候选H2A去泛素化酶筛选
鉴定体内负责去除H2AK119ub1的候选DUB。
受精后立即向合子显微注射Flag标记的各候选DUB mRNA,于晚期合子免疫染色检测H2AK119ub1水平及亚细胞定位;并结合公开RNA-seq与核糖体图谱分析表达动态。
Polycomb repressive-deubiquitinase complex safeguards oocyte epigenome and female fertility by restraining Polycomb activity.
包含卵母细胞特异性CKO小鼠、受精卵显微注射、CUT&RUN、RNA-seq及早胚表观遗传追踪等多层证据并含功能验证
Gdf9-iCre; Bap1fl/fl 卵母细胞特异性条件敲除小鼠 Prm-Cre; Bap1fl/fl 精子特异性敲除小鼠用于母源-合子双敲除 小鼠完全生长卵母细胞(FGO)与着床前胚胎 B6/129 × PWK F1杂交胚胎用于等位基因特异性分析
Bap1 CKO由Gdf9-iCre介导,对照为Bap1fl/fl,6–9周龄取材 受精卵显微注射各候选DUB mRNA浓度为2 µg/µl,Bap1与Asxl1共注射时为1 µg/µl,注射后约4–6小时检测H2AK119ub1 CUT&RUN采用spike-in(果蝇细胞核)归一化,H2AK119ub1/H3K27me3/H3K27ac结构域用HMM界定 RNA-seq差异基因标准为adj p<0.05、fold change≥2且高表达组FPKM>0.5 生育力评估为7周龄起与野生型B6雄鼠合笼6个月,统计产仔数与每窝幼崽数
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定体内负责去除H2AK119ub1的候选DUB。
受精后立即向合子显微注射Flag标记的各候选DUB mRNA,于晚期合子免疫染色检测H2AK119ub1水平及亚细胞定位;并结合公开RNA-seq与核糖体图谱分析表达动态。
确定BAP1缺失对卵母细胞H2AK119ub1及转录组的影响。
构建Gdf9-iCre; Bap1fl/fl CKO小鼠,取6–9周龄FGO行免疫荧光、免疫印迹、spike-in归一化CUT&RUN及RNA-seq。
解析BAP1缺失对常染色质与兼性异染色质标记的影响。
对CTR与CKO FGO行H3K27ac、H3K27me3免疫荧光与CUT&RUN,界定H3K27ac丢失区并分析其基因组分布及与基因表达关系。
检验BAP1缺失是否影响Polycomb介导的基因沉默。
分析1700个卵母细胞PcG靶基因启动子的H2AK119ub1、H3K27me3、H3K27ac信号,并与公开PRC1、PRC2 CKO卵母细胞RNA-seq比较去抑制情况。
确定母源BAP1缺失对生育力及着床前后发育的影响。
CTR与CKO雌鼠与野生型雄鼠合笼6个月评估生育力;收集E3.5、E6.5、E18.5胚胎并统计;通过IVF追踪matKO、patKO、mzKO胚胎发育进程。
阐明发育阻滞机制及异常染色质是否传递至胚胎。
对MII、L1C、E2C、L2C阶段行总RNA-seq;对着床前各期行H2AK119ub1、H3K27me3、H3K27ac免疫染色及L2C CUT&RUN;对morula及E6.5 EPI、VE、EXE行H3K27me3 CUT&RUN等位基因特异性分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 超数排卵 | 孕马血清促性腺激素 | BioVendor | -- |
| CARD HyperOva | Cosmo Bio | -- | |
| 人绒毛膜促性腺激素 | Sigma | -- | |
| 体外受精 | 人输卵管液 | Millipore Sigma | -- |
| 精子获能 | CARD FERTIUP预孵育液 | Cosmo Bio | -- |
| 胚胎培养 | M2培养基 | Millipore | -- |
| KSOM培养基 | Millipore | -- | |
| mRNA体外转录 | mMESSAGE mMACHINE T7 Ultra试剂盒 | Life Technologies | -- |
| 免疫荧光 | 兔抗H3K27me3抗体 | Cell Signaling | 9733 |
| 兔抗H2AK119ub1抗体 | Cell Signaling | 8240 | |
| 兔抗H3K27ac抗体 | Millipore Sigma | 07360 | |
| 鼠抗Flag抗体 | Sigma | F1804 | |
| 兔抗NANOG抗体 | Cosmo Bio | ATL-HPA072117-25 | |
| 山羊抗CDX2抗体 | R&D | AF3665 | |
| 鼠抗GATA4抗体 | R&D | MAB2606 | |
| 含DAPI的抗荧光淬灭封片剂 | -- | -- | |
| 免疫荧光成像 | Nikon A1R倒置共聚焦显微镜 | Nikon | A1R |
| 免疫印迹 | 兔抗BAP1抗体 | CST | 13271 |
| 兔抗微管蛋白抗体 | CST | 2144 | |
| β-肌动蛋白抗体 | -- | sc-47778 | |
| HRP标记抗兔IgG | CST | 7074P2 | |
| HRP标记抗鼠IgG | CST | 7076P2 | |
| Amersham Imager 680成像仪 | Amersham | 680 | |
| RNA-seq建库 | SMART-Seq链特异性建库试剂盒 | Takara | -- |
| SMART-Seq mRNA建库试剂盒 | Takara | -- | |
| Nextera XT样本制备试剂盒 | Illumina | -- | |
| CUT&RUN | 刀豆蛋白A包被磁珠 | Polysciences | -- |
| pAG-MNase | -- | -- | |
| CUT&RUN建库 | NEBNext Ultra II DNA文库制备试剂盒 | NEB | -- |
| 测序 | Illumina NovaSeq X Plus测序仪 | Illumina | -- |
| E6.5胚胎解剖 | 胰酶制剂 | Sigma | -- |
| 胰蛋白酶 | Fisher Scientific | -- | |
| 胎牛血清 | HyClone | -- | |
| 胚胎显微成像 | EVOSII细胞成像系统 | Thermo Fisher Scientific | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 卵母细胞特异性Bap1敲除模型 | 遗传背景(B6)、Gdf9-iCre品系、floxed外显子6–12、对照为Bap1fl/fl、取材周龄6–9周 阅读提示:Methods“Mouse strains and breeding”及Supplementary Fig. 2a–e |
| 候选DUB mRNA显微注射 | 注射时间窗约2–4 hpi、各mRNA浓度2 µg/µl(Bap1/Asxl1共注射1 µg/µl)、检测终点约6 hpi 阅读提示:Methods“Micro-injection of H2A DUB mRNAs”及Fig. 1a–c图注 |
| CUT&RUN与RNA-seq | spike-in果蝇细胞核数量、每样本卵母细胞/胚胎数、测序深度、HMM结构域界定参数、差异基因阈值 阅读提示:Methods“CUT&RUN data processing”“RNA-seq data processing”及Supplementary Data 3 |
| 生育力与胚胎发育评估 | 合笼起始周龄7周、合笼时长6个月、雄鼠品系C57BL/6J、E0.5判定为阴栓日、各时间点样本量与窝数 阅读提示:Methods“Mouse superovulation, IVF, embryo culture, and fertility assessment”及Fig. 4图注 |
| MZT与着床前染色质分析 | MII/L1C/E2C/L2C取样时间点、L2C CUT&RUN等位基因拆分、E6.5解剖为EPI/VE/EXE、每条件生物学重复数 阅读提示:Methods“RNA-seq and CUT&RUN library preparation and sequencing”及Fig. 5a、Fig. 6–7图注 |