肽基刚性纳米棒增强的甲基丙烯酰化明胶水凝胶用于骨软骨再生和增材制造

Peptide-based rigid nanorod-reinforced gelatin methacryloyl hydrogels for osteochondral regeneration and additive manufacturing.

作者信息Junjin Zhu, Yueting Wei, Guangmei Yang, Jiangnan Zhang, Jiayi Liu, Xin Zhang, Zhou Zhu, Junyu Chen, Xibo Pei, Dongdong Wu, Jian Wang
PMID40750776
发布时间2025-08
DOI10.1038/s41467-025-62540-0

实验完整度

高

包含材料合成与表征、体外细胞实验、大鼠皮下植入、兔骨软骨缺损模型、大鼠转录组测序及DLP打印验证。

主要模型

GelMA水凝胶及NSG水凝胶 大鼠BMSCs 兔膝关节骨软骨缺损模型 大鼠膝关节骨软骨缺损模型

重点核对

NSG2中PRN质量百分比为2%,GelMA为20 w/v%,光引发剂LAP为0.5 w/v% 压缩测试:圆柱样品高4 mm、直径4 mm,紫外光365 nm、10 W cm⁻²固化30秒 兔骨软骨缺损:直径3.5 mm、深4 mm,术后6周和12周评估 大鼠骨软骨缺损:直径2 mm、深2 mm,术后4周采集组织进行转录组分析 DLP打印:光强13 mW cm⁻²,曝光时间8秒,含0.5% LAP和0.5%酒石黄

摘要

提高生物医学应用水凝胶的韧性仍然是一个挑战,因为许多增韧方法往往牺牲生物相容性或原位适用性,从而限制了其在生物医学背景下的更广泛应用。受椎间盘启发,在此,我们介绍了一种生物相容的增韧策略,使用肽基刚性纳米棒(PRNs)作为甲基丙烯酰化明胶(GelMA)水凝胶中的骨架支撑。PRNs是具有极高刚性的短聚合物,能够在两端与GelMA分子共价交联。光固化纳米棒支撑的GelMA(NSG)分子产生NSG水凝胶,与未处理的GelMA水凝胶相比,其压缩强度(1018%)和韧性(508%)显著提高,同时增强了结构完整性和抗疲劳性。我们进一步证明,NSG水凝胶由于具有良好的生物相容性和光固化特性,非常适合受损骨软骨组织的原位修复,并且与增材制造高度兼容。该策略为开发高度生物相容且坚韧的水凝胶提供了潜在途径,显著扩展了其在生物医学应用中的潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何在不牺牲生物相容性和原位适用性的前提下,显著提高GelMA水凝胶的压缩强度和韧性,并用于骨软骨再生和增材制造。
核心机制
PRNs通过两端硫醇基团与GelMA的甲基丙烯酸酯基团共价连接,在压缩时通过肽链伸展和反平行四聚体束的反向运动耗散能量,从而增强水凝胶的压缩强度和韧性。
主要证据
压缩测试显示NSG2水凝胶的压缩强度为712.7±78.6 kPa、韧性为60.8±2.2 kJ m⁻³,较GelMA分别提高1018%和508%;兔骨软骨缺损模型中NSG组ICRS评分更高、软骨和软骨下骨再生更好;大鼠转录组测序和RT-qPCR显示NSG调节炎症反应并促进Col II表达。
研究意义
该策略为开发高度生物相容且坚韧的水凝胶提供了潜在途径,可用于负重组织原位修复和增材制造个性化结构,扩展了水凝胶在生物医学应用中的潜力。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

PRNs的制备与表征

获得短且刚性好的肽基纳米棒并表征其形貌、尺寸和生物相容性。

通过固相肽合成制备Pa和Pb,以约4:3摩尔比反应组装短PRNs;用AFM、DLS、SAXS表征尺寸;用BMSCs细胞形态和CCK-8评估生物相容性。

2

NSG水凝胶的制备与交联验证

将PRNs共价接枝到GelMA并光固化形成水凝胶网络,验证成功交联。

将Pa或PRN溶液与GelMA溶液混合,pH 8、40°C超声5小时制备前体;光固化形成水凝胶;用Ellman's assay、FT-IR、粘度测定和元素分析验证交联。

3

力学性能测试与分子动力学模拟

比较NSG与BSG、GelMA的压缩和拉伸力学性能,并揭示PRN增韧的分子机制。

进行单轴压缩、循环压缩-卸载和拉伸测试;用粗粒化分子动力学模拟PRN和肽束在拉伸下的行为。

4

水凝胶溶胀、降解和生物相容性评估

评估NSG水凝胶的溶胀、体外和体内降解、局部免疫反应和细胞相容性。

进行溶胀测试、体外降解、大鼠皮下植入评估降解和免疫荧光(CD68、iNOS、CD206);用BMSCs进行2D、3D和浸提液培养评估细胞活性。

5

兔骨软骨缺损修复评估

评估NSG水凝胶在负重部位原位修复骨软骨缺损的效果。

在兔膝关节滑车沟制造骨软骨缺损,分别注入GelMA、NSG前体并光固化,设空白对照;术后6周和12周进行大体观察、ICRS评分、micro-CT和组织学染色。

6

大鼠骨软骨缺损转录组分析

探索NSG水凝胶促进早期骨软骨修复的潜在分子机制。

建立大鼠膝关节骨软骨缺损模型,分别用GelMA和NSG水凝胶处理,术后4周取组织进行RNA-seq、GO/KEGG富集分析和RT-qPCR验证。

7

增材制造适用性验证

验证NSG水凝胶能否用于DLP打印复杂结构并保持力学性能。

用DLP打印多通道圆柱、空心球和网格矩形结构,比较GelMA和NSG2打印结构的压缩性能和循环稳定性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Liberty Blue微波肽合成仪CEM Corporation--
C18柱ShimadzuLC-16
ISQ-EM质谱仪Thermo Scientific--
Bruker Dimension Icon原子力显微镜Bruker--
Malvern Zetasizer Nano ZS动态光散射仪Malvern--
Xenocs 3.0 C系统Xenocs--
MCR302流变仪Anton Paar--
TA-Q800动态机械分析仪TA Instruments--
Nicolet 6700傅里叶变换红外光谱仪Thermo Scientific--
HITACHI S800扫描电子显微镜HITACHI--
Zeiss LSM880共聚焦显微镜Zeiss--
Olympus SpinSR10转盘共聚焦超分辨显微镜Olympus--
NanoZoomer S360病理切片扫描仪Hamamatsu--
μCT50微型CTScanco Medical AG--
EFL-BP8601 Pro数字光投影打印机EFL--
酒石黄Macklin--
CCK-8检测试剂盒----
Calcein/PI细胞活性和细胞毒性检测试剂盒BeyotimeC2015S
兔抗iNOS抗体HUABIOER1706-89
兔抗CD206抗体HUABIOHA722892
兔抗CD68抗体HUABIOHA722285
Alexa Fluor 647标记抗兔二抗InvitrogenA-31573
磁珠法总RNA提取试剂盒Yeasen18605ES60
PrimeScript™ FAST RT试剂盒(含gDNA Eraser)TakaraRR092S
TB Green® Premix Ex Taq™ II FAST qPCR试剂TakaraCN830A
U-mRNAseq文库构建试剂盒KAITAI-BIOAT4221
Ribo-off rRNA去除试剂盒(细菌)VazymeN407
大鼠BMSC成软骨诱导培养基OriCell®RAXMX-90041
RNALater™动物组织RNA稳定保存液BeyotimeR0118
FITC标记细胞松弛素DSolarbioCA1620

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
NSG水凝胶制备
PRN含量(NSG2为2%)、GelMA浓度20 w/v%、LAP浓度0.5 w/v%、pH 8、超声40°C 5小时、光固化365 nm 10 W cm⁻² 30秒
阅读提示:Methods中“Hydrogel preparation”和“Compression sample preparation”小节
兔骨软骨缺损修复
兔品种(新西兰白兔)、性别(雄性)、体重2.5–3.0 kg、缺损尺寸直径3.5 mm深4 mm、分组(空白、GelMA、NSG)、光固化10秒、评估时间点6周和12周
阅读提示:Methods中“In vivo evaluation of osteochondral regeneration in rabbits”小节及Fig. 6a
大鼠骨软骨缺损转录组分析
大鼠品系(SD)、周龄8周、性别雄性、缺损直径2 mm深2 mm、分组(GelMA、NSG)、术后4周取材、RNA-seq平台Illumina NovaSeq、差异基因标准FDR<0.05且|log2FC|>1
阅读提示:Methods中“In vivo evaluation of knee joint repair in rats”和“RNA-sequencing”小节
DLP打印
光引发剂LAP 0.5%、酒石黄0.5%、打印机型号EFL-BP8601 Pro、光强13 mW cm⁻²、曝光时间8秒、打印后50–60°C温水清洗
阅读提示:Methods中“DLP fabrication”小节及Fig. 7d