雄性小鼠中由FOXO1-KLF10正反馈环路促进脂肪分解产生的运动抗肥胖效应

Exercise-induced anti-obesity effects in male mice generated by a FOXO1-KLF10 reinforcing loop promoting adipose lipolysis.

作者信息Jie-Ying Zhu, Min Chen, Wang-Jing Mu, Hong-Yang Luo, Yang Li, Shan Li, Lin-Jing Yan, Ruo-Ying Li, Meng-Ting Yin, Xin Li, Hu-Min Chen, Liang Guo
PMID40169574
发布时间2025-04-01
DOI10.1038/s41467-025-58467-1

实验完整度

高

包含脂肪细胞特异性敲除和转基因小鼠、高脂饮食模型、原代脂肪细胞、AAV回补、ChIP、Co-IP、荧光素酶报告基因等多层次功能与机制验证

主要模型

雄性C57BL/6J小鼠高脂饮食诱导肥胖模型 脂肪细胞特异性KLF10敲除(KLF10AKO)雄性小鼠 脂肪细胞特异性KLF10转基因(KLF10ATG)雄性小鼠 原代脂肪细胞(SVF来源)及3T3-L1、C3H10T1/2脂肪细胞

重点核对

KLF10AKO小鼠与WT对照在HFD喂养12周、最后10周进行跑步机训练或久坐的分组 KLF10ATG小鼠与WT对照在HFD喂养12周、最后10周进行跑步机训练或久坐的分组 AAV-ATGL/AAV-HSL在iWAT和eWAT局部过表达以回补KLF10AKO表型 CL316,243刺激(体外2 μM,体内1 mg/kg体重)后血清FFA和甘油释放检测 ChIP和Re-ChIP检测FOXO1、KLF10、KDM4A在Pnpla2和Lipe启动子的结合及H3K9me3修饰

摘要

运动可对抗肥胖和代谢紊乱,但其潜在机制尚不完全清楚。KLF10是一种参与多种生物学过程的转录因子,其在脂肪组织和肥胖中的作用尚未明确。在此,我们展示运动通过SIRT1/FOXO1通路促进脂肪细胞来源的KLF10表达。脂肪细胞特异性敲除KLF10可减弱运动对饮食诱导肥胖雄性小鼠的白色脂肪棕色化、能量消耗、脂肪减少和葡萄糖耐量的促进作用。相反,雄性小鼠脂肪细胞特异性转基因表达KLF10可增强运动诱导的上述代谢益处。机制上,KLF10与FOXO1相互作用并促进KDM4A的招募,在Pnpla2和Lipe基因启动子区域形成三元复合物,通过去甲基化其启动子上的H3K9me3来促进这些关键脂解基因的表达,从而促进脂解以防御雄性小鼠肥胖。作为响应运动的下游效应因子,脂肪KLF10可作为对抗肥胖的潜在靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
运动如何通过脂肪组织中的KLF10调控脂解,从而改善肥胖和代谢紊乱?
核心机制
运动通过SIRT1/FOXO1通路诱导成熟脂肪细胞中KLF10表达;KLF10与FOXO1相互作用并招募KDM4A形成三元复合物,在Pnpla2和Lipe启动子上去甲基化H3K9me3,促进ATGL和HSL转录,增强脂解;脂解产物FFA作为PPARα配体激活PPARα,上调FAO和棕色化基因。
主要证据
在HFD喂养的雄性小鼠中,脂肪细胞特异性KLF10敲除减弱运动诱导的白色脂肪棕色化、能量消耗、脂肪减少和葡萄糖耐量改善;KLF10转基因表达与运动协同改善上述代谢指标;AAV介导ATGL和HSL回补可逆转KLF10AKO表型;ChIP、Re-ChIP、Co-IP和荧光素酶实验证实KLF10-FOXO1-KDM4A复合物及启动子结合。
研究意义
脂肪KLF10可作为响应运动的下游效应因子,为肥胖及代谢紊乱的预防和治疗提供潜在靶点;脂肪细胞特异性过表达KLF10与运动协同改善代谢,可能为肥胖患者更好地从运动训练中获益提供策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

运动诱导脂肪KLF10表达的体内验证

验证运动是否特异性上调脂肪组织尤其是成熟脂肪细胞中KLF10表达

对CD喂养的8周龄雄性C57BL/6J小鼠进行8周跑步机训练,分离iWAT、eWAT和BAT的SVF与成熟脂肪细胞,检测Klf10 mRNA和蛋白表达

2

SIRT1/FOXO1调控KLF10转录的机制验证

验证FOXO1是否直接结合Klf10启动子并受SIRT1去乙酰化调控

荧光素酶报告基因、ChIP、FOXO1乙酰化检测、SIRT1活性检测,以及在3T3-L1脂肪细胞中使用Ex527和Srt1720处理及FOXO1敲低

3

KLF10AKO对运动诱导棕色化和脂解的影响

验证脂肪细胞KLF10敲除是否减弱运动诱导的脂肪棕色化和脂解

KLF10AKO与WT雄性小鼠进行8周跑步机训练或久坐,检测脂肪细胞大小、UCP1表达、棕色化基因和FAO基因表达、冷暴露下血清FFA和甘油、ATGL和HSL表达

4

KLF10AKO对HFD诱导肥胖和代谢紊乱的影响

验证脂肪细胞KLF10敲除是否减弱运动抗DIO和改善代谢的作用

WT和KLF10AKO雄性小鼠HFD喂养12周,最后10周跑步机训练或久坐,检测体重、体成分、脂肪重量、冷耐受、GTT、ITT、HOMA-IR、能量代谢和iWAT OCR

5

KLF10调控脂解的细胞和分子机制

验证KLF10是否通过促进ATGL和HSL表达增强脂解,并依赖PPARα上调棕色化和FAO基因

RNA-seq分析KLF10AKO iWAT差异基因;原代脂肪细胞AD-Cre敲除或AD-KLF10过表达,检测FFA和甘油释放、ATGL/HSL表达;ISO刺激;PPARα拮抗剂GW6471处理;ATGL和HSL敲低

6

ATGL/HSL回补对KLF10AKO表型的挽救

验证脂解受损是否为KLF10AKO加重DIO和代谢紊乱的关键原因

向WT和KLF10AKO雄性小鼠iWAT和eWAT注射AAV-ATGL、AAV-HSL或AAV-GFP,1周后HFD喂养12周,检测冷耐受、体重、脂肪重量、脂解能力、葡萄糖耐量和胰岛素敏感性

7

KLF10-FOXO1-KDM4A复合物的转录调控机制

验证KLF10是否作为FOXO1共因子招募KDM4A,去甲基化H3K9me3以激活Pnpla2和Lipe转录

荧光素酶报告基因、ChIP、Re-ChIP、Co-IP、组蛋白甲基化修饰检测、KDM4A敲低、FOXO1敲低

8

KLF10ATG对运动改善DIO和代谢的协同作用

验证脂肪细胞特异性过表达KLF10是否与运动协同改善HFD诱导的肥胖和代谢紊乱

KLF10ATG与WT雄性小鼠HFD喂养12周,最后10周跑步机训练或久坐,检测体重、体成分、冷耐受、GTT、HOMA-IR、能量代谢、脂解能力和产热基因表达

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
高脂饮食(60 kcal%脂肪,PD6001)SYSE BIOPD6001
普通饮食(1010086)Xietong Shengwu1010086
跑步机(ZH-PT/5S)ZhengHuabiologicalZH-PT/5S
CL316,243MCE--
甘油含量测定试剂盒(E1002)ApplygenE1002
游离脂肪酸检测试剂盒(Ek-M21104)EK-bioscienceEk-M21104
甘油三酯测定试剂盒(#E1003)ApplygenE1003
SIRT1活性测定试剂盒(ab156065)Abcamab156065
SIRT6测定试剂盒(50022)BPSbioscience50022
DMEM/F12培养基Gibco--
胎牛血清(FBS)Gibco--
小牛血清Gibco--
I型胶原酶(9001-12-1)Solarbio9001-12-1
RNAiMAX转染试剂(#13778-100)Invitrogen13778-100
Lipo6000转染试剂(#C0526)BeyotimeC0526
双荧光素酶报告基因试剂盒(#RG027)BeyotimeRG027
ChIP级Protein A/G磁珠(26162)Thermo Fisher26162
抗KLF10抗体(sc-130408)Santa Cruzsc-130408
抗FOXO1抗体(2880s)CST2880s
抗H3K9me3抗体(A22295)AbclonalA22295
抗KDM4A抗体(A22060)AbclonalA22060
抗ATGL抗体(2138s)CST2138s
抗HSL抗体(17333-1-AP)Proteintech17333-1-AP
抗β-tubulin抗体(M20005F)AbmartM20005F
抗KLF10抗体(A2433)AbclonalA2433
抗FOXO1抗体(sc-374427)Santa Cruzsc-374427
抗UCP1抗体(A5857)AbclonalA5857
血糖仪Roche--
间接测热系统(TSE-system, XYZ, 6M/R)Germany Instruments6M/R
Oxygraph-2k高分辨率呼吸测定仪Oroboros--
Trizol试剂Takara--
Power SYBR green PCR预混液Beyotime--
Quant Studio 6 Flex实时PCR仪Thermo Fisher--
AAV-ATGL、AAV-HSL、AAV-GFPGenechem--
Vira Power腺病毒表达系统Invitrogen--
SDS-PAGE凝胶(abs9367)Absinabs9367
Tanon-5200S成像系统BIO-RAD--
RIPA裂解液(P0013B)BeyotimeP0013B

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
运动训练方案
8周龄雄性小鼠,跑步机训练8或10周、每周6天、60%最大跑速、ZT10-ZT11训练;训练速度每2周根据最大跑速调整
阅读提示:Methods中Treadmill training and time to exhaustion小节及Fig. 3a图注
高脂饮食诱导肥胖模型
HFD 60 kcal%脂肪(PD6001, SYSE BIO)喂养12周;KLF10AKO和KLF10ATG实验均在HFD最后10周进行运动干预
阅读提示:Methods中Animals小节及Supplementary Fig. 4a、Supplementary Fig. 8b
脂肪细胞特异性KLF10敲除和转基因小鼠构建
KLF10flox/flox与Adiponectin-Cre杂交获得KLF10AKO;CMV-Stop-KLF10与Adiponectin-Cre杂交获得KLF10ATG;对照为同窝KLF10flox/flox/Adiponectin-Cre-或WT
阅读提示:Methods中Animals小节及Supplementary Fig. 3a-c、Supplementary Fig. 8a
AAV介导ATGL/HSL回补
iWAT和eWAT每侧脂肪垫注射50 μl,总病毒滴度1×10^11 vg(AAV-GFP 1×10^11 vg;AAV-ATGL 0.5×10^11 vg;AAV-HSL 0.5×10^11 vg);注射1周后HFD喂养12周
阅读提示:Methods中Application of adeno-associated viral (AAV) vectors小节及Fig. 6图注
脂解能力检测
体外:iWAT/eWAT组织60-80 mg在含2% BSA的DMEM中±CL316,243(2 μM)37°C 2 h;细胞:±ISO(2 μM)37°C 2 h;体内:CL316,243 i.p. 1 mg/kg体重,注射后0、20、60 min采血
阅读提示:Methods中Lipolysis assay小节及Fig. 5、Fig. 6、Fig. 8图注
葡萄糖耐量和胰岛素耐量实验
GTT:禁食6 h后i.p.注射D-葡萄糖1.5 mg/g体重;ITT:禁食6 h后i.p.注射人胰岛素0.8 mIU/g体重;均在ZT10进行
阅读提示:Methods中Analyses of biochemistry-related parameters小节
冷耐受实验
禁食10 h后置于4°C环境,禁食状态维持5 h,直肠温度测量
阅读提示:Methods中Analyses of biochemistry-related parameters小节及Fig. 4g、Fig. 6a、Fig. 8i图注
ChIP和Re-ChIP检测
交联条件:1%甲醛室温10 min,甘氨酸125 mM终止;抗体包括anti-KLF10(sc-130408)、anti-FOXO1(2880s)、anti-H3K9me3(A22295)、anti-KDM4A(A22060)等;n=6独立生物学重复
阅读提示:Methods中Chromatin immunoprecipitation (ChIP) and Re-ChIP小节及Supplementary information中引物列表
RNA-seq分析
HFD喂养的WT和KLF10AKO小鼠iWAT;Illumina NovaSeq 6000平台,双端150 bp,目标深度20 million read pairs/样本;差异基因阈值padj≤0.05且|log2(foldchange)|≥1;n=4只小鼠/组
阅读提示:Methods中RNA-seq analysis小节及Fig. 5a-c图注
原代脂肪细胞分离和分化
3-4周龄KLF10flox/flox雄性小鼠iWAT SVF;分化诱导液含10% FBS、1 μM地塞米松、2 μg/mL胰岛素、0.5 mM IBMX、1 μM罗格列酮处理48 h,随后10% FBS、2 μg/mL胰岛素、1 μM罗格列酮处理48 h,再10% FBS培养2天
阅读提示:Methods中Cell culture and differentiation小节