自噬诱导与sEVs尺寸分布分析
探究自噬反应对sEVs分泌量和粒径分布的影响。
用血清饥饿、雷帕霉素或巴弗洛霉素A1处理细胞,收集上清,差速离心分离sEVs,NTA检测粒径分布和浓度;并在小鼠饥饿模型中检测血清sEVs。
Autophagic extracellular vesicles (AEVs) are distinct from exosomes and play crucial roles in viral infections.
包含体外细胞系、基因敲除/敲低、蛋白质组学、小鼠模型及临床血清样本,并进行了功能与机制验证。
HEK-293T细胞(野生型及基因敲除/敲低) 多种细胞系(Neuro-2a、THP-1、SH-SY5Y、ARPE-19、HeLa、NIH 3T3、L929) C57BL/6J小鼠(野生型及Rab27a-KO) 健康男性血清样本(年轻组与老年组)
自噬诱导条件:血清饥饿24小时、雷帕霉素100 nM处理24小时、巴弗洛霉素A1 20 nM处理24小时 基因敲除/敲低验证:TSG101、ATG7、Rab11、CD63、Rab13、Rab27a敲除;CHMP4A/B、VPS4A/B等siRNA敲低 AEVs分离方法:0.22 μm和0.1 μm过滤后,40,000×g离心60分钟,再100,000×g超速离心90分钟 病毒感染的剂量与时间:CVB4 0.05 TCID50、EV71 0.03 TCID50感染24小时 动物实验:野生型及Rab27a-KO小鼠禁食48小时;每只小鼠腹腔注射5×10^7 CVB4感染细胞来源的AEVs,每组n=6
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究自噬反应对sEVs分泌量和粒径分布的影响。
用血清饥饿、雷帕霉素或巴弗洛霉素A1处理细胞,收集上清,差速离心分离sEVs,NTA检测粒径分布和浓度;并在小鼠饥饿模型中检测血清sEVs。
验证<100 nm sEVs的增加是否依赖于自噬体形成而非外泌体生物发生。
构建TSG101-KO、ATG7-KO、Rab11-KO、CD63-KO细胞,在饥饿条件下分离囊泡,Western blot检测自噬货物和外泌体标志物,NTA检测<100 nm囊泡比例。
建立AEVs纯化方法并鉴定其蛋白质组成特征。
比较两种差速离心联合过滤方法(Method A和Method B),用NTA评估纯度;对纯化的AEVs进行定量蛋白质组学、GO富集分析和Western blot验证。
确定区分AEVs与外泌体的独特标志物。
通过蛋白质组学比较野生型、Rab11-KO、Rab13-KO细胞来源的AEVs,Western blot验证Rab13、ESCRT-III组分和自噬货物;免疫电镜定位LC3B、p62、Rab13;蛋白酶保护实验分析膜定位。
研究Rab13对AEVs形成和货物分选的影响。
构建Rab13-KO细胞,检测AEVs分泌量和货物蛋白;免疫荧光观察Rab13与LC3B、p62、CD63共定位;流式分选双膜体;超分辨显微镜观察AEVs亚型。
验证ESCRT-III组分和Rab27a对AEVs生成和分泌的功能必要性。
siRNA敲低CHMP4A/B、VPS4A/B等,检测AEVs分泌;TEM观察双膜体形态;构建Rab27a-KO细胞和小鼠,检测AEVs分泌。
验证AEVs能否携带肠道病毒颗粒或基因组并扩大病毒嗜性。
CVB4或EV71感染细胞,分离AEVs,TEM观察病毒颗粒,Western blot检测VP1,RT-qPCR检测病毒RNA;用AEVs处理HeLa、NIH 3T3、L929细胞,检测感染和病毒复制;小鼠腹腔注射AEVs,检测组织病毒RNA和生存率。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | HyClone | -- |
| RPMI 1640培养基 | HyClone | -- | |
| DMEM/F12培养基 | HyClone | -- | |
| 胎牛血清 | ExCell Bio | -- | |
| 支原体检测 | PlasmoTest支原体检测试剂 | InvivoGen | -- |
| 自噬诱导 | 巴弗洛霉素A1 | TargetMol | -- |
| 雷帕霉素 | TargetMol | -- | |
| 细胞死亡检测 | LDH检测试剂盒 | DOJINDO | CK12 |
| 质粒 | pCMV-GFP-LC3B质粒 | Beyotime Biotechnology | D2815 |
| pCMV-CD63-mCherry质粒 | Beyotime Biotechnology | D2841 | |
| CRISPR-Cas9基因敲除 | pSpCas9(BB)-2A-Puro质粒 | Addgene | 48139 |
| BbsI酶 | New England Biolabs | R3539 | |
| T4连接酶 | Takara | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 细胞筛选 | 嘌呤霉素 | -- | -- |
| sEVs分离 | 0.22微米孔径滤膜 | Millipore | -- |
| Optima L-100 XP超速离心机 | Beckman Coulter | -- | |
| NTA检测 | Nano NS300仪器 | Malvern Instruments | -- |
| SQSTM1/p62抗体偶联Alexa Fluor 488 | Abcam | ab185015 | |
| RPS检测 | Nanocoulter计数器 | Resen Technology | -- |
| 密度梯度离心 | 碘克沙醇 | Sigma‑Aldrich | -- |
| SW40 Ti转子 | Beckman Coulter | -- | |
| 蛋白酶保护实验 | 胰蛋白酶 | Gibco | -- |
| Triton X-100 | Sigma‑Aldrich | -- | |
| PBA分析 | 生物素化霍乱毒素B亚基 | -- | -- |
| 质谱分析 | Orbitrap Astral质谱仪 | Thermo Scientific | -- |
| Vanquish Neo系统液相色谱 | Thermo Scientific | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Santa Cruz | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23225 | |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| SQSTM1/p62抗体 | Abcam | ab109012 | |
| CD9抗体 | Abcam | ab236630 | |
| CD63抗体 | Abcam | ab193349 | |
| CHMP2A抗体 | Proteintech | 10477-1-AP | |
| VPS4A/B抗体 | Proteintech | 17673-1-AP | |
| LC3B抗体 | Abclonal | A19665 | |
| NBR1抗体 | Proteintech | 16004-1-AP | |
| TSG101抗体 | Proteintech | 14497-1-AP | |
| SDCBP/Syntenin-1抗体 | Proteintech | 2239-1-AP | |
| CD81抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-166029 | |
| Rab13抗体 | Abclonal | A10571 | |
| GAPDH抗体 | Abclonal | AC033 | |
| CD81抗体 | R&D | MAB4615 | |
| Calreticulin抗体 | Cell Signaling technology | 12238 | |
| Rab7抗体 | Cell Signaling technology | 9367 | |
| α-tubulin抗体 | Cell Signaling technology | 5335 | |
| Rab11抗体 | Cell Signaling technology | 5589 | |
| Rab5抗体 | Cell Signaling technology | 3547 | |
| EEA1抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-137130 | |
| 肠道病毒71型VP1抗体 | GeneTex | GTX132339 | |
| 免疫荧光 | 鼠抗CD63抗体 | Abcam | ab193349 |
| 兔抗Rab13抗体 | Abclonal | A10572 | |
| 鼠抗LC3B抗体 | Abclonal | A17424 | |
| 鼠抗p62抗体 | Abcam | 56416 | |
| 兔抗CD63抗体 | Abcam | ab252919 | |
| DAPI染料 | Beyotime Biotechnology | -- | |
| 透射电镜 | 环氧树脂 | Sigma-Aldrich | 45345 |
| 免疫电镜 | LC3B抗体 | MBL | M152-3 |
| p62抗体 | MBL | PM045 | |
| Rab13抗体 | Abclonal | A10571 | |
| 抗鼠IgG金标抗体 | Sigma‑Aldrich | G7777 | |
| 抗兔IgG金标抗体 | Sigma‑Aldrich | 7402 | |
| 流式分选 | FACSAria Ⅲ细胞分选仪 | BD | -- |
| 病毒RNA提取 | TRIzol试剂 | TaKaRa | -- |
| 逆转录 | 逆转录试剂盒 | TaKaRa | -- |
| 实时定量PCR | SYBR-Green预混液 | Life Technologies | -- |
| ABI QuantStudio 6 Flex实时PCR仪 | Life Technologies | -- | |
| 病毒纯化 | Protein A/G磁珠 | Millipore | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与自噬诱导 | 血清饥饿时间24小时;雷帕霉素浓度100 nM;巴弗洛霉素A1浓度20 nM;处理时间24小时;FBS需超速离心去除EVs(120,000×g,3小时) 阅读提示:Methods: Cell culture, virus strains and plasmids |
| AEVs分离 | 过滤孔径0.22 μm和0.1 μm;40,000×g离心60分钟;100,000×g离心90分钟;所有离心温度4°C 阅读提示:Methods: Preparation of small extracellular vesicles (sEVs) and autophagic extracellular vesicles (AEVs) |
| 基因敲除细胞系构建 | sgRNA序列;puromycin浓度2 μg/mL筛选3天;单克隆筛选3周;敲除验证方法Western blot 阅读提示:Methods: Generation of CRISPR-Cas9 KO cell lines |
| 病毒感染的AEVs实验 | CVB4感染剂量0.05 TCID50;EV71感染剂量0.03 TCID50;感染时间24小时;使用10% EV去除FBS培养基 阅读提示:Methods: Preparation of small extracellular vesicles (sEVs) and autophagic extracellular vesicles (AEVs); Analysis of vesicles-enclosed enterovirus infection |
| 动物实验 | 小鼠品系C57BL/6J;禁食时间48小时;CVB4-AEVs注射量来自5×10^7感染细胞;每组n=6;观察10天 阅读提示:Methods: Animal experiment |
| NTA检测 | 样品浓度1×10^7/ml至1×10^9/ml;温度25~26°C;注射泵速度40 μl/s;每次60秒视频,三次记录 阅读提示:Methods: Nanoparticle tracking analysis (NTA) for particle size and concentration of EVs |