养分水平调控植物根系对高温环境的生长响应

Nutrient levels control root growth responses to high ambient temperature in plants.

作者信息Sanghwa Lee, Julia Showalter, Ling Zhang, Gaëlle Cassin-Ross, Hatem Rouached, Wolfgang Busch
PMID38824148
发布时间2024-06-01
DOI10.1038/s41467-024-49180-6

实验完整度

高

在拟南芥、大豆、水稻三种植物中进行了表型与养分分析,并结合拟南芥突变体、过表达株系、ChIP-qPCR、EMSA、双荧光素酶、RNAseq及蛋白降解实验进行了功能与机制验证。

主要模型

拟南芥Col-0及hy5-215、chl1-5、pifQ等突变体和转基因株系 大豆Williams 82品种幼苗 水稻Kitaake生态型幼苗 本氏烟叶片(用于双荧光素酶瞬转实验)

重点核对

拟南芥在21°C萌发4天后,21°C或28°C处理5天,测量主根长度 大豆在28°C萌发7天后,28°C或33°C处理1周,测量总根长 水稻在28°C萌发7天后,28°C或33°C处理2周,测量总根长 养分分析使用4周龄地上部组织,n=3生物学独立样本 ChIP-qPCR使用pHY5:HY5-GFP幼苗,在21°C或28°C处理5天,n=3生物学独立样本

摘要

全球变暖将导致地球温度显著升高。植物通过改变发育和生长程序来响应高温环境,这一现象称为热形态建成。本研究表明,热形态建成在拟南芥、大豆和水稻中保守存在,并且与两种大量营养元素氮和磷水平的降低相关。我们还发现,较低的外部养分水平会消除根系对高温环境的生长响应。在拟南芥中,这种抑制是由转录因子ELONGATED HYPOCOTYL 5 (HY5)及其对转运受体NITRATE TRANSPORTER 1.1 (NRT1.1)的转录调控所介导的。这些基因在大豆和水稻中的同源基因的表达模式与它们在氮磷水平依赖的温度响应调控中保守作用相一致。总体而言,我们的数据表明,根系热形态建成是双子叶和单子叶两大被子植物类群物种中的保守特征,它会导致植物体内养分水平降低,并且依赖于环境氮磷供应,这是一个由HY5-NRT1.1模块介导的调控过程。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
高温环境下植物根系生长响应是否受养分水平调控,以及其分子机制是什么?
核心机制
高温下HY5蛋白积累并直接结合NRT1.1启动子G-box基序抑制其转录,进而调控根系热形态建成和磷水平变化;该过程依赖外部氮磷供应和HY5磷酸化。
主要证据
在拟南芥、大豆和水稻中观察到高温下根系伸长且氮磷水平降低;低氮磷培养基消除拟南芥根系热形态建成;hy5-215突变体根无热响应,HY5过表达或磷酸化模拟形式可恢复;ChIP-qPCR、EMSA和双荧光素酶实验证实HY5直接结合并抑制NRT1.1转录;NRT1.1过表达和突变体实验支持其功能。
研究意义
揭示了根系热形态建成在单子叶和双子叶植物中的保守性及其与养分水平的互作,为理解气候变化下植物养分吸收和生长调控提供理论依据,并可能对作物育种和施肥策略具有启示。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

多物种表型与养分分析

验证热形态建成在拟南芥、大豆和水稻中的保守性及其与氮磷水平变化的关系。

在正常和高温条件下种植拟南芥、大豆和水稻,测量根长和地上部长度;对4周龄地上部进行C/N分析和MP-AES分析测定氮、磷等养分含量。

2

HY5对NRT1.1的直接转录调控验证

验证HY5是否直接结合NRT1.1启动子并抑制其转录。

利用ChIP-qPCR检测HY5在NRT1.1启动子的富集;EMSA验证HY5与G-box基序结合;双荧光素酶实验检测HY5对NRT1.1启动子驱动的报告基因表达的影响。

3

养分水平和HY5磷酸化对根系热形态建成的影响

探究外部氮磷水平和HY5磷酸化位点对根系热形态建成的必要性。

在1/2MS、缺氮、缺磷培养基上种植Col-0、hy5-215及HY5过表达/磷酸化突变转基因株系,测量主根长度;检测HY5转录和蛋白水平。

4

NRT1.1表达和蛋白稳定性分析

检测在不同养分和温度条件下NRT1.1转录和蛋白水平的变化,以及蛋白降解的贡献。

qPCR检测NRT1.1转录水平;Western blot检测NRT1.1蛋白水平;使用pNRT1.1:GFP和pNRT1.1:NRT1.1-GFP报告株系进行共聚焦显微镜观察;使用CHX和ES9-17处理抑制蛋白合成和网格蛋白介导的内吞。

5

遗传互作与全基因组表达分析

通过遗传学手段验证HY5和NRT1.1在通路中的上下游关系,并分析全基因组表达变化。

构建hy5-215 chl1-5双突变体,分析下胚轴和根长表型及氮磷含量;对Col-0、hy5-215、chl1-5进行RNAseq,分析差异表达基因和GO富集。

6

大豆和水稻中HY5-NRT1.1同源基因表达分析

探究HY5-NRT1.1调控模块在 soybean 和 rice 中是否保守。

通过qPCR检测大豆和水稻中HY5和NRT1.1同源基因在正常和高温下的转录水平;使用拟南芥native抗体进行Western blot检测同源蛋白。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
MS完全培养基Caisson labMSP33
缺氮培养基Caisson labMSP19
缺磷培养基Caisson labMSP21
微繁殖1型植物琼脂Caisson--
Perfection v600扫描仪Epson--
65%硝酸EMD Millipore1.00456.2500
30%过氧化氢Sigma-AldrichH3410-1L
Environmental Express® Hotblock消解系统Environmental ExpressSC196
4210微波等离子体原子发射光谱仪Agilent--
Zeiss LSM710共聚焦显微镜Zeiss--
碘化丙啶Sigma-Aldrich4170
NuPAGE样品还原剂ThermofisherNP0009
NuPAGE LDS样品缓冲液ThermofisherNP0008
SDS-PAGE凝胶InvitrogenNP0323BOX
转膜堆栈InvitrogenIB23002
抗HY5抗体AbiocodeR1245-2
抗NRT1.1抗体AgriseraAS12 2611
抗微管蛋白抗体Invitrogen32-2500
抗鼠二抗Biorad170-6516
抗兔二抗AgriseraAS09 602
SuperSignal West Femto化学发光底物ThermoFisher ScientificPI34094
RNeasy植物迷你试剂盒Qiagen74904
Maxima H Minus第一链cDNA合成试剂盒ThermoFisherFERK1652
Luna®通用qPCR预混液NEBM3003L
CFX Opus 384实时PCR系统Biorad--
2100 Bioanalyzer TapeStationAgilent Technologies--
Qubit荧光计Invitrogen--
Illumina NovaSeq 6000测序平台Illumina--
ChIP实验试剂盒Millipore17-295
ChIP级抗GFP抗体Abcamab6556
GST纯化试剂盒Thermofisher--
双荧光素酶检测试剂盒PromegaN1610
Tecan Safire 2酶标仪Tecan--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
植物材料与生长条件
拟南芥光强100 μmol,16L:8D;大豆和水稻光强200 μmol,16L:8D;温度处理时间和萌发时间
阅读提示:Methods: Plant materials, growth conditions, and phenotypic analyses
养分分析
C/N分析样品烘干温度和时间;MP-AES分析样品消化方法和标准曲线
阅读提示:Methods: Nutrient analyses
ChIP-qPCR
甲醛交联时间;超声条件;抗体用量;富集计算方式
阅读提示:Methods: Chromatin immunoprecipitation (ChIP) assays
EMSA
GST-HY5蛋白诱导表达和纯化条件;探针序列和标记方法
阅读提示:Methods: EMSA and dual luciferase assay
双荧光素酶实验
农杆菌注射浓度和侵染时间;荧光素酶检测方法
阅读提示:Methods: EMSA and dual luciferase assay