构建miR408过表达与敲除杨树
获得miR408表达水平改变的材料以分析其功能。
将Pag-pre-miR408插入pCAMBIA2300由CaMV35S驱动获得过表达株系;设计四条sgRNA构建CRISPR/Cas9敲除株系,经PCR和测序筛选纯合株系。
Manipulating microRNA miR408 enhances both biomass yield and saccharification efficiency in poplar.
包含过表达/CRISPR敲除杨树、田间与温室植株、三突变体、荧光显微、糖化及木质素结构分析等多层级证据
杨树'84K'(Populus alba × P. glandulosa)组培苗 温室与田间一年生杨树植株 miR408过表达及CRISPR/Cas9敲除杨树 lac19 lac25 lac32三突变体及双突变体杨树
miR408_OX株系#1、#5、#6与WT及miR408_cr株系#8、#20的分组 温室及田间植株株高与基茎样本量:WT n=21、miR408_OX n=10-13 糖化效率检测:100±0.2 mg细胞壁残渣,72 h酶解,无酸预处理 木质素含量测定:AcBr法及Klason法,n=3 TrCBM1-GFP/CtCBM3-GFP工作浓度0.5 mg/mL,室温孵育30 min
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得miR408表达水平改变的材料以分析其功能。
将Pag-pre-miR408插入pCAMBIA2300由CaMV35S驱动获得过表达株系;设计四条sgRNA构建CRISPR/Cas9敲除株系,经PCR和测序筛选纯合株系。
检验miR408对生物量、解剖结构和细胞壁可及性的影响。
在温室和田间测量株高、基茎;半薄切片观察形成层和木质部;用TrCBM1-GFP和CtCBM3-GFP及荧光标记纤维素酶结合茎横切面检测细胞壁可及性。
验证miR408过表达是否提高细胞壁酶解释放糖的能力。
制备细胞壁残渣,在无酸预处理条件下用纤维素酶消化72 h,以酚-硫酸法测定释放糖并计算糖化效率。
确定miR408过表达对木质素沉积和聚合的影响。
采用间苯三酚染色、CRM、SRS、2D-HSQC NMR、AcBr法、Klason法及GPC分析木质素分布、S/G比、连接键和分子量。
确定miR408调控木质化的直接靶基因。
RNA-seq分析过表达与敲除株系差异表达基因,psRNAtarget预测靶标,qRT-PCR验证,5'RACE确定切割位点,荧光素酶实验验证负调控,FISH分析空间表达。
验证LACCASE敲除能否复制miR408过表达的表型。
设计四条sgRNA同时敲除LAC19、LAC25、LAC32,获得三突变体、双突变体和单突变体,并构建LACs过表达株系;分析生长、木质素染色、细胞壁可及性和糖化效率。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| RNA提取与qRT-PCR | RNA提取试剂盒 | TIANGEN | DP501 |
| 逆转录 | 第一链cDNA合成试剂盒 | TIANGEN | KR211 |
| qRT-PCR | SYBR Green混合试剂 | TIANGEN | FP401 |
| 切片包埋 | Spurr树脂 | Electron Microscopy Sciences | -- |
| 显微镜观察 | Leica Aperio VERSA数字病理扫描仪 | Leica | -- |
| Leica DM2500显微镜 | Leica | -- | |
| 切片 | Leica-RM2265切片机 | Leica | -- |
| Leica SM2010 R滑动切片机 | Leica | -- | |
| 漆酶蛋白检测 | 漆酶ELISA试剂盒 | MEIMIAN | -- |
| 拉曼分析 | Via-Reflex 532/XYZ共聚焦拉曼系统 | Renishaw | -- |
| SRS成像 | UPLSApo 60×1.20 NA水浸物镜 | Olympus | -- |
| CBM-GFP蛋白表达 | BL21大肠杆菌菌株 | Novagen | -- |
| CBM-GFP蛋白纯化 | Ni-NTA柱 | GE Healthcare | -- |
| 蛋白浓度测定 | NanoDrop 3300微量分光光度计 | Thermo Scientific | -- |
| 纤维素酶标记 | Alexa Fluor 488蛋白标记试剂盒 | Invitrogen | A10235 |
| 糖化酶解 | 纤维素酶RS | Yakult | -- |
| GPC分析 | Agilent 1200凝胶渗透色谱系统 | Agilent | -- |
| GC-FID糖分析 | Agilent 7890 A气相色谱-火焰离子化检测器 | Agilent | -- |
| 球磨 | 行星式球磨仪 | Fritsch GmbH | -- |
| NMR | 氘代二甲基亚砜 | -- | -- |
| 荧光素酶成像 | Vilber NEWTON7.0 CCD相机 | Vilber | -- |
| 木质素拉曼检测 | 硅PIN光电二极管FDS1010 | Thorlabs | -- |
| SRS信号检测 | SR844锁相放大器 | Stanford Research Systems | -- |
| SRS成像 | Nd:YVO4激光器 | High Q Laser | -- |
| Levante Emerald光学参量振荡器 | A·P·E Angewandte Physik und Elektronik GmbH | -- | |
| BX62WI/FV300激光扫描显微镜 | Olympus | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 杨树遗传转化与株系选择 | 背景材料为'84K'(Populus alba × P. glandulosa);过表达使用CaMV35S驱动Pag-pre-miR408;敲除株系为218 bp缺失的纯合株系#8和#20 阅读提示:Methods中Plasmid construction and plant transformation及Supplementary Fig. 1、2 |
| 生长表型统计 | 温室与田间的生长时间、样本量(WT n=21,miR408_OX n=10-13)及统计方法(双尾Student t检验) 阅读提示:Fig. 1、Fig. 2图注及Methods中Plant materials and growth conditions |
| 无预处理糖化效率测定 | 细胞壁残渣制备流程、100±0.2 mg用量、72 h酶解条件及糖化效率计算方式 阅读提示:Methods中Determination of saccharification efficiency |
| 细胞壁可及性检测 | TrCBM1-GFP和CtCBM3-GFP工作浓度0.5 mg/mL、切片厚度约25-30 µm、室温孵育30 min及荧光定量方法 阅读提示:Methods中Binding of CBM-GFP and cellulase to stem cross-sections及Fig. 1、Fig. 2、Fig. 6图注 |
| 木质素含量与结构分析 | AcBr法与Klason法的样品制备、2D-HSQC NMR积分公式、GPC色谱条件 阅读提示:Methods中Determination of lignin content、NMR sample preparation and NMR experiments及Determination of lignin molecular weight |
| 靶标验证 | psRNAtarget预测参数、5'RACE切割位点克隆数、荧光素酶实验共浸润比例与检测时间 阅读提示:Methods中In vitro transactivation assays及Fig. 4图注 |
| lac突变体表型分析 | sgRNA序列、突变体纯合株系数量、生长统计样本量n=10-15 阅读提示:Methods中Plasmid construction and plant transformation及Fig. 5、Fig. 6图注 |