原代人胰腺腺泡和导管细胞的分选与鉴定
获得纯化的腺泡和导管细胞并验证其谱系身份
从胰岛耗竭的供体胰腺组织经UEA-1和CLA流式分选腺泡(UEA-1highCLA-)和导管(UEA-1lowCLA+)细胞,通过免疫荧光、电镜和RNA-seq验证
Reconstitution of human PDAC using primary cells reveals oncogenic transcriptomic features at tumor onset.
含原代人腺泡/导管细胞3D及2D培养、基因编辑、DNA甲基化验证、RNA-seq、NSG小鼠移植瘤及人PDAC组织芯片验证
人原代胰腺腺泡细胞3D类器官 人原代胰腺导管细胞2D培养 NSG小鼠皮下移植瘤模型 人PDAC组织芯片(28例)
腺泡和导管细胞通过UEA-1highCLA-和UEA-1lowCLA+流式分选获得,并经电镜和DNA甲基化验证谱系身份 腺泡细胞在WNT依赖的3D类器官体系中培养,导管细胞在2D单层体系中培养 致癌KRASG12V过表达联合CRISPR/Cas9敲除p16、TP53和SMAD4(KPTS) 约1×10^6个KPTS细胞皮下注射入4-6周龄NSG小鼠,观察3个月成瘤 RNA-seq差异表达分析阈值:fold change>2且BH校正p<0.05(两组比较)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得纯化的腺泡和导管细胞并验证其谱系身份
从胰岛耗竭的供体胰腺组织经UEA-1和CLA流式分选腺泡(UEA-1highCLA-)和导管(UEA-1lowCLA+)细胞,通过免疫荧光、电镜和RNA-seq验证
实现原代人胰腺细胞的长期体外培养
腺泡细胞包埋于BME进行3D类器官培养,导管细胞在BME包被的2D条件下培养,含Wnt3a、R-Spondin 1、Noggin、FGF10、EGF等因子
确认长期培养后细胞的谱系来源
对新鲜和培养的腺泡及导管细胞进行reduced representation bisulfite sequencing,比较甲基化谱
模拟PDAC起始阶段的遗传事件
在腺泡类器官和导管细胞中过表达KRASG12V,并用CRISPR/Cas9敲除p16、TP53和SMAD4
验证腺泡和导管来源KPTS细胞的体内成瘤能力
将KPTS细胞皮下注射入NSG小鼠,观察3个月后取瘤进行组织学和免疫组化分析
揭示从正常细胞向PDAC转化的转录变化并鉴定早期诊断候选基因
对新鲜、培养及KPTS细胞进行bulk RNA-seq,并与TCGA PDAC和GTEx正常胰腺数据比较,筛选重叠高表达基因
验证候选基因在临床PDAC样本中的蛋白表达
对KPTS肿瘤、人胰腺囊性肿瘤及28例PDAC患者肿瘤与癌旁组织进行免疫组化染色
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞分选 | FITC标记的UEA-1 | Vector Laboratories | FL-1061-5 |
| Pacific blue标记的抗CLA抗体 | BioLegend | 321308 | |
| 抗7-AAD | BioLegend | 420404 | |
| FACSAria II流式细胞分选仪 | BD Biosciences | -- | |
| 细胞消化 | TrypLE Express消化液 | Life Technologies | 12605-028 |
| 3D类器官培养 | Type 2 Cultrex RGF基底膜提取物 | R&D Systems | 3533-010-02 P |
| 类器官培养 | 重组人R-Spondin 1 | R&D Systems | 4645-RS |
| Noggin蛋白 | R&D Systems | 6057-NG | |
| 成纤维细胞生长因子10 | R&D Systems | 345-FG | |
| 表皮生长因子 | R&D Systems | 236-EG | |
| 前列腺素E2 | Fisher Scientific | 22-961-0 | |
| A83-01 | R&D Systems | 2939 | |
| 烟酰胺 | Thermo Fisher Scientific | 48-190-7100GM | |
| 青霉素/链霉素 | Sigma-Aldrich | P4333 | |
| HEPES缓冲液 | Life Technologies | 15630 | |
| GlutaMax添加剂 | Life Technologies | 35050 | |
| 细胞培养 | Advanced DMEM/F-12培养基 | Life Technologies | 12634-010 |
| 基因编辑 | lentiCRISPR v2载体 | Addgene | #52961 |
| pMD2.G包装质粒 | Addgene | #12259 | |
| psPAX2包装质粒 | Addgene | #12260 | |
| RNA提取 | Zymo Direct-zol RNA小量提取试剂盒 | Zymo Research | R2063 |
| RNA-seq建库 | Illumina链特异性mRNA文库制备连接试剂盒 | Illumina | 20040532 |
| DNA提取 | Zymo Quick-DNA小量提取试剂盒 | Zymo Research | D3024 |
| DNA甲基化建库 | TruSeq Methyl Capture EPIC文库制备试剂盒 | Illumina | FC-151-1003 |
| 流式分析 | FITC抗人HLA-A,B,C抗体 | BioLegend | 311403 |
| FITC抗人HLA-DR, DP, DQ抗体 | BioLegend | 361705 | |
| FITC小鼠IgG2a同型对照 | BioLegend | 400209 | |
| BD LSRII流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| 免疫荧光 | 小鼠抗人STEM121抗体 | Takara Bio | #Y40410 |
| 小鼠抗人/鼠/大鼠KRT19抗体 | DSHB | #Troma-III | |
| 兔抗人α-淀粉酶抗体 | Sigma Aldrich | #A8273 | |
| 小鼠抗人Mucin5AC抗体 | Santa Cruz Biotechnology | #sc-33667 | |
| 免疫组化 | 兔抗人AHNAK2抗体 | Sigma Aldrich | #HPA002940 |
| 小鼠抗人/鼠/大鼠AREG抗体 | Santa Cruz Biotechnology | #SC-74501 | |
| 兔抗人/鼠/大鼠SEMA3A抗体 | Abcam | #AB199475 | |
| 小鼠抗人/鼠/大鼠SNCG抗体 | Santa Cruz Biotechnology | #SC-65979 | |
| 免疫荧光 | Alexa Fluor 488标记的驴抗小鼠IgG二抗 | Jackson ImmunoResearch | #715-545-150 |
| Cy3标记的驴抗大鼠IgG二抗 | Jackson ImmunoResearch | #712-165-150 | |
| Alexa Fluor 647标记的驴抗兔IgG二抗 | Jackson ImmunoResearch | #711-605-152 | |
| 免疫组化 | 生物素化山羊抗小鼠Ig | BD Biosciences | #550337 |
| DAB底物试剂盒 | BD Pharmingen | 550880 | |
| 免疫荧光 | DAPI染料 | Invitrogen | P36935 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 原代细胞分选 | 供体组织来源(胰岛耗竭胰腺组分)、分选标记UEA-1highCLA-(腺泡)和UEA-1lowCLA+(导管)、供体数量n=21 阅读提示:Methods 'Isolation of human pancreatic cells from organ donors using flow cytometry'及Supplementary Data 1 |
| 腺泡3D类器官培养 | 培养基成分及浓度(Wnt3a 50%、R-Spondin 1 500 ng/ml、Noggin 200 ng/ml、FGF10 100 ng/ml、EGF 50 ng/ml等)、BME包埋、换液频率每3-4天 阅读提示:Methods '3D organoid culture of sorted acinar and ductal cells' |
| 导管2D培养 | 5% BME包被、含5%血清的Advanced DMEM/F-12、传代方式 阅读提示:Methods '2D monolayer culture of sorted ductal cells' |
| 基因编辑构建KPTS | KRASG12V慢病毒载体、p16/TP53/SMAD4 sgRNA序列、各突变筛选药物浓度(G418 1000 μg/mL、嘌呤霉素1 μg/ml、nutlin-3 10 μM、BMP4 200 ng/mL) 阅读提示:Methods 'Genetic engineering of human primary pancreatic cells'及Oligo DNA sequences |
| NSG小鼠移植成瘤 | 细胞数量~1×10^6、注射部位(后侧腹皮下)、小鼠周龄4-6周、观察时间3个月、腺泡n=15和导管n=30 阅读提示:Methods 'Animal experiments'及Fig. 3f |
| RNA-seq分析 | 差异表达阈值(fold change>2,adj.p<0.05)、三组比较使用LRT、批次校正方法limma、参考数据集版本 阅读提示:Methods 'RNA-seq data analysis'及'Comparison of bulk RNA-seq data with reference scRNA-seq data' |
| 候选标志物筛选与验证 | 筛选阈值fold change>4且adj.p<0.05、TCGA和GTEx样本量、组织芯片28例患者及染色评分标准 阅读提示:Results 'Analysis of early human PDAC models identifies potential diagnostic biomarkers'及Fig. 6 |