CRISPR筛选与凝集素微阵列鉴定高甘露糖N-聚糖调控因子

CRISPR screens and lectin microarrays identify high mannose N-glycan regulators.

作者信息C Kimberly Tsui, Nicholas Twells, Jenni Durieux, Emma Doan, Jacqueline Woo, Noosha Khosrojerdi, Janiya Brooks, Ayodeji Kulepa, Brant Webster, Lara K Mahal, Andrew Dillin
PMID39557836
发布时间2024-11-18
DOI10.1038/s41467-024-53225-1

实验完整度

高

采用全基因组及靶向CRISPR筛选、凝集素微阵列、UPLC与MALDI-TOF糖组学、免疫荧光及CLEM等多层级验证

主要模型

A549肺腺癌细胞系(dox诱导XBP1s表达) K562细胞系 Jurkat细胞系 293T细胞系

重点核对

dox诱导XBP1s表达及HHL/GRFT/MBL2结合变化 全基因组CRISPR敲除筛选(dox处理48小时,HHL-FITC染色,分选前后各25%) 靶向CRISPRi文库筛选(292个基因,每个5条sgRNA) TM9SF3与CCDC22敲低后的高尔基体标志物GM130/TGN46共定位及形态 凝集素微阵列与N-糖组学检测全局糖基化变化

摘要

聚糖在细胞信号传导和功能中发挥关键作用。与蛋白质不同,聚糖结构并非由基因序列模板编码,而是由众多基因协同合成,这一特点使其研究历来充满挑战。本文提出一种利用CRISPR筛选和凝集素微阵列揭示并表征糖基化调控因子的策略。我们将该策略应用于研究高甘露糖聚糖——所有天冬酰胺(N)连接聚糖的起始结构——的调控。利用CRISPR筛选,我们揭示了控制高甘露糖水平的扩展基因网络,随后通过凝集素微阵列全面测量了所选调控因子对全局糖基化的复杂影响。据此,我们阐明了两个高甘露糖调控因子——TM9SF3和CCC复合物——如何通过调控高尔基体形态与功能来控制复杂N-糖基化。值得注意的是,这使我们能够深入探究高尔基体功能,并揭示高尔基体形态的类似破坏可导致截然不同的糖基化结局。总之,本工作展示了一种可推广的策略,用于系统解析糖基化背后的调控网络。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
健康细胞如何维持细胞表面低水平高甘露糖聚糖,哪些基因调控高甘露糖及N-糖基化,以及这些调控因子如何影响高尔基体功能与糖基化。
核心机制
TM9SF3调控高尔基体组织,其缺失导致cis-/medial高尔基体分散并与TGN共定位减少,抑制复杂N-聚糖形成;CCC复合物是高尔基体功能与复杂糖基化的负调控因子,其破坏导致高尔基体碎片化但增加cis-高尔基体与TGN共定位,促进复杂N-聚糖生成。
主要证据
全基因组与靶向CRISPR筛选发现高甘露糖调控因子;凝集素微阵列与N-糖组学显示TM9SF3敲低使糖基化向高/寡甘露糖偏移、CCDC22敲低则增加复杂及唾液酸化糖表位;免疫荧光、流式细胞术及CLEM证实两者对高尔基体形态和共定位的相反影响。
研究意义
揭示了细胞表面高甘露糖N-糖基化的调控因子,并证明CRISPR筛选结合凝集素微阵列是揭示糖基化新调控因子的可推广策略,可用于研究不同细胞类型中糖基化调控及疾病中糖基化改变的起源。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立XBP1s诱导的高甘露糖细胞模型

构建可控激活UPRER并上调高甘露糖的细胞体系

将dox诱导型XBP1s慢病毒导入A549细胞,检测XBP1s靶基因表达及HHL、GRFT、MBL2结合变化,并用UPLC和凝集素微阵列分析高甘露糖结构

2

全基因组CRISPR敲除筛选高甘露糖调控因子

发现调控细胞表面高甘露糖水平的基因网络

在稳定表达Cas9和dox诱导XBP1s的A549细胞中转导全基因组sgRNA文库,dox诱导后HHL-FITC染色,FACS分选HHL信号前后各25%细胞,深度测序并用casTLE分析

3

靶向CRISPRi筛选及候选基因验证

在基础和XBP1s诱导条件下验证并扩展高甘露糖调控因子

构建靶向292个基因的CRISPRi亚文库,利用HHL偶联磁珠的MACS分离高/低结合细胞,深度测序分析,并用竞争性HHL结合实验验证候选基因

4

TM9SF3调控糖基化的机制解析

确定TM9SF3对高尔基体组织及N-糖基化加工的影响

建立TM9SF3敲低A549细胞,检测HHL结合、GM130与TGN46染色及共定位、CLEM观察高尔基体结构,并用凝集素微阵列和N-糖组学分析全局糖基化

5

CCC复合物调控糖基化的机制解析

确定CCC复合物对高尔基体功能及复杂N-糖基化的影响

建立CCDC22等CCC成员敲低细胞,检测高甘露糖结合、高尔基体形态与共定位、CLEM,并用凝集素微阵列和N-糖组学分析糖基化变化

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco11966025
胎牛血清Avantor97068-085
青霉素-链霉素Gibco15070063
RPMI培养基Gibco11875093
GlutaMAX添加剂Gibco35050061
多西环素SigmaD3072
TRIzol试剂Invitrogen15596026
RNeasy微量试剂盒Qiagen74004
QuantiTect逆转录试剂盒Qiagen205311
SYBR Green预混液Applied BiosystemA46109
QuantStudio 6 Flex实时PCR仪----
Accutase细胞解离液GibcoA11105-01
杜氏磷酸盐缓冲液HyCloneSH30264.02
甘露糖结合凝集素2蛋白Abcamab151947
FITC标记的HHL凝集素Glycomatrix21511092-1
Alexa Fluor 488标记抗His抗体BiotechneIC0501G
GNL凝集素Vector LaboratoriesFL-1241-2
Lch凝集素EY LaboratoriesF-1401-5
SNA凝集素Bioworld21500045-1
CSA凝集素EY LaboratoriesBA-3201-1
cOmplete蛋白酶抑制剂Roche11836170001
嘌呤霉素GibcoA1113803
蛋白酶KQiagen19133
Qiagen血液DNA中量提取试剂盒Qiagen51183
MojoSort链霉亲和素纳米磁珠BioLegend480016
MojoSort缓冲液BioLegend480017
小鼠抗GM130抗体BD BioscienceBDB610822
兔抗TGN46抗体ProteinTech13573-1-AP
山羊抗小鼠二抗InvitrogenA-11015
山羊抗兔二抗InvitrogenA-11011
Alexa Fluor 647鬼笔环肽ThermofisherA30107
含DAPI的VectaShield封片剂Vector LaboratoriesH-1800-2
Nikon Ti-E倒置显微镜Nikon Instruments--
Zyla 5.5相机Andor Technology--
网格盖玻片MattekP35G-1.5-14-C-GRD
FEI Tecnai 12 120 kV透射电镜FEI--
Gatan Rio 16 CMOS相机Gatan--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
XBP1s诱导与高甘露糖检测
dox浓度2 µg/mL、处理48小时;HHL-FITC 10 µg/mL;实验至少三次独立重复
阅读提示:Methods中RT-qPCR、流式分析及Fig. 1图注
全基因组CRISPR敲除筛选
文库感染MOI 0.3–0.4;嘌呤霉素1 µg/mL筛选3–4天;dox处理48小时;分选前后各25%且每群至少1000倍覆盖;实验重复两次
阅读提示:Methods中FACS-based CRISPR-deletion screen及Fig. 2a图注
MACS靶向CRISPRi筛选
292个基因、每基因5条sgRNA、540条对照;每条件5000万细胞;HHL-磁珠孵育1小时4°C;三轮磁分离;实验重复两次
阅读提示:Methods中MACS-based CRISPR-inhibition screens及Fig. 3a图注
TM9SF3与CCDC22敲低验证
每个基因两条独立sgRNA;GM130 1:250、TGN46 1:500染色;共定位定量来自至少12张图像、每图>20个细胞
阅读提示:Methods中免疫荧光及Fig. 4d、Fig. 5d图注
凝集素微阵列与N-糖组学
每样本20 µg蛋白进行微阵列;N-糖组学每样本一千万细胞;糖组学数据处理方式
阅读提示:Methods中Lectin microarrays与MALDI-TOF N-glycomics小节