验证RCA信号稳定性与免疫染色保留
确认RCA产物在多次剥离后仍保留原位,并解决免疫染色信号丢失问题。
用80%甲酰胺进行多轮剥离,检测RCA焦点位移和计数;比较后固定(4% PFA 2小时)前后常规免疫染色信号。
Cassini: streamlined and scalable method for in situ profiling of RNA and protein.
包含体外RNA检测、小鼠脑组织、人脑组织及多种抗体标记,并与HCR-FISH比较验证。
野生型C57BL/6小鼠脑组织切片 人阿尔茨海默病及对照脑组织切片 HCR-FISH参考检测
RCA产物在80%甲酰胺剥离后保持原位,位移<200 nm,焦点计数稳定 4%多聚甲醛后固定2小时恢复免疫染色信号 低分子量(~4K)硫酸葡聚糖封闭缓冲液兼容RCA且保持抗体特异性 偶联抗体浓度降低100倍以匹配RCA信号 与HCR-FISH比较7个基因的局部焦点密度和Amigo2梯度
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认RCA产物在多次剥离后仍保留原位,并解决免疫染色信号丢失问题。
用80%甲酰胺进行多轮剥离,检测RCA焦点位移和计数;比较后固定(4% PFA 2小时)前后常规免疫染色信号。
寻找既能保持偶联抗体特异性又不抑制RCA的封闭添加剂。
测试不同分子量硫酸葡聚糖(>500K与~4K)对RCA和抗体特异性的影响。
评估Cassini与成熟HCR-FISH在焦点大小和密度定量上的一致性。
选择7个不同丰度基因,在小鼠脑组织切片中比较Cassini与HCR-FISH的焦点面积和局部密度(10 μm半径内)。
验证Cassini在同一组织样本中同时检测RNA和蛋白质(包括常规和偶联抗体)的能力。
在小鼠脑半球切片上,进行10轮检测,测量8种RNA和2种偶联抗体,同时保留Nestin和Gephyrin常规免疫染色。
验证Cassini在人类病理组织中的蛋白质多重检测能力。
在阿尔茨海默病和对照脑组织切片上,检测5个特征(2个常规+3个偶联),包括β-淀粉样蛋白、NeuN、MAP2、Ulex和GFAP。
展示Cassini的易用性和通量,在单个小鼠脑半球中检测30种mRNA和2种偶联抗体。
在小鼠脑半球(~40 mm2)上进行30种mRNA和2种偶联抗体(NeuN、GFAP)的检测,全流程缓冲液交换和孵育时间47分钟,四通道成像7分钟。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 组织处理 | 多聚-L-赖氨酸溶液(0.01%) | Sigma | A-005-C |
| 杂交 chamber(9x9mm) | Biorad | SLF0201 | |
| 固定与透化 | Triton X | Sigma | X100-5ML |
| 抗体偶联 | oYo-Link®寡核苷酸定制系统 | AlphaThera | -- |
| LED PX2光交联设备 | AlphaThera | -- | |
| 免疫染色 | 小鼠FcR封闭试剂 | Miltenyi biotec | 130-092-575 |
| 人FcR封闭试剂 | Miltenyi biotec | 130-059-901 | |
| RNA酶抑制剂 | Lucigen | 30281-1-LU | |
| 超纯BSA 5% | Invitrogen | 56773 | |
| 硫酸葡聚糖-4K | Sigma | 75027 | |
| 硫酸葡聚糖(高分子量) | Sigma | S4031 | |
| 抗Nestin抗体 | Abcam | ab134017 | |
| 抗Gephyrin抗体 | Abcam | ab181382 | |
| 抗GFAP抗体 | Synaptic System | 173011 | |
| 抗NeuN抗体(小鼠) | Synaptic System | 266008 | |
| 抗MAP2抗体 | Abcam | ab92434 | |
| 抗NeuN抗体(人) | Proteintech | 26975-1-AP | |
| β-淀粉样蛋白抗体 | Cell signaling | 9888T | |
| ULEX-生物素 | VectorLabs | B-1065-2 | |
| 驴抗兔IgG AF647 | Thermo Fisher Scientific | A-31573 | |
| 山羊抗小鼠Ig AF568 | Thermo Fisher Scientific | A11031 | |
| 山羊抗鸡IgY AF488 | VWR | 102649-304 | |
| 探针杂交、连接和RCA | HybEZ™ II杂交炉 | ACDBio | -- |
| 甲酰胺 | Sigma-Aldrich | F7503-4L | |
| 20X SSC | Thomas Scientific | C000A15 | |
| SplintR连接酶 | NEB | M0375L | |
| Phi-29缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | EP0094 | |
| dNTP | NEB | N0447L | |
| Phi29 | Thermo Fisher Scientific | EP0094 | |
| RNA酶抑制剂 | Lucigen | 30281-2-LU | |
| 自动化缓冲液交换 | FCS2流动池 | Bioptechs | -- |
| 12入口旋转阀 | Advanced Microfluidic | -- | |
| 蠕动泵 | Kamoer | KCM-ODM-B253 | |
| DAPI | Thermo Fisher | 62248 | |
| 成像系统 | Nikon Eclipse Ti2倒置共聚焦显微镜 | Nikon | -- |
| Andor Dragonfly | Oxford Instruments | -- | |
| Zyla Plus 4.2百万像素CMOS相机 | -- | -- | |
| HCR-FISH | HCR-FISH探针 | Molecular Instruments | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| RCA产物稳定性验证 | 剥离缓冲液:80%甲酰胺;剥离次数:多轮;焦点位移阈值<200 nm 阅读提示:Results第一段及Supplementary Fig. 1 |
| 免疫染色后固定 | 后固定试剂:4%多聚甲醛;时间:2小时;温度:室温 阅读提示:Results第一段及Fig. 1b |
| 偶联抗体封闭缓冲液 | 硫酸葡聚糖分子量:~4K(Sigma #75027);浓度:1%;对照高分子量>500K(Sigma #S4031) 阅读提示:Methods免疫染色小节及Fig. 1c |
| 与HCR-FISH比较 | 基因数:7个;局部密度计算半径:10 μm;生物学重复:三重复(Cux2 Cassini两重复);统计检验:单尾Student's t检验 阅读提示:Results及Fig. 1e-g |
| 高通量检测30种mRNA和2种抗体 | 组织面积:~40 mm2;检测速度:18分钟/特征;缓冲液交换和孵育总时间:47分钟;成像时间:7分钟 阅读提示:Results及Fig. 2 |