结构分析与突变位点选择
基于Jun12682与PLpro的共晶结构,识别药物结合位点中可能影响耐药性的关键残基。
分析Jun12682和PF-07957472与PLpro的X射线晶体结构(PDB: 8UOB和9CSY),确定直接相互作用的残基(M208、P247、P248、Y264、Y268、Q269、D164、E167),并从GISAID数据库获取这些残基的高频天然突变。
Identification of naturally occurring drug-resistant mutations of SARS-CoV-2 papain-like protease.
包含体外酶学、DSF结合、病毒传代、重组病毒表型及MD模拟等多层级证据,并有功能验证。
SARS-CoV-2 PLpro野生型及突变体蛋白 SARS-CoV-2 USA-WA1/2020株 重组SARS-CoV-2-nLuc PLpro突变病毒 Vero-AT细胞
PLpro突变体酶活性kcat/Km相对于WT的变化倍数(阈值:<10倍变化) PLpro突变体对Jun12682和PF-07957472的抑制常数Ki相对于WT的变化倍数(阈值:>10倍增加) 连续传代实验中Jun12682浓度从1 µM起始,每两代加倍至32 µM,共传12代 病毒竞争实验:WA1与Lineage 3 P11按1:1 PFU比例混合,在0或32 µM Jun12682存在下传4代 重组PLpro突变病毒的EC50通过空斑减少实验测定
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
基于Jun12682与PLpro的共晶结构,识别药物结合位点中可能影响耐药性的关键残基。
分析Jun12682和PF-07957472与PLpro的X射线晶体结构(PDB: 8UOB和9CSY),确定直接相互作用的残基(M208、P247、P248、Y264、Y268、Q269、D164、E167),并从GISAID数据库获取这些残基的高频天然突变。
获得突变体蛋白并评估其结构稳定性是否受影响。
通过定点突变构建34个PLpro突变体,在BL21细胞中表达并纯化,使用DSF assay检测热稳定性。
测定突变体的酶催化效率和对抑制剂的敏感性,筛选生理相关耐药突变。
使用FRET底物(Dabcyl-FTLRGG/APTKV(Edans))测定kcat/Km,通过滴定化合物浓度测定Ki,并用DSF结合实验验证。
在药物选择压力下验证结构预测的耐药突变是否在病毒复制中实际出现。
将SARS-CoV-2 USA-WA1/2020株在递增浓度Jun12682存在下连续传代12次,每两代测序PLpro编码区。
评估传代筛选到的突变病毒相对于野生型病毒的适应性。
将Lineage 3 P11病毒与野生型WA1按1:1比例混合,在有无32 µM Jun12682条件下传代4次,监测突变频率变化。
在传染性克隆中引入PLpro突变,验证其对病毒复制和药物敏感性的影响。
构建携带E167G、Y268H、Q269H单突变及L152F/Q269H、E167G/Q269H双突变的重组SARS-CoV-2-nLuc病毒,进行空斑实验、生长动力学和EC50测定。
从分子水平解释突变导致耐药的机制。
对PLpro WT及E167G、Y268H、Q269L、Q269H、E167G/Q269H突变体与Jun12682的复合物进行500 ns MD模拟,分析相互作用变化,并用TI/MD方法计算相对结合自由能。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 定点突变 | QuikChange II定点突变试剂盒 | Agilent | -- |
| 蛋白表达 | 异丙基-β-D-硫代半乳糖苷 | -- | -- |
| 蛋白纯化 | 镍螯合树脂 | Biosciences | -- |
| SUMO蛋白酶I | -- | -- | |
| FRET酶学实验 | Dabcyl-FTLRGG/APTKV(Edans) FRET底物 | -- | -- |
| BioTek Cytation 5成像读取仪 | Agilent | -- | |
| Ub-AMC和ISG15-AMC酶学实验 | 重组人泛素-AMC | R&D Systems | U-550 |
| 重组人ISG15-AMC | R&D Systems | UL-553 | |
| DSF实验 | SUPRO橙色染料 | Thermo Scientific | -- |
| QuantStudio 5实时PCR系统 | ThermoFisher | -- | |
| 细胞培养 | 嘌呤霉素 | InVivogen | ant-pr-1 |
| 杀稻瘟菌素 | InVivogen | ant-bl-05 | |
| 病毒滴定 | 琼脂糖 | Fisher | M26944 |
| 重组病毒构建 | Q5定点突变试剂盒 | NEB | E0554S |
| T4 DNA连接酶 | NEB | M0202L | |
| mMESSAGE mMACHINE T7转录试剂盒 | ThermoFisher | AM1344 | |
| 病毒生长动力学实验 | Nano-Glo荧光素酶实验 | Promega | G9243 |
| GloMax Discover微孔板读取仪 | Promega | GM3000 | |
| 抗病毒空斑实验 | Avicel微晶纤维素 | FMC polymers | -- |
| P-糖蛋白抑制剂CP-100356 | -- | -- | |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Thermo Fisher | 15-596-026 |
| 逆转录 | LunaScript逆转录预混液 | New England Biolabs | E3010L |
| PCR扩增 | Q5热启动高保真2×预混液 | New England Biolabs | M0494L |
| PCR产物纯化 | Wizard SV凝胶和PCR清洁试剂盒 | Promega | A9282 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 连续病毒传代实验 | 起始Jun12682浓度1 µM(2×EC50),每两代加倍,最终32 µM;传代12次;三重复独立传代;Vero-AT细胞;感染量0.01 PFU/细胞 阅读提示:Methods 'In vitro selection for SARS-CoV-2 resistance to Jun12682'及Fig. 6a |
| 病毒竞争实验 | WA1与Lineage 3 P11按1:1 PFU混合;0.01 MOI感染;32 µM Jun12682;传代4次;Vero-AT细胞 阅读提示:Methods 'Virus competition experiment'及Fig. 6c |
| FRET酶学实验 | FRET底物Dabcyl-FTLRGG/APTKV(Edans)浓度20 µM用于Ki测定;PLpro浓度经优化以保证至少1小时线性初速度;Morrison方程拟合 阅读提示:Methods 'FRET-based enzymatic assay' |
| DSF结合实验 | 蛋白浓度4 µM;化合物孵育30分钟 at 30°C;升温速率0.05°C/s from 25°C to 95°C;SUPRO orange染料1× 阅读提示:Methods 'Differential scanning fluorimetry (DSF) assay' |
| 重组PLpro突变病毒抗病毒实验 | Vero-AT细胞;感染量50 PFU/孔;化合物3倍系列稀释,起始浓度10 µM(rSARS-CoV-2-nLuc)或30 µM(PLpro突变体);孵育48小时;ImageJ定量感染面积 阅读提示:Methods 'Antiviral assays with infectious SARS-CoV-2'及Fig. 6g-i |
| MD模拟与TI/MD计算 | MD模拟500 ns,ff19sb力场;TI/MD 11个λ值,ff14sb力场;起始结构PDB 8UOB;每个复合物两次重复 阅读提示:Methods 'MD simulations'和'TI/MD calculations protocol' |