建立多种小鼠转移模型并评估普萘洛尔抗转移效应
验证βAR阻断是否减弱肺转移。
采用B16、MC38、T241尾静脉实验转移模型及EO771原位自发转移模型,口服普萘洛尔后通过结节计数、H&E、qRT-PCR和流式检测转移负荷。
β-adrenergic signaling blockade attenuates metastasis through activation of cytotoxic CD4 T cells.
多小鼠转移模型、自发转移模型、免疫细胞耗竭、CRISPR敲除、流式聚类、RNA-seq、细胞毒实验
B16F10黑色素瘤肺转移模型 MC38结肠腺癌肺转移及皮下模型 T241纤维肉瘤肺转移模型 EO771.LMB.GFP原位乳腺癌自发肺转移模型
普萘洛尔经饮水给药0.5 g/L,从接种后立即开始 B16、MC38、T241实验转移经尾静脉注射0.3×10^6细胞,B16/T241于第14天、MC38于第25天终点 CD4+、CD8+、NK细胞耗竭抗体剂量与时间:接种前2天400 μg,之后每周两次250 μg B16.CiitaKO与B16.mock对照用于MHC II依赖性验证 CCR2-DTR小鼠经白喉毒素8 ng/g体重耗竭CCR2+细胞
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证βAR阻断是否减弱肺转移。
采用B16、MC38、T241尾静脉实验转移模型及EO771原位自发转移模型,口服普萘洛尔后通过结节计数、H&E、qRT-PCR和流式检测转移负荷。
确定NK、CD8+或CD4+ T细胞对普萘洛尔抗转移效应的必要性。
在B16肺转移模型中分别耗竭NK、CD8+或CD4+ T细胞,结合普萘洛尔治疗并量化转移和CD4+ T细胞浸润。
验证普萘洛尔是否诱导Th1极化和细胞毒性CD4+ T细胞。
对肺转移浸润CD4+ T细胞进行高维流式聚类和RNA-seq,分离脾CD4+ T细胞与B16细胞共培养,检测细胞因子和xCELLigence实时杀伤。
检验CD4+ T细胞杀伤是否依赖癌细胞MHC II表达。
用CRISPR-Cas9敲除Ciita生成B16.CiitaKO,与B16.mock对照比较普萘洛尔抗转移效应及CD4+ T细胞浸润和细胞因子表达。
确定CCR2+单核细胞在普萘洛尔效应中的作用及其与CD4+ T细胞变化的先后关系。
流式分析肺浸润单核细胞,使用CCR2-DTR小鼠经白喉毒素耗竭CCR2+细胞,并在第4、8、12天纵向检测循环和肺免疫细胞。
检验βAR阻断是否与抗PD1或抗CTLA-4协同控制转移。
B16肺转移模型给予普萘洛尔联合αPD1或αCTLA-4,量化转移和循环Th1细胞。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | 普萘洛尔盐酸盐 | Sigma | P0884 |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | 10564011 |
| RPMI 1640培养基 | Gibco | 61870036 | |
| 胎牛血清 | Gibco | A5209501 | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | 15140122 | |
| HEPES缓冲液 | Gibco | 15630080 | |
| 动物实验 | 抗PD1单克隆抗体 | BioXcell | BE0146 |
| 抗CTLA-4单克隆抗体 | BioXcell | BE0164 | |
| 抗NK1.1单克隆抗体 | BioXcell | BE0036 | |
| 抗CD4单克隆抗体 | BioXcell | BE0003-1 | |
| 抗CD8单克隆抗体 | BioXcell | BE0061 | |
| 白喉毒素 | Sigma | D0564 | |
| 流式分析 | Zombie Aqua活性染料 | BioLegend | 423101 |
| Zombie NIR活性染料 | BioLegend | 423105 | |
| Fc受体阻断剂 | Miltenyi | 130-092-575 | |
| 补偿微球 | BD Biosciences | 01-2222-41 | |
| Cytofix/Cytoperm固定/透化试剂盒 | BD Biosciences | 554714 | |
| 高尔基体阻断剂 | BD Biosciences | BDB555029 | |
| Brilliant染色缓冲液 | BD Biosciences | 563794 | |
| 免疫组织化学 | 兔抗小鼠Ki67抗体 | Abcam | AB16667 |
| 多克隆兔抗小鼠TH抗体 | Novus Biologicals | NB300-109 | |
| EnVision兔检测系统 | Agilent | K4003 | |
| NOVAred底物 | Vector | SK4800 | |
| RT-qPCR | RNeasy Mini试剂盒 | Qiagen | 74104 |
| iScript cDNA合成试剂盒 | Bio Rad | 1708890 | |
| Brilliant III超快SYBR染料系统 | Agilent | NC0203335 | |
| RNA-seq | 小鼠CD115磁珠试剂盒 | Miltenyi | 130-096-354 |
| 小鼠CD4+ T细胞分离试剂盒 | Miltenyi | 130-104-454 | |
| 细胞培养 | Geltrex基底膜基质 | Gibco | A1569601 |
| Dynabeads人T细胞激活CD3/CD28微球 | Gibco | 11131D | |
| 白细胞介素-12 | Peprotech | 200-12H | |
| 干扰素γ | Peprotech | 300-02 | |
| 重组小鼠IL-2 | Peprotech | 212-12 | |
| 白细胞介素-12 | Peprotech | 210-12 | |
| 抗CD3抗体 | BioXCell | BE0002 | |
| 抗CD28抗体 | BioXCell | BE0015-1 | |
| 抗IFNγ抗体 | BioXCell | BE0245 | |
| 抗IL-4抗体 | BioXCell | 11B11 | |
| 抗IL-4抗体 | BioXCell | BE0240 | |
| CellTrace Violet染料 | Invitrogen | C34557 | |
| 流式分析 | Novocyte Quanteon流式细胞仪 | Agilent | -- |
| 细胞分选 | FACSMelody细胞分选仪 | BD Biosciences | -- |
| 实时细胞分析 | xCELLigence SP系统 | ACEA Biosciences | -- |
| E-plate 96板 | ACEA Biosciences | -- | |
| RNA-seq | NovaSeq 6000测序平台 | Illumina | -- |
| 细胞培养 | EasySep小鼠MDSC分离试剂盒 | STEMCELL Technologies | 19867 |
| 小鼠CD8a(Ly-2)磁珠 | Miltenyi | 130-117-044 | |
| 小鼠抗F4/80超纯磁珠 | Miltenyi | 130-110-443 | |
| LS柱 | Miltenyi | 130-042-401 | |
| 小鼠初始CD4+ T细胞分离试剂盒 | Miltenyi | -- | |
| 人初始CD4+ T细胞分离试剂盒 | Stem Cell Technologies | -- | |
| 小鼠未接触CD4+ T细胞分离试剂盒 | Miltenyi | 130-104-454 | |
| 组织消化 | I型胶原酶 | Worthington | LS005275 |
| DNase I | Worthington | LS006331 | |
| 红细胞裂解液 | Qiagen | 158904 | |
| 柠檬酸pH 6.1抗原修复液 | Agilent | S1699 | |
| RNAlater保存液 | Invitrogen | AM7022 | |
| RLT缓冲液 | Qiagen | 79216 | |
| 转染 | 核酸内切酶Cas9 | Integrated DNA technologies | 1081058 |
| Neon电转染系统 | Invitrogen | -- | |
| 流式分析 | I-A/I-E(MHC II类)抗体 | Biolegend | 107607 |
| 细胞培养 | 小鼠IFNγ | Peprotech | 315-05 |
| 白细胞介素-2 | Clinigen | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 普萘洛尔给药 | 剂量0.5 g/L饮水、给药起始时间、给药途径 阅读提示:Methods-Therapies |
| 实验转移模型 | 细胞接种量0.3×10^6、接种途径尾静脉、终点时间B16/T241第14天、MC38第25天 阅读提示:Methods-In vivo experiments |
| 免疫细胞耗竭 | 抗体剂量400 μg/250 μg、给药时间、克隆号 阅读提示:Methods-Therapies |
| MHC II依赖性验证 | B16.CiitaKO与B16.mock构建方法、敲除效率、IFNγ刺激条件 阅读提示:Methods-CRISPR-Cas9 guided genome editing及Fig. 4 legend |
| CCR2+单核细胞耗竭 | 白喉毒素剂量8 ng/g、给药频率、CCR2-DTR小鼠来源 阅读提示:Methods-In vivo experiments及Methods-Therapies |
| CD4+ T细胞细胞毒性实验 | 效靶比50:1、共培养时间72小时、靶细胞预处理 阅读提示:Methods-xCELLigence real-time cell analysis assay及Fig. 4 legend |