建立活细胞成像系统
可视化青鳉早期胚胎中染色体和微管的动态行为
通过CRISPR敲入构建RCC1-mCherry和EGFP-α-tubulin青鳉品系,使用转盘共聚焦显微镜进行活细胞成像
Ran-GTP assembles a specialized spindle structure for accurate chromosome segregation in medaka early embryos.
活细胞成像、CRISPR敲入、AID2降解、Ran突变体表达及免疫荧光,多层级功能与机制验证
青鳉(Oryzias latipes)早期胚胎 RCC1-mCherry和EGFP-α-tubulin敲入青鳉品系 RCC1-mACF敲入青鳉品系 Ol-RanT27N表达胚胎
胚胎在24–25°C下以3分钟或1分钟间隔进行活细胞成像,11–13个z截面(5 μm厚) 170 nM或330 nM诺考达唑处理10–30分钟,或冷处理20–30分钟 AID2降解:注射OsTIR1(F74G)-P2A-mCherry-H2B mRNA,10 μM 5-Ph-IAA处理 Ol-RanT27N mRNA注射浓度150 ng/μL RCC1敲入:50 ng/μL gRNA、150 ng/μL Cas9 mRNA、10 ng/μL dsDNA注射
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
可视化青鳉早期胚胎中染色体和微管的动态行为
通过CRISPR敲入构建RCC1-mCherry和EGFP-α-tubulin青鳉品系,使用转盘共聚焦显微镜进行活细胞成像
分析早期胚胎纺锤体组装、定位和细胞周期重塑
对受精卵进行长期活细胞成像,测量有丝分裂时长、细胞周期长度、中心体定位和纺锤体方向
探究纺锤体大小和结构在胚胎发育中的变化
测量不同阶段中期纺锤体长度、宽度,以及中心微管网络的荧光强度
表征纺锤体中心密集微管网络的微管稳定性
使用诺考达唑处理和冷处理,结合免疫荧光观察微管稳定性
理解早期胚胎特化纺锤体结构的组装过程
以1分钟间隔活细胞成像追踪EGFP-α-tubulin行为,并在诺考达唑存在下观察纺锤体自组织
测试Ran-GTP在早期胚胎纺锤体组装和染色体分离中的必要性
表达显性负性突变体Ol-RanT27N,观察纺锤体组装和染色体分离表型
通过特异性降解RCC1耗尽Ran-GTP,验证其在早期和晚期胚胎中的作用
将mAID-mClover-3xFLAG敲入RCC1基因,注射OsTIR1(F74G) mRNA,使用5-Ph-IAA诱导降解
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 显微注射 | 硼硅酸盐玻璃毛细管 | Warner Instruments | G100F-4, 64-0787 |
| 拉针仪 | Narishige | PC-100 | |
| 显微注射器 | eppendorf | -- | |
| 显微操作器 | Narishige | MN-153 | |
| 体视显微镜 | Leica | M80 | |
| 活细胞成像 | 转盘共聚焦显微镜 | Yokogawa Electric Corporation | -- |
| ORCA-Fusion数字CMOS相机 | Hamamatsu Photonics | -- | |
| ECLIPSE Ti2-E倒置显微镜 | Nikon | -- | |
| APO LWD 20X WI λS物镜 | Nikon | -- | |
| 药物处理 | 诺考达唑 | Sigma-Aldrich | M1404 |
| AID2降解 | 5-Ph-IAA | -- | -- |
| 免疫荧光 | 抗α-微管蛋白小鼠单克隆抗体 | Sigma-Aldrich | T6199 |
| 抗γ-微管蛋白小鼠单克隆抗体 | Sigma-Aldrich | T6557 | |
| 山羊抗小鼠IgG Alexa Fluor Plus 555 | Invitrogen | A32727 | |
| 山羊抗小鼠IgG Alexa Fluor Plus 647 | Invitrogen | A32728 | |
| Hoechst 33342 | FUJIFILM Wako | 346-07951 | |
| 牛血清白蛋白 | Sigma-Aldrich | A7030 | |
| mRNA合成 | MEGAscript T7试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | AM1333 |
| mMessage mMachine SP6试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | AM1340 | |
| mRNA纯化 | RNeasy Mini试剂盒 | Qiagen | -- |
| 质粒构建 | PrimeSTAR Max | Takara | -- |
| KOD-Plus-Neo | TOYOBO | -- | |
| InFusion系统 | Takara | -- | |
| 基因分型 | KOD FX Neo | TOYOBO | -- |
| 自动微芯片电泳系统 | Shimazu | MCE-202 MultiNA | |
| 活细胞成像 | 玻璃底培养皿 | Greiner Bio-One | 627860 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 活细胞成像 | 成像温度24–25°C;3分钟或1分钟间隔;11–13个z截面(5 μm厚);胚胎在琼脂糖凹槽中放置 阅读提示:Methods中Microscope system and live imaging小节 |
| 诺考达唑处理 | 诺考达唑浓度170 nM或330 nM;处理时间10–30分钟;温度27.5°C 阅读提示:Methods中Nocodazole treatment of medaka embryos小节 |
| AID2介导RCC1降解 | 5-Ph-IAA浓度10 μM;OsTIR1(F74G)-P2A-mCherry-H2B mRNA注射;早期胚胎立即处理,晚期胚胎注射后8小时处理 阅读提示:Methods中AID2-mediated protein knockdown小节及Fig. 7b |
| Ol-RanT27N表达 | mRNA注射浓度150 ng/μL;观察8细胞期及256细胞期前表型 阅读提示:Methods中Microinjection小节及Results中Ol-RanT27N表达部分 |
| 冷处理和微管再生实验 | 冷处理20–30分钟;微管再生观察15–20秒间隔;室温观察 阅读提示:Methods中Cold treatment and MT re-growth assay小节 |
| 免疫荧光 | 一抗稀释1:200,4°C过夜;二抗和Hoechst 33342稀释1:1000,4°C过夜;丙酮处理−20°C 20分钟 阅读提示:Methods中Fixation and immunofluorescence of medaka embryos小节 |