脂肪细胞内质网中错误折叠蛋白的处置机制

The mechanisms to dispose of misfolded proteins in the endoplasmic reticulum of adipocytes.

作者信息Shuangcheng Alivia Wu, Chenchen Shen, Xiaoqiong Wei, Xiawei Zhang, Siwen Wang, Xinxin Chen, Mauricio Torres, You Lu, Liangguang Leo Lin, Huilun Helen Wang, Allen H Hunter, Deyu Fang, Shengyi Sun, Magdalena I Ivanova, Yi Lin, Ling Qi
PMID37253728
发布时间2023-05-30
DOI10.1038/s41467-023-38690-4

实验完整度

高

包含脂肪细胞特异性基因敲除小鼠模型、体外分化脂肪细胞、TEM/FIB-SEM成像、IP-MS及体外相分离重建等多层级功能与机制验证。

主要模型

脂肪细胞特异性Sel1L敲除小鼠(Sel1LAdipCre) 脂肪细胞特异性Sel1L和Atg7双敲除小鼠(DKO) 棕色脂肪细胞特异性HRD1敲除小鼠(Hrd1Ucp1Cre) 体外分化的棕色脂肪细胞(WT和Sel1L–/–)

重点核对

小鼠基因型:Sel1Lflox/flox;Adipoq-Cre(Sel1LAdipCre)、Atg7flox/flox;Adipoq-Cre(Atg7AdipCre)及双敲除DKO,以同窝WT为对照 小鼠年龄和性别:实验使用5周和10–12周龄的年龄和性别匹配同窝小鼠 LPL IP-MS鉴定:使用12周龄小鼠WAT(实验1:5 WT、6 Sel1LAdipCre、7 DKO;实验2:4 WT、3 Atg7AdipCre) 体外相分离条件:mCherry-LPL 10 μM,在含20 mM β-ME的相分离缓冲液中进行,添加或不添加EGFP-BiP 禁食-再喂养/橄榄油灌胃:禁食16 h后,HFD再喂养3 h或橄榄油灌胃(1 μl/1 g体重)2.5 h

摘要

内质网相关降解(ERAD)和内质网自噬(ER-phagy)分别是内质网蛋白和内质网聚集体的主要降解机制;然而,这两种通路在生理环境下的交互作用尚未被探索。本文以脂肪细胞为模型系统,报道SEL1L-HRD1 ERAD蛋白复合物降解错误折叠的内质网蛋白并限制内质网自噬,并且只有当SEL1L-HRD1 ERAD受损时,内质网才发生碎片化并被内质网自噬清除。当两者均受损时,含有错误折叠蛋白的内质网碎片在空间上聚合成一种独特的结构,称为内质网碎片聚合体(CERFs),由脂蛋白脂肪酶(LPL,一种关键的脂解酶和内源性SEL1L-HRD1底物)以及某些内质网伴侣蛋白组成。CERFs随年龄增长而增大并变得越来越不溶。最后,我们通过LPL和BiP在体外的相分离重建了CERFs,该过程受氧化还原环境和LPL C端色氨酸环的影响。因此,我们的发现证明了以SEL1L-HRD1 ERAD为中心的一系列事件处置脂肪细胞内质网中的错误折叠蛋白,突出了体内细胞对内质网错误折叠蛋白的深刻适应性。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
在脂肪细胞中,SEL1L-HRD1 ERAD与内质网自噬如何协同处置内质网中的错误折叠蛋白?
核心机制
SEL1L-HRD1 ERAD降解错误折叠的内质网蛋白(如LPL)并限制内质网自噬;当ERAD受损时,内质网碎片化并被内质网自噬清除;当两者均受损时,含错误折叠蛋白的内质网碎片空间聚合形成CERFs,该结构随年龄增大且不溶,并可在体外通过LPL和BiP相分离重建。
主要证据
脂肪细胞特异性基因敲除小鼠模型结合TEM/FIB-SEM成像显示Sel1L缺失激活自噬和内质网自噬,DKO中形成CERFs;IP-MS和免疫共沉淀鉴定LPL为SEL1L-HRD1底物及CERFs主要组分;体外相分离实验证明LPL与BiP形成冷凝物。
研究意义
揭示了以SEL1L-HRD1 ERAD为中心的处置内质网错误折叠蛋白的序列事件,强调了体内细胞对内质网错误折叠蛋白的深刻适应性,并提示CERFs可能作为隔离潜在毒性蛋白聚集体的策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建脂肪细胞特异性基因敲除小鼠模型

在体内研究SEL1L-HRD1 ERAD与自噬在脂肪细胞中的交互作用。

利用Adiponectin-Cre小鼠构建脂肪细胞特异性Sel1L敲除(Sel1LAdipCre)、Atg7敲除(Atg7AdipCre)及双敲除(DKO)小鼠,以同窝WT为对照;通过Western blot验证SEL1L、HRD1或ATG7蛋白水平降低。

2

检测Sel1L缺失脂肪细胞中自噬和内质网自噬的激活

验证SEL1L-HRD1 ERAD缺失是否激活自噬和内质网自噬。

对gonadal WAT进行Western blot检测LC3B和P62,TEM观察自噬泡和内质网样结构,以及微阵列数据分析KEGG通路。

3

鉴定DKO脂肪细胞中CERFs结构

探究SEL1L和ATG7双缺失时错误折叠蛋白的处置方式及是否形成特殊结构。

利用TEM、免疫金标记、共聚焦显微镜和FIB-SEM三维重建观察DKO WAT和BAT中的P62包涵体及内质网碎片聚合体(CERFs)。

4

鉴定LPL为SEL1L-HRD1 ERAD底物

确定CERFs中的关键蛋白组分是否为ERAD底物。

在Hrd1Ucp1Cre BAT中进行SEL1L免疫共沉淀-质谱(IP-MS)筛选潜在底物;通过免疫共沉淀、Western blot和qPCR验证LPL与SEL1L的相互作用及蛋白稳定性。

5

验证LPL是CERFs的主要成分并与ER伴侣蛋白互作

确定LPL在CERFs中的定位及其与内质网伴侣蛋白的相互作用。

通过EndoH消化、免疫荧光、免疫金标记TEM和免疫共沉淀检测LPL的亚细胞定位及与BiP、OS9、MLEC、PLOD3等伴侣蛋白的共定位和相互作用。

6

分析CERFs随年龄的生化特性变化

探究CERFs的溶解性和聚集特性是否随年龄变化。

通过非变性SDS-PAGE、去垢剂溶解性实验和TEM分析5周与12周龄DKO WAT中LPL的聚集和不溶性,以及CERFs的形态变化。

7

体外重建LPL与BiP的相分离

在体外验证LPL能否自组装形成冷凝物以及BiP如何影响该过程。

使用纯化的重组mCherry-LPL和EGFP-BiP进行体外相分离实验,通过共聚焦显微镜、负染TEM、浊度测定和FRAP分析冷凝物的形态和物理性质。

8

探究LPL相分离的分子机制

明确氧化还原环境和LPL C端色氨酸环对LPL自组装的影响。

在去除β-ME的条件下观察LPL聚集,构建LPL CTD截短体和W3N突变体,比较其相分离效率和聚集倾向。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
4-羟基他莫昔芬SigmaH7904
衣霉素Calbiochem--
布雷菲德菌素AMilliporeSigma--
嘌呤霉素----
抗HSP90抗体Santa Cruzsc-7947
抗GAPDH抗体ProteinTech60004-1-Ig
抗LPL抗体R&D SystemsAF7197-SP
抗SEL1L抗体Abcamab78298
抗HRD1抗体ProteinTech13473-1-AP
抗ATG7抗体Cell Signaling8558 S
抗P62抗体MBLPM066
抗LC3B抗体Cell Signaling2775 S
抗BiP抗体Abcamab21685
抗OS9抗体Abcamab109510
抗GLUT4抗体ProteinTech66846-I-Ig
抗钙联蛋白抗体ProteinTech10427-2-AP
抗MLEC抗体ProteinTech26655-1-AP
抗PLOD3抗体ProteinTech11027-1-AP
抗CAV1抗体ABclonalA1555
抗Caspase 3抗体Cell Signaling9662 S
抗切割型Caspase 3抗体Cell Signaling9661 S
抗H2A抗体Cell Signaling2578
抗mCherry抗体ABclonalAE002
抗His标签抗体ABclonalAE003
驴抗山羊IgG-HRPThermoFisherPA1-28664
山羊抗兔IgG-HRPBio-Rad1706515
山羊抗小鼠IgG-HRPBio-Rad1706516
山羊抗豚鼠IgG-HRPBio-RadAHP863P
Protein G/A琼脂糖珠----
免疫球蛋白GMBLPM094
Trueblot抗山羊IgG HRPRockland18-8814-31
原位细胞死亡检测试剂盒Roche11684795910
重组DNase IOmegaE1091
抗GPIHBP1抗体----
抗KDEL抗体NovusNBP1-97469
Alexa fluor 488亲和纯驴抗山羊IgG (H+L)Jackson ImmunoResearch705-546-147
Alexa fluor plus 555驴抗山羊IgG (H+L)InvitrogenA32816
Alexa fluor plus 647驴抗山羊IgG (H+L)InvitrogenA32849
Alexa fluor 647亲和纯驴抗大鼠IgG (H+L)Jackson ImmunoResearch712-606-150
Alexa fluor plus 555驴抗小鼠IgG (H+L)InvitrogenA32773
Alexa fluor 488亲和纯驴抗兔IgG (H+L)Jackson ImmunoResearch711-546-152
Alexa fluor plus 555驴抗兔IgG (H+L)InvitrogenA32794
Alexa fluor 647亲和纯驴抗兔IgG (H+L)Jackson ImmunoResearch711-606-152
Alexa fluor 647亲和纯驴抗豚鼠IgG (H+L)Jackson ImmunoResearch706-606-148
含DAPI的Prolong Gold抗淬灭封片剂ThermoFisher--
甲醛Electron Microscopy Sciences--
胶体金抗体Jackson ImmunoResearch--
封闭液EMS25599
Trizol----
BCP相分离试剂Molecular Research Center--
镍离子-次氮基三乙酸树脂----
异丙基-β-D-硫代半乳糖苷----
β-巯基乙醇----
尿素----
LabAssay™甘油三酯试剂盒Wako Chemicals290-63701
磷酸酶抑制剂MilliporeSigma--
完全蛋白酶抑制剂MilliporeSigma--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小鼠模型构建与基因型鉴定
小鼠品系背景(C57BL/6J)、floxed等位基因(Sel1Lflox/flox、Atg7flox/flox)、Cre品系(Adipoq-Cre、Ucp1-Cre)及对照设置;实验年龄(5周和10–12周)和性别
阅读提示:Methods中Mice小节及图1 legend
LPL IP-MS鉴定底物
BAT来源(12周龄雌性小鼠,每种基因型1只)、裂解缓冲液(1% Triton X-100, 150 mM NaCl, 25 mM Tris-HCl pH 7.5)、抗体用量(2 mg/ml)及IP-MS筛选标准(PSM比值)
阅读提示:Methods中Immunoprecipitation (IP) and IP-based LC-Tandem Mass spectrometry小节及Supplementary Table 1
体外相分离实验
重组蛋白浓度(mCherry-LPL 10 μM)、缓冲液组成(20 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, 20 mM β-ME, 1 M Urea, pH 7.5)、透析条件(4°C过夜)及是否添加EGFP-BiP
阅读提示:Methods中In vitro phase separation小节及图7 legend
禁食-再喂养与橄榄油灌胃
禁食时间(16 h)、再喂养饲料(HFD 60% fat)及时间(3 h)、橄榄油灌胃剂量(1 μl/1 g体重)和采血时间(2.5 h)
阅读提示:Methods中Animal experiments小节及Supplementary Fig. 5b
TEM与免疫金标记样本制备
固定液组成(2.5% glutaraldehyde, 4% formaldehyde in 0.1 M sodium cacodylate buffer)、切片厚度(70 nm for TEM, 80 nm for immunogold)、抗体稀释度(LPL 1:70或1:50, KDEL 1:50, BiP 1:50, PLOD3 1:10, P62 1:50)及胶体金抗体稀释度(1:25)
阅读提示:Methods中Transmission electron microscopy (TEM)和Immunogold labeling for TEM小节及对应图注