Ran-GTP在青鳉早期胚胎中组装用于染色体准确分离的特化纺锤体结构

Ran-GTP assembles a specialized spindle structure for accurate chromosome segregation in medaka early embryos.

作者信息Ai Kiyomitsu, Toshiya Nishimura, Shiang Jyi Hwang, Satoshi Ansai, Masato T Kanemaki, Minoru Tanaka, Tomomi Kiyomitsu
PMID38302485
发布时间2024-02-01
DOI10.1038/s41467-024-45251-w

实验完整度

高

活细胞成像、CRISPR敲入、AID2降解、Ran突变体表达及免疫荧光,多层级功能与机制验证

主要模型

青鳉(Oryzias latipes)早期胚胎 RCC1-mCherry和EGFP-α-tubulin敲入青鳉品系 RCC1-mACF敲入青鳉品系 Ol-RanT27N表达胚胎

重点核对

胚胎在24–25°C下以3分钟或1分钟间隔进行活细胞成像,11–13个z截面(5 μm厚) 170 nM或330 nM诺考达唑处理10–30分钟,或冷处理20–30分钟 AID2降解:注射OsTIR1(F74G)-P2A-mCherry-H2B mRNA,10 μM 5-Ph-IAA处理 Ol-RanT27N mRNA注射浓度150 ng/μL RCC1敲入:50 ng/μL gRNA、150 ng/μL Cas9 mRNA、10 ng/μL dsDNA注射

摘要

尽管卵裂过程中细胞发生剧烈变化,每个卵裂球仍会组装有丝分裂纺锤体以准确分离复制的染色体。有丝分裂纺锤体组装的机制已在小型体细胞中得到广泛研究。然而,大型脊椎动物胚胎中纺锤体组装的机制仍知之甚少。在此,我们通过将CRISPR敲入与生长素诱导降解子技术相结合,在青鳉(Oryzias latipes)胚胎中建立了功能分析系统。活细胞成像揭示了微管组织和中心体定位的几个意外特征,这些特征实现了快速、准确的卵裂。重要的是,Ran-GTP在中期纺锤体中心组装了一个密集的微管网络,这对于早期胚胎中的染色体分离至关重要。这种独特的纺锤体结构在囊胚期之后被重塑为典型的短小、体细胞样纺锤体,此时Ran-GTP对染色体分离变得可有可无。我们提出,尽管存在中心体,染色体来源的Ran-GTP通路在大型、快速分裂的脊椎动物早期胚胎的功能性纺锤体组装中具有重要作用,类似于卵母细胞中的无中心体纺锤体组装。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
在大型、含中心体的脊椎动物早期胚胎中,Ran-GTP在纺锤体组装和染色体分离中发挥什么功能?
核心机制
Ran-GTP在中期纺锤体中心组装密集微管网络,该网络对于早期胚胎染色体准确分离至关重要;囊胚期后纺锤体结构重塑,Ran-GTP对染色体分离变为非必需,但仍参与有丝分裂退出后的核膜重建。
主要证据
活细胞成像显示早期胚胎纺锤体中心存在密集微管网络;Ol-RanT27N表达和AID2介导的RCC1降解均导致纺锤体中心微管网络缺失及染色体分离异常;囊胚期RCC1降解后染色体分离缺陷罕见。
研究意义
提出尽管存在中心体,染色体来源的Ran-GTP通路在大型、快速分裂的脊椎动物早期胚胎功能性纺锤体组装中具有重要作用,类似于卵母细胞中的无中心体纺锤体组装。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立活细胞成像系统

可视化青鳉早期胚胎中染色体和微管的动态行为

通过CRISPR敲入构建RCC1-mCherry和EGFP-α-tubulin青鳉品系,使用转盘共聚焦显微镜进行活细胞成像

2

表征卵裂期纺锤体动态和细胞周期

分析早期胚胎纺锤体组装、定位和细胞周期重塑

对受精卵进行长期活细胞成像,测量有丝分裂时长、细胞周期长度、中心体定位和纺锤体方向

3

分析纺锤体结构动态变化

探究纺锤体大小和结构在胚胎发育中的变化

测量不同阶段中期纺锤体长度、宽度,以及中心微管网络的荧光强度

4

验证中心微管网络的稳定性

表征纺锤体中心密集微管网络的微管稳定性

使用诺考达唑处理和冷处理,结合免疫荧光观察微管稳定性

5

解析纺锤体组装过程

理解早期胚胎特化纺锤体结构的组装过程

以1分钟间隔活细胞成像追踪EGFP-α-tubulin行为,并在诺考达唑存在下观察纺锤体自组织

6

验证Ran-GTP对纺锤体组装的功能

测试Ran-GTP在早期胚胎纺锤体组装和染色体分离中的必要性

表达显性负性突变体Ol-RanT27N,观察纺锤体组装和染色体分离表型

7

通过AID2降解RCC1验证Ran-GTP功能

通过特异性降解RCC1耗尽Ran-GTP,验证其在早期和晚期胚胎中的作用

将mAID-mClover-3xFLAG敲入RCC1基因,注射OsTIR1(F74G) mRNA,使用5-Ph-IAA诱导降解

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
硼硅酸盐玻璃毛细管Warner InstrumentsG100F-4, 64-0787
拉针仪NarishigePC-100
显微注射器eppendorf--
显微操作器NarishigeMN-153
体视显微镜LeicaM80
转盘共聚焦显微镜Yokogawa Electric Corporation--
ORCA-Fusion数字CMOS相机Hamamatsu Photonics--
ECLIPSE Ti2-E倒置显微镜Nikon--
APO LWD 20X WI λS物镜Nikon--
诺考达唑Sigma-AldrichM1404
5-Ph-IAA----
抗α-微管蛋白小鼠单克隆抗体Sigma-AldrichT6199
抗γ-微管蛋白小鼠单克隆抗体Sigma-AldrichT6557
山羊抗小鼠IgG Alexa Fluor Plus 555InvitrogenA32727
山羊抗小鼠IgG Alexa Fluor Plus 647InvitrogenA32728
Hoechst 33342FUJIFILM Wako346-07951
牛血清白蛋白Sigma-AldrichA7030
MEGAscript T7试剂盒Thermo Fisher ScientificAM1333
mMessage mMachine SP6试剂盒Thermo Fisher ScientificAM1340
RNeasy Mini试剂盒Qiagen--
PrimeSTAR MaxTakara--
KOD-Plus-NeoTOYOBO--
InFusion系统Takara--
KOD FX NeoTOYOBO--
自动微芯片电泳系统ShimazuMCE-202 MultiNA
玻璃底培养皿Greiner Bio-One627860

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
活细胞成像
成像温度24–25°C;3分钟或1分钟间隔;11–13个z截面(5 μm厚);胚胎在琼脂糖凹槽中放置
阅读提示:Methods中Microscope system and live imaging小节
诺考达唑处理
诺考达唑浓度170 nM或330 nM;处理时间10–30分钟;温度27.5°C
阅读提示:Methods中Nocodazole treatment of medaka embryos小节
AID2介导RCC1降解
5-Ph-IAA浓度10 μM;OsTIR1(F74G)-P2A-mCherry-H2B mRNA注射;早期胚胎立即处理,晚期胚胎注射后8小时处理
阅读提示:Methods中AID2-mediated protein knockdown小节及Fig. 7b
Ol-RanT27N表达
mRNA注射浓度150 ng/μL;观察8细胞期及256细胞期前表型
阅读提示:Methods中Microinjection小节及Results中Ol-RanT27N表达部分
冷处理和微管再生实验
冷处理20–30分钟;微管再生观察15–20秒间隔;室温观察
阅读提示:Methods中Cold treatment and MT re-growth assay小节
免疫荧光
一抗稀释1:200,4°C过夜;二抗和Hoechst 33342稀释1:1000,4°C过夜;丙酮处理−20°C 20分钟
阅读提示:Methods中Fixation and immunofluorescence of medaka embryos小节