建立HCMV感染模型并进行Hi-C分析
确定HCMV感染对宿主基因组三维组织的影响
NHDF以MOI 5感染TB40/E,于72、96、120 h.p.i.收集,甲醛交联后进行Hi-C文库构建和测序,分析染色质接触、区室和TAD变化
Microtubule mechanotransduction refines cytomegalovirus interactions with and remodeling of host chromatin.
包含Hi-C、TTseq/RNAseq、CUT&RUN多组学及RNAi功能验证,覆盖宿主与病毒基因组互作和机制
原代人正常真皮成纤维细胞(NHDF) HCMV临床株TB40/E感染NHDF(MOI 5) siRNA敲低ATAT1或SUN1的NHDF
NHDF感染HCMV TB40/E MOI 5,于72、96、120 h.p.i.收集 Hi-C使用Arima HiC+ Kit,约1-2百万细胞,2×150 bp测序 TTseq于收集前1小时以500 μM 4-硫尿苷脉冲60分钟 CUT&RUN使用H3K4me3和H3K9me3抗体,E.Coli DNA spike-in归一化 siRNA转染150 pmol/ml,感染后12小时处理,96/120小时时间点于72小时二次敲低
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定HCMV感染对宿主基因组三维组织的影响
NHDF以MOI 5感染TB40/E,于72、96、120 h.p.i.收集,甲醛交联后进行Hi-C文库构建和测序,分析染色质接触、区室和TAD变化
解析感染对新生转录和稳态转录组的影响及其与染色质重塑的相关性
在收集前1小时用4-硫尿苷标记新生RNA,分离生物素化新生RNA进行TTseq,同时保留总RNA进行RNAseq,比对并鉴定差异表达基因、读入和读通事件
独立验证区室分类并确定病毒基因组与宿主染色质的相互作用区域
使用H3K4me3和H3K9me3抗体进行CUT&RUN,结合Hi-C数据定义病毒富集区域(VERs),分析病毒reads在区室中的分布
探究微管机械转导在病毒-宿主基因组相互作用及宿主转录重编程中的作用
使用两种独立siRNA敲低ATAT1或SUN1,进行Hi-C和TTseq,比较病毒接触模式和基因表达变化
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | Dulbecco改良Eagle培养基 | Fisher Scientific | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| L-谷氨酰胺 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 胰蛋白酶 | Corning | 25-052-CI | |
| RNA干扰 | 对照非靶向siRNA-A | ThermoFisher Scientific | AM4635 |
| 对照非靶向siRNA-B | ThermoFisher Scientific | AM4637 | |
| αTAT1 siRNA-A | ThermoFisher Scientific | AM16708A, ID: 130789 | |
| αTAT1 siRNA-B | ThermoFisher Scientific | 4392420, ID: s36739 | |
| SUN1 siRNA-A | ThermoFisher Scientific | AM16708A, ID: 222696 | |
| SUN1 siRNA-B | ThermoFisher Scientific | AM16708A, ID: 241855 | |
| Lipofectamine siRNA max转染试剂 | Invitrogen | 13778075 | |
| Western blot | 乙酰化α-微管蛋白抗体 | Sigma-Aldrich | T6793 |
| SUN1抗体 | Novus Biologicals | NBP1-87396 | |
| β-肌动蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | 3700 | |
| 硝酸纤维素膜 | GE Healthcare Life Sciences | -- | |
| ECL检测底物 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Hi-C | Arima HiC+试剂盒 | Arima | A410231 |
| 甲醛 | Fisher | F79-500 | |
| NEB Ultra II DNA文库制备试剂盒 | New England Biolabs | E7645S | |
| CUT&RUN | CUT&RUN试剂盒 | Epicypher | 14-1048 |
| H3K4me3抗体 | Cell Signaling Technology | 9751 | |
| H3K9me3抗体 | Cell Signaling Technology | 4658 | |
| TTseq | 4-硫尿苷 | Sigma-Aldrich | T4509 |
| TRIzol试剂 | Thermo Fisher | 15596018 | |
| Qubit 3.0荧光计 | Invitrogen | -- | |
| Qubit RNA BR检测试剂盒 | Invitrogen | Q10210 | |
| Qubit RNA完整性检测 | Invitrogen | Q33221 | |
| NEBNext RNA片段化缓冲液 | New England Biolabs | E6150 | |
| RNAClean XP磁珠 | Beckman Coulter | A63987 | |
| MTSEA-生物素-XX | Biotium | 90066 | |
| Dynabeads MyOne链霉亲和素C1磁珠 | Life Technologies | 65001 | |
| NEBNext rRNA去除试剂盒v2 | New England Biolabs | E7400 | |
| TTseq/RNAseq | NEBNext Ultra II定向RNA文库制备试剂盒(Illumina) | New England Biolabs | E7760 |
| RNAseq | NEBNext rRNA去除试剂盒v2 | New England Biolabs | E7400 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| HCMV感染与Hi-C | 病毒株TB40/E、MOI 5、感染时间点72/96/120 h.p.i.、每个时间点2个生物学重复 阅读提示:Methods 'Cell culture and viruses'与'Hi-C Library preparation';Fig. 1图注 |
| TTseq/RNAseq | 4-硫尿苷浓度500 μM、脉冲时间60分钟、72 h.p.i. n=2与96 h.p.i. n=4、siRNA处理条件 阅读提示:Methods 'TTseq Library preparation'与'RNAseq Library preparation';Supplementary Fig. 4A-B |
| CUT&RUN | H3K4me3和H3K9me3抗体货号、96 h.p.i.、n=2、E.Coli DNA spike-in归一化 阅读提示:Methods 'CUT&RUN Library preparation'与'CUT&RUN Data processing';Fig. 5C-D图注 |
| RNAi敲低 | siRNA浓度150 pmol/ml、转染试剂Lipofectamine siRNA max、感染后12小时首次敲低、72小时二次敲低 阅读提示:Methods 'RNA interference (RNAi) and Western Blotting';Supplementary Fig. 11A |