构建ASPA位点饱和突变文库并整合表达
在人类细胞中实现ASPA变体的单拷贝表达并建立变体-条码关联
将ASPA错义和无义变体文库与GFP融合,通过Bxb1催化位点特异性整合到HEK293T细胞的landing pad locus,利用IRES共表达mCherry;用PacBio长读长测序将134,176个唯一条码与变体匹配。
Deep mutational scanning reveals a correlation between degradation and toxicity of thousands of aspartoacylase variants.
包含VAMP-seq深度突变扫描、低通量流式验证、Western blot、降解途径抑制实验、degron定位、RNA-seq及RT-qPCR等多层验证
HEK293T landing pad细胞系 ASPA位点饱和突变文库 ASPA tile文库
VAMP-seq筛选覆盖6152/6260个单氨基酸替换和无义变体,基于11个重复 低通量流式细胞术验证18个ASPA变体的丰度评分 蛋白酶体抑制剂bortezomib(15 μM,16 h)和E1抑制剂MLN7243(0.5或1 μM,16 h)处理验证降解途径 HSP70抑制剂YM01(2.5 μM,24 h)处理验证 chaperone 参与 毒性筛选基于4个生物学重复,在0、5、7、9天测序计算毒性评分
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在人类细胞中实现ASPA变体的单拷贝表达并建立变体-条码关联
将ASPA错义和无义变体文库与GFP融合,通过Bxb1催化位点特异性整合到HEK293T细胞的landing pad locus,利用IRES共表达mCherry;用PacBio长读长测序将134,176个唯一条码与变体匹配。
量化每个ASPA变体在细胞中的相对丰度
根据GFP:mCherry比值将细胞分选为4个等量bin,对每个bin的条码进行Illumina测序,计算丰度评分(1为WT样,0为丰度严重降低)。
验证高通量丰度图谱的可靠性
单独构建18个ASPA变体,用流式细胞术测定GFP:mCherry比值,与高通量评分比较。
确定低丰度ASPA变体是否通过泛素-蛋白酶体系统、自噬或HSP70途径降解
对表达ASPA文库的细胞进行温度变化(29°C、39.5°C)或加入E1抑制剂MLN7243、蛋白酶体抑制剂bortezomib、自噬抑制剂chloroquine、HSP70抑制剂YM01或底物NAA,然后用流式细胞术分析GFP:mCherry分布。
鉴定ASPA序列中具有降解信号功能的区域
将ASPA序列分为26个24残基的tile(相邻tile重叠12残基),与GFP融合表达,通过流式分选和测序计算tile稳定性指数(TSI),并与QCDPred预测和结构埋藏程度比较。
评估ASPA变体长时间表达对细胞适应性的影响
将ASPA文库整合到HEK293T细胞,在doxycycline诱导后第0、5、7、9天收集细胞,通过条码测序追踪变体频率,计算毒性评分(1为与C152W相似,0为与WT相似)。
检验丰度图谱是否能区分致病和良性变体,并与热力学稳定性和进化保守性预测关联
从ClinVar和gnomAD收集致病变体、VUS和良性变体,比较其丰度评分;用Rosetta计算ΔΔG,用GEMME计算进化保守性评分,并与丰度评分进行相关性分析。
探究有毒ASPA变体引发细胞应激反应的分子基础
比较表达WT和C152W的细胞的转录组,并进行RT-qPCR检测HSPA1B诱导。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 文库构建 | MluI-HF限制酶 | New England Biolabs | -- |
| EcoRI-HF限制酶 | New England Biolabs | -- | |
| SYBR Safe核酸染料 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Zymo DNA清洁浓缩试剂盒 | Zymo | -- | |
| 大肠杆菌NEB-10β | New England Biolabs | -- | |
| SOC培养基 | Sigma | -- | |
| 中量质粒提取试剂盒 | Millipore Sigma | -- | |
| 条码标记 | NdeI限制酶 | New England Biolabs | -- |
| SacI-HF限制酶 | New England Biolabs | -- | |
| 重组虾碱性磷酸酶 | New England Biolabs | -- | |
| Klenow exo-聚合酶 | New England Biolabs | -- | |
| T4 DNA连接酶 | New England Biolabs | -- | |
| PacBio测序 | AMPure PB磁珠 | Pacific Biosciences | -- |
| Qubit dsDNA HS检测试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 2100生物分析仪 | Agilent Technologies | -- | |
| 高灵敏度DNA试剂盒 | Agilent Technologies | -- | |
| SMRTbell Express模板制备试剂盒2.0 | Pacific Biosciences | -- | |
| SageELF核酸片段分选仪 | SageScience | -- | |
| 细胞培养与转染 | DMEM培养基 | Sigma-Aldrich | -- |
| 胎牛血清 | Sigma | -- | |
| 青霉素G | AppliChem | -- | |
| 硫酸链霉素 | AppliChem | -- | |
| 谷氨酰胺 | Sigma | -- | |
| 多西环素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| OptiMEM培养基 | Gibco | -- | |
| Fugene HD转染试剂 | Promega | -- | |
| AP1903 | MedChemExpress | -- | |
| 流式细胞术 | BD FACSJazz流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| BD FACS Aria III流式细胞分选仪 | BD Biosciences | -- | |
| FlowJo v10.7.2软件 | BD | -- | |
| 胰蛋白酶 | Gibco | -- | |
| 柠檬酸钠 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 酚红 | Merck | 143-74-8 | |
| 蛋白质降解途径扰动 | 硼替佐米 | LC Laboratories | -- |
| 氯喹 | Sigma-Aldrich | -- | |
| MLN7243 | MedChemExpress | -- | |
| YM01 | StressMarq Bioscience | -- | |
| N-乙酰天冬氨酸 | Sigma-Aldrich | -- | |
| Western blot | 兔抗ASPA抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-29180 |
| 鼠抗β-actin抗体 | Sigma-Aldrich | A5441 | |
| 大鼠抗GFP抗体 | Chromotek | 3H9 | |
| 鼠抗RFP抗体 | Chromotek | 6G6 | |
| 兔抗GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | 14C10 | |
| HRP标记抗大鼠IgG | Invitrogen | 31470 | |
| HRP标记抗小鼠IgG | Dako | P0260 | |
| HRP标记抗兔IgG | Dako | P0448 | |
| 化学发光底物 | GE Healthcare | 1059243, 1059250 | |
| BioRad ChemiDoc MP成像系统 | BioRad | 12003154 | |
| DNA提取与测序 | Qiagen DNeasy血液组织试剂盒 | Qiagen | 69506 |
| Q5高保真预混液 | New England Biolabs | M0492S | |
| AMPure XP磁珠 | Beckman Coulter | A63881 | |
| SYBR Green染料 | -- | -- | |
| SYBR Safe DNA凝胶染料 | Thermo Fisher Scientific | S33102 | |
| GeneJET凝胶回收试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | K0692 | |
| Qubit dsDNA高灵敏度检测试剂 | Thermo Fisher Scientific | Q32851 | |
| TG NextSeq 500/550 High Output试剂盒v2.5(75循环) | Illumina | 20024911 | |
| RNA提取与RT-qPCR | RNeasy试剂盒 | Qiagen | -- |
| 无RNase的DNase I | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| RiboLock RNase抑制剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Maxima H Minus逆转录酶 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Maxima SYBR Green/ROX qPCR预混液(2X) | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| GeneJET RNA纯化试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 显微镜 | Zeiss AxioVert显微镜 | Carl Zeiss | -- |
| Carl Zeiss AxioCam ICm1数码相机 | Carl Zeiss | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| VAMP-seq丰度筛选 | 细胞分选bin设置(4个等量bin)、每个bin分选1.1百万细胞、doxycycline诱导表达5天 阅读提示:Methods中VAMP seq小节及Supplementary Fig. 20 |
| 毒性筛选 | 取样时间点(0、5、7、9天)、每个时间点500万细胞、4个生物学重复 阅读提示:Methods中Toxicity screen小节及Supplementary Fig. 11C |
| 降解途径扰动实验 | 抑制剂浓度和孵育时间:bortezomib 15 μM 16 h、MLN7243 0.5或1 μM 16 h、chloroquine 20 μM 16 h、YM01 2.5 μM 24 h、NAA 6 mM 24 h、温度29°C或39.5°C 16 h 阅读提示:Methods中Cell sorting小节 |
| degron定位 | tile设计(26个24残基tile,重叠12残基)、3个生物学重复和2个FACS重复 阅读提示:Methods中Degron cloning和Tile scoring小节 |
| RNA-seq | 3个独立转染重复、doxycycline诱导表达5天 阅读提示:Methods中RNA sequencing and RT-qPCR小节 |