多物种表型与养分分析
验证热形态建成在拟南芥、大豆和水稻中的保守性及其与氮磷水平变化的关系。
在正常和高温条件下种植拟南芥、大豆和水稻,测量根长和地上部长度;对4周龄地上部进行C/N分析和MP-AES分析测定氮、磷等养分含量。
Nutrient levels control root growth responses to high ambient temperature in plants.
在拟南芥、大豆、水稻三种植物中进行了表型与养分分析,并结合拟南芥突变体、过表达株系、ChIP-qPCR、EMSA、双荧光素酶、RNAseq及蛋白降解实验进行了功能与机制验证。
拟南芥Col-0及hy5-215、chl1-5、pifQ等突变体和转基因株系 大豆Williams 82品种幼苗 水稻Kitaake生态型幼苗 本氏烟叶片(用于双荧光素酶瞬转实验)
拟南芥在21°C萌发4天后,21°C或28°C处理5天,测量主根长度 大豆在28°C萌发7天后,28°C或33°C处理1周,测量总根长 水稻在28°C萌发7天后,28°C或33°C处理2周,测量总根长 养分分析使用4周龄地上部组织,n=3生物学独立样本 ChIP-qPCR使用pHY5:HY5-GFP幼苗,在21°C或28°C处理5天,n=3生物学独立样本
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证热形态建成在拟南芥、大豆和水稻中的保守性及其与氮磷水平变化的关系。
在正常和高温条件下种植拟南芥、大豆和水稻,测量根长和地上部长度;对4周龄地上部进行C/N分析和MP-AES分析测定氮、磷等养分含量。
验证HY5是否直接结合NRT1.1启动子并抑制其转录。
利用ChIP-qPCR检测HY5在NRT1.1启动子的富集;EMSA验证HY5与G-box基序结合;双荧光素酶实验检测HY5对NRT1.1启动子驱动的报告基因表达的影响。
探究外部氮磷水平和HY5磷酸化位点对根系热形态建成的必要性。
在1/2MS、缺氮、缺磷培养基上种植Col-0、hy5-215及HY5过表达/磷酸化突变转基因株系,测量主根长度;检测HY5转录和蛋白水平。
检测在不同养分和温度条件下NRT1.1转录和蛋白水平的变化,以及蛋白降解的贡献。
qPCR检测NRT1.1转录水平;Western blot检测NRT1.1蛋白水平;使用pNRT1.1:GFP和pNRT1.1:NRT1.1-GFP报告株系进行共聚焦显微镜观察;使用CHX和ES9-17处理抑制蛋白合成和网格蛋白介导的内吞。
通过遗传学手段验证HY5和NRT1.1在通路中的上下游关系,并分析全基因组表达变化。
构建hy5-215 chl1-5双突变体,分析下胚轴和根长表型及氮磷含量;对Col-0、hy5-215、chl1-5进行RNAseq,分析差异表达基因和GO富集。
探究HY5-NRT1.1调控模块在 soybean 和 rice 中是否保守。
通过qPCR检测大豆和水稻中HY5和NRT1.1同源基因在正常和高温下的转录水平;使用拟南芥native抗体进行Western blot检测同源蛋白。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 植物培养 | MS完全培养基 | Caisson lab | MSP33 |
| 缺氮培养基 | Caisson lab | MSP19 | |
| 缺磷培养基 | Caisson lab | MSP21 | |
| 微繁殖1型植物琼脂 | Caisson | -- | |
| 表型分析 | Perfection v600扫描仪 | Epson | -- |
| 养分分析 | 65%硝酸 | EMD Millipore | 1.00456.2500 |
| 30%过氧化氢 | Sigma-Aldrich | H3410-1L | |
| Environmental Express® Hotblock消解系统 | Environmental Express | SC196 | |
| 4210微波等离子体原子发射光谱仪 | Agilent | -- | |
| 共聚焦显微镜 | Zeiss LSM710共聚焦显微镜 | Zeiss | -- |
| 碘化丙啶 | Sigma-Aldrich | 4170 | |
| Western blot | NuPAGE样品还原剂 | Thermofisher | NP0009 |
| NuPAGE LDS样品缓冲液 | Thermofisher | NP0008 | |
| SDS-PAGE凝胶 | Invitrogen | NP0323BOX | |
| 转膜堆栈 | Invitrogen | IB23002 | |
| 抗HY5抗体 | Abiocode | R1245-2 | |
| 抗NRT1.1抗体 | Agrisera | AS12 2611 | |
| 抗微管蛋白抗体 | Invitrogen | 32-2500 | |
| 抗鼠二抗 | Biorad | 170-6516 | |
| 抗兔二抗 | Agrisera | AS09 602 | |
| SuperSignal West Femto化学发光底物 | ThermoFisher Scientific | PI34094 | |
| RT-qPCR | RNeasy植物迷你试剂盒 | Qiagen | 74904 |
| Maxima H Minus第一链cDNA合成试剂盒 | ThermoFisher | FERK1652 | |
| Luna®通用qPCR预混液 | NEB | M3003L | |
| CFX Opus 384实时PCR系统 | Biorad | -- | |
| RNA-seq | 2100 Bioanalyzer TapeStation | Agilent Technologies | -- |
| Qubit荧光计 | Invitrogen | -- | |
| Illumina NovaSeq 6000测序平台 | Illumina | -- | |
| ChIP | ChIP实验试剂盒 | Millipore | 17-295 |
| ChIP级抗GFP抗体 | Abcam | ab6556 | |
| EMSA | GST纯化试剂盒 | Thermofisher | -- |
| 双荧光素酶实验 | 双荧光素酶检测试剂盒 | Promega | N1610 |
| Tecan Safire 2酶标仪 | Tecan | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 植物材料与生长条件 | 拟南芥光强100 μmol,16L:8D;大豆和水稻光强200 μmol,16L:8D;温度处理时间和萌发时间 阅读提示:Methods: Plant materials, growth conditions, and phenotypic analyses |
| 养分分析 | C/N分析样品烘干温度和时间;MP-AES分析样品消化方法和标准曲线 阅读提示:Methods: Nutrient analyses |
| ChIP-qPCR | 甲醛交联时间;超声条件;抗体用量;富集计算方式 阅读提示:Methods: Chromatin immunoprecipitation (ChIP) assays |
| EMSA | GST-HY5蛋白诱导表达和纯化条件;探针序列和标记方法 阅读提示:Methods: EMSA and dual luciferase assay |
| 双荧光素酶实验 | 农杆菌注射浓度和侵染时间;荧光素酶检测方法 阅读提示:Methods: EMSA and dual luciferase assay |