Ribo-Seq和Disome-Seq | 人线粒体分离试剂盒 | Miltenyi Biotec | -- |
| 小鼠组织线粒体分离试剂盒 | Miltenyi Biotec | -- | |
| Ribo-Zero Gold rRNA去除试剂盒(人/小鼠/大鼠) | Illumina | -- | |
| 人Ribo-Seq核糖体RNA去除试剂盒 | siTOOLs Biotech | -- | |
| 小鼠/大鼠Ribo-Seq核糖体RNA去除试剂盒 | siTOOLs Biotech | -- | |
| T7-Scribe标准RNA体外转录试剂盒 | CELLSCRIPT | -- | |
| on-gel mito-FUNCAT | L-高炔丙基甘氨酸 | Jena Bioscience | -- |
| 茴香霉素 | Alomone Labs | -- | |
| IRdye800CW叠氮化物 | LI-COR Biosciences | -- | |
| Click-it细胞反应缓冲液试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Odyssey CLx成像系统 | LI-COR Biosciences | -- | |
| GelCode Blue Safe蛋白染色液 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Western blot | 抗β-肌动蛋白抗体 | MBL | M177-3 |
| 抗TOMM20抗体 | CST | 42406 | |
| 抗α-微管蛋白抗体 | CST | 2144 | |
| 抗mtRF1L抗体 | Proteintech | 16694-1-AP | |
| 抗mtRF1抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-97988 | |
| 抗mtRF1抗体 | Atlas Antibodies | HPA043316 | |
| 抗mtRRF抗体 | Proteintech | 12357-2-AP | |
| 抗MT-CO1抗体 | Abcam | ab203912 | |
| 抗MT-CO2抗体 | Proteintech | 55070-1-AP | |
| 抗MT-ATP8抗体 | Proteintech | 26723-1-AP | |
| 抗MT-ATP6抗体 | CST | 70262 | |
| 抗MT-CYB抗体 | Proteintech | 55090-1-AP | |
| 抗MT-ND4L抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-68242 | |
| 抗MT-ND4抗体 | Merck Millipore | MABS1994 | |
| 抗MRPS22/mS22抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-52249 | |
| 抗MRPL45/ml45抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-54784 | |
| 抗ICT1抗体 | Proteintech | 10403-1-AP | |
| 抗mtRF-R抗体 | Proteintech | 24646-1-AP | |
| 抗mtRES1抗体 | Abcam | ab151066 | |
| IRDye800CW标记抗兔IgG二抗 | LI-COR Biosciences | 926-32211 | |
| IRDye800CW标记抗鼠IgG二抗 | LI-COR Biosciences | 926-32210 | |
| 细胞活力检测 | RealTime-Glo MT细胞活力检测试剂 | Promega | -- |
| GloMax Navigator发光检测系统 | Promega | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| MitoIP-Thor-Ribo-Seq和MitoIP-Thor-Disome-Seq | 细胞系来源及基因型(HeLa、HEK293、HAP1、C2C12及相应基因敲除细胞系);线粒体分离试剂盒品牌(Miltenyi Biotec);RNase消化条件;单核糖体和双核糖体足迹的凝胶筛选范围(17-50 nt和50-80 nt);测序平台和读长模式(HiSeq X/NovaSeq X Plus 150 bp双端或NovaSeq 6000 100 bp单端) 阅读提示:Methods中“Lysate preparation for MitoIP-Thor-Ribo-Seq and MitoIP-Thor-Disome-Seq”和“Library preparation for MitoIP-Thor-Ribo-Seq and MitoIP-Thor-Disome-Seq”小节,以及Supplementary Data 1 |
| on-gel mito-FUNCAT | HPG浓度(50 µM);anisomycin浓度(100 µg/ml);处理时间(3小时);IRdye800CW Azide浓度(50 µM);检测仪器(Odyssey CLx)及信号标准化方法(CBB染色) 阅读提示:Methods中“On-gel mito-FUNCAT”小节 |
| Western blot | 各抗体品牌、货号及稀释比例;二抗稀释比例(1:10000);成像系统(Odyssey CLx) 阅读提示:Methods中“Western blotting”小节 |
| 基因敲除细胞系构建 | sgRNA序列;转染试剂(Lipofectamine 3000);分选时间(转染后48小时);克隆方法(有限稀释法);敲除验证方法(Sanger测序和Western blot) 阅读提示:Methods中“KO cell lines”小节 |
| 结构建模 | 起始结构PDB ID(7NQH);建模软件(Coot);建模策略(手动替换密码子并拟合残基) 阅读提示:Methods中“Modeling structures”小节 |