PRNs的制备与表征
获得短且刚性好的肽基纳米棒并表征其形貌、尺寸和生物相容性。
通过固相肽合成制备Pa和Pb,以约4:3摩尔比反应组装短PRNs;用AFM、DLS、SAXS表征尺寸;用BMSCs细胞形态和CCK-8评估生物相容性。
Peptide-based rigid nanorod-reinforced gelatin methacryloyl hydrogels for osteochondral regeneration and additive manufacturing.
包含材料合成与表征、体外细胞实验、大鼠皮下植入、兔骨软骨缺损模型、大鼠转录组测序及DLP打印验证。
GelMA水凝胶及NSG水凝胶 大鼠BMSCs 兔膝关节骨软骨缺损模型 大鼠膝关节骨软骨缺损模型
NSG2中PRN质量百分比为2%,GelMA为20 w/v%,光引发剂LAP为0.5 w/v% 压缩测试:圆柱样品高4 mm、直径4 mm,紫外光365 nm、10 W cm⁻²固化30秒 兔骨软骨缺损:直径3.5 mm、深4 mm,术后6周和12周评估 大鼠骨软骨缺损:直径2 mm、深2 mm,术后4周采集组织进行转录组分析 DLP打印:光强13 mW cm⁻²,曝光时间8秒,含0.5% LAP和0.5%酒石黄
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得短且刚性好的肽基纳米棒并表征其形貌、尺寸和生物相容性。
通过固相肽合成制备Pa和Pb,以约4:3摩尔比反应组装短PRNs;用AFM、DLS、SAXS表征尺寸;用BMSCs细胞形态和CCK-8评估生物相容性。
将PRNs共价接枝到GelMA并光固化形成水凝胶网络,验证成功交联。
将Pa或PRN溶液与GelMA溶液混合,pH 8、40°C超声5小时制备前体;光固化形成水凝胶;用Ellman's assay、FT-IR、粘度测定和元素分析验证交联。
比较NSG与BSG、GelMA的压缩和拉伸力学性能,并揭示PRN增韧的分子机制。
进行单轴压缩、循环压缩-卸载和拉伸测试;用粗粒化分子动力学模拟PRN和肽束在拉伸下的行为。
评估NSG水凝胶的溶胀、体外和体内降解、局部免疫反应和细胞相容性。
进行溶胀测试、体外降解、大鼠皮下植入评估降解和免疫荧光(CD68、iNOS、CD206);用BMSCs进行2D、3D和浸提液培养评估细胞活性。
评估NSG水凝胶在负重部位原位修复骨软骨缺损的效果。
在兔膝关节滑车沟制造骨软骨缺损,分别注入GelMA、NSG前体并光固化,设空白对照;术后6周和12周进行大体观察、ICRS评分、micro-CT和组织学染色。
探索NSG水凝胶促进早期骨软骨修复的潜在分子机制。
建立大鼠膝关节骨软骨缺损模型,分别用GelMA和NSG水凝胶处理,术后4周取组织进行RNA-seq、GO/KEGG富集分析和RT-qPCR验证。
验证NSG水凝胶能否用于DLP打印复杂结构并保持力学性能。
用DLP打印多通道圆柱、空心球和网格矩形结构,比较GelMA和NSG2打印结构的压缩性能和循环稳定性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 肽合成 | Liberty Blue微波肽合成仪 | CEM Corporation | -- |
| 肽纯化 | C18柱 | Shimadzu | LC-16 |
| 质谱分析 | ISQ-EM质谱仪 | Thermo Scientific | -- |
| PRN形貌表征 | Bruker Dimension Icon原子力显微镜 | Bruker | -- |
| DLS分析 | Malvern Zetasizer Nano ZS动态光散射仪 | Malvern | -- |
| SAXS分析 | Xenocs 3.0 C系统 | Xenocs | -- |
| 流变学测量 | MCR302流变仪 | Anton Paar | -- |
| 力学测试 | TA-Q800动态机械分析仪 | TA Instruments | -- |
| FT-IR光谱 | Nicolet 6700傅里叶变换红外光谱仪 | Thermo Scientific | -- |
| SEM成像 | HITACHI S800扫描电子显微镜 | HITACHI | -- |
| 细胞成像 | Zeiss LSM880共聚焦显微镜 | Zeiss | -- |
| 免疫荧光成像 | Olympus SpinSR10转盘共聚焦超分辨显微镜 | Olympus | -- |
| 病理切片扫描 | NanoZoomer S360病理切片扫描仪 | Hamamatsu | -- |
| Micro-CT扫描 | μCT50微型CT | Scanco Medical AG | -- |
| DLP打印 | EFL-BP8601 Pro数字光投影打印机 | EFL | -- |
| 酒石黄 | Macklin | -- | |
| 细胞活性检测 | CCK-8检测试剂盒 | -- | -- |
| 活/死细胞染色 | Calcein/PI细胞活性和细胞毒性检测试剂盒 | Beyotime | C2015S |
| 免疫荧光 | 兔抗iNOS抗体 | HUABIO | ER1706-89 |
| 兔抗CD206抗体 | HUABIO | HA722892 | |
| 兔抗CD68抗体 | HUABIO | HA722285 | |
| Alexa Fluor 647标记抗兔二抗 | Invitrogen | A-31573 | |
| RNA提取 | 磁珠法总RNA提取试剂盒 | Yeasen | 18605ES60 |
| 逆转录 | PrimeScript™ FAST RT试剂盒(含gDNA Eraser) | Takara | RR092S |
| RT-qPCR | TB Green® Premix Ex Taq™ II FAST qPCR试剂 | Takara | CN830A |
| RNA测序 | U-mRNAseq文库构建试剂盒 | KAITAI-BIO | AT4221 |
| Ribo-off rRNA去除试剂盒(细菌) | Vazyme | N407 | |
| 软骨诱导分化 | 大鼠BMSC成软骨诱导培养基 | OriCell® | RAXMX-90041 |
| RNA保存 | RNALater™动物组织RNA稳定保存液 | Beyotime | R0118 |
| 细胞骨架染色 | FITC标记细胞松弛素D | Solarbio | CA1620 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| NSG水凝胶制备 | PRN含量(NSG2为2%)、GelMA浓度20 w/v%、LAP浓度0.5 w/v%、pH 8、超声40°C 5小时、光固化365 nm 10 W cm⁻² 30秒 阅读提示:Methods中“Hydrogel preparation”和“Compression sample preparation”小节 |
| 兔骨软骨缺损修复 | 兔品种(新西兰白兔)、性别(雄性)、体重2.5–3.0 kg、缺损尺寸直径3.5 mm深4 mm、分组(空白、GelMA、NSG)、光固化10秒、评估时间点6周和12周 阅读提示:Methods中“In vivo evaluation of osteochondral regeneration in rabbits”小节及Fig. 6a |
| 大鼠骨软骨缺损转录组分析 | 大鼠品系(SD)、周龄8周、性别雄性、缺损直径2 mm深2 mm、分组(GelMA、NSG)、术后4周取材、RNA-seq平台Illumina NovaSeq、差异基因标准FDR<0.05且|log2FC|>1 阅读提示:Methods中“In vivo evaluation of knee joint repair in rats”和“RNA-sequencing”小节 |
| DLP打印 | 光引发剂LAP 0.5%、酒石黄0.5%、打印机型号EFL-BP8601 Pro、光强13 mW cm⁻²、曝光时间8秒、打印后50–60°C温水清洗 阅读提示:Methods中“DLP fabrication”小节及Fig. 7d |