高分辨率图谱揭示细菌NAD帽RNA的特征及应激响应性转录起始

High-resolution mapping reveals features of bacterial NAD-capped RNAs and stress-responsive transcription initiation.

作者信息Hailei Zhang, Yinyao Qi, Qiongfang Li, Feng Zhang, Pengxi Wang, Wuzhen Liu, Xiaojian Shao, Bingxu Zhang, Chen Zhang, Yiping Wang, Linfeng Huang, Zongwei Cai, Yiji Xia
PMID41946713
发布时间2026-04-07
DOI10.1038/s41467-026-71487-9

实验完整度

高

包含体外生化验证、大肠杆菌体内测序图谱、LC-MS验证、Northern blot及不同培养条件比较,具备功能与机制验证

主要模型

大肠杆菌K-12菌株MG1655 体外转录的NAD帽RNA标准品 氮限制M9培养基培养的大肠杆菌

重点核对

SPAAC加帽标记效率约94%,42 nM ADPRC即可达96%转化效率 高置信度NAD-RNA判定阈值:RPM均值>150、富集>20倍、配对双尾Student's t检验p<0.05 14个候选RNA经LC-MS检测到NAD+峰(m/z=664.1),5S rRNA无NAD+峰 氮限制条件:标准M9含18.7 mM NH4Cl,氮限制M9含5.6 mM NH4Cl,重悬后培养3.5 h NAD-linkSeq分析中掺入四种NAD-RNA标准品:50 nt、150 nt、277 nt、700 nt

摘要

NAD+帽已在原核生物和真核生物的RNA中被发现,提示NAD加帽可能参与基因调控。现有的NAD帽RNA(NAD-RNA)图谱分析方法在5'端定位精度上不足,或对小NAD-RNA存在偏好性。本文中,我们建立了高精度NAD-RNA测序(pNAD-seq),该方法将两步富集策略与高通量测序相结合,实现5'端的单核苷酸分辨率,并对小NAD-RNA的鉴定具有前所未有的灵敏度。我们进一步开发了NAD-linkSeq以确定NAD-RNA的全长序列。将这些方法应用于大肠杆菌,我们发现了大量NAD-RNA,包括tRNA、rRNA、基因内转录本和反义RNA,其中许多显著短于常规mRNA,提示其具有特殊的生物合成机制。高分辨率图谱揭示了驱动NAD-RNA产生的保守启动子结构以及条件依赖的起始动态:在氮限制条件下,部分RNA、可变启动子使用和协同表达变化与代谢应激响应相关。本报告呈现的发现提供了大肠杆菌NAD-RNA的全面视图,并引入了可靠的跨生物全基因组NAD-RNA图谱分析方法,将促进NAD加帽的功能鉴定。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何实现NAD帽RNA 5'端的单核苷酸分辨率定位、小NAD-RNA的高灵敏检测及全长序列测定,并阐明大肠杆菌NAD-RNA的特征与应激响应动态。
核心机制
NAD-RNA主要由RNA聚合酶以NAD+替代ATP作为起始核苷酸在转录起始位点共转录形成,受启动子序列(−10 TATA盒、−35 TT元件、+1 A及RDAY基序)影响;在氮限制下,可变转录起始位点使用和启动子切换导致NAD-RNA图谱重塑。
主要证据
pNAD-seq在大肠杆菌中鉴定820个高置信度NAD-RNA,涵盖tRNA、rRNA、基因内和反义RNA;NAD-linkSeq显示蛋白编码基因来源的NAD-RNA平均约200 nt,短于mRNA;LC-MS验证14个候选RNA的NAD帽;氮限制下811个NAD-RNA中178个表达显著变化,Northern blot验证gcvB升高和gadY降低。
研究意义
提供了大肠杆菌NAD-RNA的全面视图,并建立了可靠的跨生物全基因组NAD-RNA图谱分析方法,将促进NAD加帽的功能鉴定。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

SPAAC加帽标记与NudC去帽体系优化

验证NAD-RNA生物素化标记的效率与特异性,以及NudC对生物素化NAD-RNA的去帽能力。

利用体外转录的NAD帽24mer RNA,经ADPRC和叠氮丙醇处理,再与biotin-DBCO进行SPAAC反应,尿素-PAGE检测生物素化效率;滴定ADPRC浓度;比较SPAAC与一步法生物素化效率;用重组NudC进行去帽并分析5'端二级结构影响。

2

pNAD-seq方法建立与大肠杆菌NAD-RNA图谱绘制

建立两步富集的高精度NAD-RNA测序方法,并在大肠杆菌中鉴定NAD-RNA。

总RNA片段化至约200 nt、去磷酸化、SPAAC生物素化(含ADPRC−对照)、链霉亲和素富集、3'接头连接、NudC去帽、5'接头连接、cDNA合成与PCR扩增、测序;以掺入的合成NAD-RNA标准品验证。

3

NAD-RNA的LC-MS验证

验证pNAD-seq鉴定的候选RNA确实携带NAD帽。

用生物素化DNA探针从大肠杆菌总RNA中亲和纯化14个候选RNA,经核酸酶P1消化后进行LC-MS分析,检测NAD+特征离子。

4

NAD-linkSeq全长NAD-RNA测序

确定NAD-RNA的全长序列和长度分布。

总RNA不片段化,掺入四种不同长度NAD-RNA标准品,经SPAAC生物素化、富集、3'接头连接、NudC去帽、延伸5'接头连接、逆转录合成全长cDNA,进行Oxford Nanopore直接cDNA测序。

5

Northern blot验证NAD-RNA长度

验证NAD-linkSeq观察到的NAD-RNA与mRNA长度差异。

总RNA经SPAAC生物素化和链霉亲和素富集NAD-RNA,富集组分与输入RNA用digoxigenin标记的trmJ和acpP探针进行Northern blot分析。

6

氮限制下NAD-RNA动态重塑分析

比较氮限制与标准条件下NAD-RNA表达及转录起始位点使用的变化。

大肠杆菌在标准M9(18.7 mM NH4Cl)或氮限制M9(5.6 mM NH4Cl)中培养3.5 h,提取总RNA进行pNAD-seq和RNA-seq,并用NAD-PEGylation结合Northern blot验证gcvB和gadY。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
ADP-核糖基环化酶SigmaA9106
3-叠氮-1-丙醇Sigma776130
生物素-PEG4-DBCOBroadPharmBP-22295
T7 RNA聚合酶----
DNase ITakara2270B
小牛肠碱性磷酸酶Invitrogen18009019
pET28a载体Novagen69864
大肠杆菌Rosetta (DE3)感受态细胞Novagen70954
Ni-NTA树脂Thermo Scientific88222
10 kDa离心过滤器MilliporeUFC501008
MonoQ柱Cytiva29275878
快速蛋白液相色谱Bio-Rad7880003
Qubit荧光仪Thermo ScientificQ33216
RedSafe核酸染料INTRON21141
RNA上样染料Thermo ScientificR0641
小牛肠碱性磷酸酶NEBM0290
CutSmart缓冲液NEBB6004
MyOne T1磁珠Thermo Scientific65601
鼠源RNase抑制剂NEBM0314S
T4 RNA连接酶2截短型K227QNEBM0351L
RNA清洁浓缩试剂盒ZymoR1016
T4 RNA连接酶反应缓冲液NEBB0216L
T4 RNA连接酶1NEBM0204S
Maxima逆转录酶Thermo ScientificEP0742
Q5高保真DNA聚合酶NEBM0491L
AMPure XP磁珠BeckmanA63880
SupRealQ Ultra Hunter SYBR qPCR预混液VazymeQ713-02
细菌rRNA去除试剂盒IlluminaILL20037135EA
Illumina定向RNA文库构建试剂盒NEBE7420
RNase A/T1混合液Thermo ScientificEN0551
连接法DNA测序试剂盒V14ONTSQK-LSK114
GridIon测序仪ONT--
核酸酶P1NEBM0660S
TSQ Altis质谱仪Thermo Scientific--
ACQUITY UPLC HSS T3色谱柱Waters--
DBCO-mPEG(10 kDa)BroadPharmBP-22462
Hybond-N+膜CytivaRPN303B
DIG Easy Hyb杂交液Roche11603558001
封闭液Roche11585762001
CSPD化学发光底物Thermo ScientificT2142
ChemiDoc XRS+成像系统Bio-Rad--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
SPAAC加帽标记与NudC去帽
ADPRC浓度4.25 μM(SPAAC)或8.5 μM(建库);biotin-PEG4-DBCO 1 mM;NudC 0.58 μM;5'端二级结构影响去帽效率
阅读提示:Methods中SPAAC biotinylation、NudC decapping assay小节及Fig. 1b–h图注
pNAD-seq建库与NAD-RNA判定
总RNA 600 μg;片段化75 °C 2.5 min;ADPRC+与ADPRC−配对对照;判定阈值RPM>150、富集>20倍、p<0.05
阅读提示:Methods中pNAD-seq library preparation小节及Fig. 2a图注
氮限制处理
标准M9 18.7 mM NH4Cl与氮限制M9 5.6 mM NH4Cl;重悬后培养3.5 h;起始OD600=0.5
阅读提示:Methods中E. coli strain, culture conditions and RNA extraction小节
NAD-linkSeq
总RNA 400 μg;四种标准品用量150 pg/420 pg/800 pg/200 pg;不进行RNA片段化
阅读提示:Methods中NAD-linkSeq library preparation小节及Fig. 4a图注
LC-MS验证
14个候选RNA;核酸酶P1 50 U消化1 h;监测m/z 428.001;5S rRNA作为阴性对照
阅读提示:Methods中RNA pulldown and LC-MS/MS小节及Fig. 2m图注