SigmaR1是一种具有脂质结合活性的辅助易位子因子,调控蛋白质和脂滴稳态

SigmaR1 is an auxiliary translocon factor with lipid-binding activity that regulates protein and lipid droplet homeostasis.

作者信息Xuewen Hu, Tiantian Zhou, Tiansi Cui, Yuanjiao Du, Chunyu Song, Weiping Chang, Juan Xiong, Jichao Qin, Lin Deng, Wei-Ke Ji
PMID41476177
发布时间2025-12-31
DOI10.1038/s41467-025-68157-7

实验完整度

高

包含内源性敲入/KO细胞系、细胞分级分离、体外纯化蛋白pull-down、脂质组学、脂质体沉淀及透射电镜等多层级功能与机制验证

主要模型

sfGFP-SigmaR1敲入HeLa细胞系 SigmaR1敲除HeLa细胞系 HepG2及Huh7肝癌细胞系 小鼠原代肝细胞

重点核对

SigmaR1敲除HeLa细胞中p-eIF2α升高而总eIF2α不变 内源性sfGFP-SigmaR1与Nicalin、TRAPα、SEC11A、CCDC47相互作用 纯化His-Flag-SigmaR1与GFP-Nicalin或GFP-TRAPα的直接结合及PC增强作用 SigmaR1 siRNA联合OA(200 μM,16 h)处理HepG2和小鼠原代肝细胞的脂滴表型 SigmaR1∆2-8和脂质结合突变体(Mut2)在KO细胞中的挽救实验

摘要

Sigma非阿片类细胞内受体1(SigmaR1)是sigma受体家族成员,可与多种拟精神病药物相互作用,并参与广泛的细胞和生理功能。尽管其在人类生理和疾病中的重要性日益增加,但SigmaR1的亚细胞定位及其分子功能仍不明确。我们利用内源性标记和细胞分级分离显示,SigmaR1是一种II型整合内质网膜蛋白,特异性富集于内质网片层。SigmaR1 N端的一段短区域促进其内质网片层定位。重要的是,我们的生化研究表明,SigmaR1直接与易位子复合体的组分相互作用,包括TRAPα和Nicalin。此外,我们发现SigmaR1 C端的β-桶结构结合磷脂酰胆碱(PC),且PC的结合增强了SigmaR1与易位子复合体的结合。SigmaR1敲除系统性地损害了细胞蛋白质和脂质稳态,导致肝细胞中脂滴积累。总之,我们提出SigmaR1是一种结合脂质的辅助易位子因子,调控蛋白质和脂滴稳态,这可能构成SigmaR1在生理和疾病中广泛而重要功能的基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
SigmaR1的亚细胞定位、分子功能及其与内质网易位子复合体的关系尚不明确,本研究旨在阐明其定位决定机制和分子功能。
核心机制
SigmaR1通过N端短区域(残基2-8)靶向内质网片层并直接结合易位子组分TRAPα和Nicalin;其C端β-桶结合磷脂酰胆碱,PC结合增强SigmaR1与易位子复合体的结合,从而调控蛋白质与脂质稳态。
主要证据
利用sfGFP敲入HeLa细胞、细胞分级分离和大鼠肝组织分级分离证实内质网片层定位;CoIP-质谱、GFP-Trap、GST pull-down、体外纯化蛋白pull-down和FLIM验证直接相互作用;非靶向脂质组学、蛋白-脂质共迁移和脂质体沉淀验证PC结合;KO细胞定量蛋白质组和挽救实验以及HepG2、Huh7和小鼠原代肝细胞的脂滴表型验证功能。
研究意义
提出SigmaR1作为结合脂质的辅助易位子因子调控蛋白质和脂质稳态的工作模型,并基于其在肝细胞脂滴动态中的突出作用将其定位为代谢性肝病(如非酒精性脂肪性肝病)的潜在治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

确定SigmaR1的亚细胞定位

验证SigmaR1是否特异性定位于内质网片层

在COS7细胞中表达SigmaR1-GFP并与内质网片层标志物Halo-Sec61β及管状标志物Reticulon4-Halo、Reep5-Halo、Halo-Tex2共定位成像;构建sfGFP-SigmaR1敲入HeLa细胞系进行活细胞和免疫荧光成像;对大鼠肝组织和大鼠肝细胞进行蔗糖梯度膜分级分离检测内源性SigmaR1分布。

2

确定SigmaR1的膜拓扑与片层定位决定区域

验证SigmaR1的II型膜拓扑并鉴定介导内质网片层定位的N端区域

利用Flag标签与胞质Halo-Flag frankenbody的活细胞结合实验检测拓扑;构建SigmaR1全长、1-30、10-30及Δ2-8截短突变体与内质网标志物共定位成像;构建SigmaR1-NT与Tex2的嵌合蛋白检测其能否重新定位至片层。

3

鉴定并验证SigmaR1与易位子复合体的相互作用

确定SigmaR1的相互作用蛋白及相互作用的直接性和特异性

以SigmaR1-GFP为诱饵进行CoIP结合质谱鉴定互作蛋白;在敲入细胞中进行GFP-Trap验证内源性相互作用;使用纯化的His-Flag-SigmaR1与GFP-Nicalin或GFP-TRAPα进行体外pull-down;进行蔗糖梯度分级分离和FLIM验证片层及核糖体结合组分中的特异性互作。

4

验证SigmaR1的脂质结合活性及结构基础

确定SigmaR1是否直接结合磷脂及其结合结构域

对敲入细胞内源性SigmaR1进行非靶向脂质组学(LC-MS/MS);分子对接分析β-桶与PC结合模式;用纯化GST-SigmaR1∆TM、GST-SigmaR1∆2-30和GST-SigmaR1-80-168与NBD标记脂质进行体外蛋白-脂质共迁移实验;构建β-桶疏水残基突变体并进行脂质体沉淀实验;检测PC对SigmaR1与Nicalin/TRAPα结合的增强作用。

5

评估SigmaR1缺失对蛋白质稳态的影响

验证SigmaR1在蛋白质稳态维持中的作用及结构域依赖性

检测SigmaR1 KO HeLa细胞中p-eIF2α、eIF2α和BiP水平及毒胡萝卜素处理响应;对KO细胞进行定量质谱和GO/KEGG富集分析;在KO细胞中回补野生型SigmaR1-GFP、SigmaR1Δ2-8或脂质结合突变体后经流式分选进行蛋白质组分析。

6

评估SigmaR1缺失对肝细胞脂滴积累的影响

验证SigmaR1在肝细胞脂质稳态和脂滴动态中的作用及结构域依赖性

用两种SigmaR1 siRNA敲低HepG2、Huh7细胞和小鼠原代肝细胞,OA刺激后BODIPY 558/568染色检测脂滴并测定TG和胆固醇水平;TEM观察HepG2脂滴超微结构;在siRNA背景中回补siRNA抗性SigmaR1-GFP、sfGFP-SigmaR1、SigmaR1-GFP∆81-160、脂质结合Mut2或SigmaR1-GFPΔ2-8检测脂滴表型。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清VivaCell--
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen--
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂Invitrogen--
油酸Sigma-AldrichO1008
嘌呤霉素SolarbioP8230
EBSS缓冲液ServicebioG4213
毒胡萝卜素BeyotimeSC0389
Janilia Fluo 646 HaloTag配体PromegaGA1120
BODIPY-558/568 C12脂滴染料ThermoFisher ScientificD3835
NBD标记磷脂酰胆碱Avanti Polar Lipids810133
NBD标记磷脂酰丝氨酸Avanti Polar Lipids810198
NBD标记磷脂酸Avanti Polar Lipids810138
NBD标记神经酰胺Avanti Polar Lipids810211
NBD标记胆固醇Avanti Polar Lipids810252
GFP纳米抗体琼脂糖珠LABLEADGNA-50-1000
抗Flag磁珠BeyptimeP2115
GST琼脂糖珠SangonC600031-0025
蛋白酶抑制剂混合物TargetMolC0001
抗SigmaR1抗体(B-5)Santa Cruzsc-137075
抗Sec61β抗体(E-6)Santa Cruzsc-393633
抗Nicalin抗体promabP09771
抗SEC11A抗体promabP02842
抗TRAPα抗体Sino Biological Inc201011-T32
抗CCDC47抗体Sino Biological Inc201332-T44
磷酸化eIF2α(Ser51)抗体Cell Signaling Technology9721
eIF2α抗体Cell Signaling Technology9722
抗BiP抗体AbclonalA11366
抗Perilipin-2抗体AbclonalA6276
抗Sec61β抗体Proteintech15087-1-AP
Alexa Fluor 546驴抗兔IgG二抗InvitrogenA10040
总甘油三酯测定试剂盒NanJing JianCheng Bioengineering InstituteA110-1-1
总胆固醇测定试剂盒NanJing JianCheng Bioengineering InstituteA111-1-1
HiScript II第一链cDNA合成试剂盒VazymeR212
ChamQ通用SYBR Green qPCR预混液VazymeQ711
Trizol试剂Invitrogen15596026
pLenti-CRISPR-V2载体Addgene52961
pSpCas9(BB)-2A-GFP(pX-458)载体Addgene48138
转盘共聚焦显微镜(Dragonfly CR-DFLY-201-40)Andor--
Leica Stellaris STED激光共聚焦显微镜Leica--
Tecnai G2 20 TWIN透射电镜FEI--
Bio-Rad ChemiDoc XRS+成像系统Bio-Rad--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
SigmaR1亚细胞定位
敲入细胞克隆(sfGFP-SigmaR1敲入HeLa克隆2)、内质网片层与管状标志物选择、大鼠肝组织蔗糖梯度分级分离组分收集
阅读提示:Results“SigmaR1 is an ER sheet protein”及Fig. 1图注;Methods“Preparation of rough ER fraction from rat liver and sfGFP-Sigmar1-KI cell”
SigmaR1与易位子互作
纯化蛋白组合(His-Flag-SigmaR1、GFP-Nicalin、GFP-TRAPα)、SigmaR1∆2-8突变、FLIM供受体组合、核糖体结合与游离片层组分
阅读提示:Results“SigmaR1 directly interacts with the translocon complex”及Fig. 3图注;Methods“In vitro pull-down assay of his-flag-SigmaR1 and GFP-TRAPα/GFP-nicalin”
SigmaR1脂质结合
NBD标记脂质种类与浓度、脂质体组成(70% DOPC、30% PE、0.75 M蔗糖)及用量、β-桶突变体位点(Mut2:104 V、105 L、106 L、107F-W)
阅读提示:Results“SigmaR1 binds to PC via a C-terminal β-barrel structure”及Fig. 4图注;Methods“In vitro protein-lipid co-migrating assays”和“Liposome pelleting assay”
SigmaR1缺失的蛋白质稳态表型
KO细胞克隆(KO#3)、毒胡萝卜素浓度与时间点(1 μM,0、3、6、12、24 h)、回补构建体及FACS分选门控
阅读提示:Results“SigmaR1 KO impairs cellular protein homeostasis”及Fig. 5图注;Methods“Fluorescence-activated cell sorting (FACS) analysis”
肝细胞脂滴积累表型
OA浓度与处理时间(200 μM,16 h)、SigmaR1 siRNA编号与转染方案(两次,每次50 ng)、细胞类型(HepG2、Huh7、小鼠原代肝细胞)、挽救构建体
阅读提示:Results“SigmaR1 depletion resulted in an accumulation of lipid droplets in hepatocytes”及Fig. 6图注;Methods“OA induced LD accumulation”和“Cell cultures, transfection and RNAi”