硒磷酸合成酶1缺乏通过扰乱氧化还原稳态加剧骨关节炎

Selenophosphate synthetase 1 deficiency exacerbates osteoarthritis by dysregulating redox homeostasis.

作者信息Donghyun Kang, Jeeyeon Lee, Jisu Jung, Bradley A Carlson, Moon Jong Chang, Chong Bum Chang, Seung-Baik Kang, Byung Cheon Lee, Vadim N Gladyshev, Dolph L Hatfield, Byeong Jae Lee, Jin-Hong Kim
PMID35140209
发布时间2022-02-09
DOI10.1038/s41467-022-28385-7

实验完整度

高

含人OA软骨样本、多种细胞模型、条件敲除小鼠模型及体内挽救实验,具备功能与机制验证

主要模型

人OA软骨样本 原代小鼠关节软骨细胞 Sephs1-iCKO小鼠(Sephs1fl/fl; Col2a1-CreERT2) Sephs1条件敲除小鼠(Sephs1fl/fl; Col2a1-Cre)

重点核对

软骨特异性Sephs1敲除效率:原代软骨细胞中Sephs1转录本及SEPHS1蛋白检测 ROS水平:CM-H2DCFDA测H2O2、DHE测O2•−,流式与免疫荧光定量 衰老指标:γ-H2AX核焦点与SA-β-Gal阳性率 NAC处理浓度与Sephs1 siRNA敲低后γ-H2AX和SA-β-Gal阳性变化 TMX注射方案:80 μg/g体重,连续5天腹腔注射;DMM术后6或8周取材

摘要

衰老和机械负荷过重是骨关节炎(OA)的显著危险因素,二者会导致氧化还原稳态失衡。由此产生的氧化应激状态驱动OA发展过程中软骨细胞的病理转变。然而,参与破坏软骨细胞氧化还原稳态的具体分子通路仍不清楚。本研究发现,硒磷酸合成酶1(SEPHS1)的表达在人及小鼠OA软骨中下调。SEPHS1下调削弱了软骨细胞合成一类具有氧化还原酶功能的硒蛋白的能力,从而升高活性氧(ROS)水平并促进软骨细胞衰老。在成年小鼠中软骨特异性敲除Sephs1引起衰老相关OA,并加重创伤后OA,而补充N-乙酰半胱氨酸(NAC)可逆转上述表型。硒缺乏饮食与Sephs1敲除在加剧小鼠OA发病中具有协同效应。因此,我们提出SEPHS1是硒代谢与氧化还原稳态的关键调控因子,其失调驱动OA进展。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
OA中硒代谢通路如何失调,以及该失调如何导致软骨细胞氧化还原稳态破坏和病理转变。
核心机制
SEPHS1下调减少具有氧化还原酶功能的应激相关硒蛋白(GPX1、SELENOW、MSRB1)合成,升高ROS,引起DNA损伤和软骨细胞衰老,SASP因子表达增加,导致软骨基质分解。
主要证据
人及小鼠OA软骨中SEPHS1表达下调;软骨细胞Sephs1敲除或siRNA敲低后应激相关硒蛋白减少、ROS升高、γ-H2AX和SA-β-Gal增加;NAC可逆转体外衰老表型;Sephs1-iCKO小鼠在衰老相关和DMM创伤后OA模型中OA表型加重,NAC补充可挽救。
研究意义
提出SEPHS1是硒代谢和氧化还原稳态的重要调控因子,其失调驱动OA进展;维持硒代谢的策略可能成为OA的治疗和预防途径。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

识别OA中硒代谢通路调控因子的表达变化

寻找在OA条件下表达特异性改变的硒代谢通路调控因子

分析GEO公共转录组数据集(人OA软骨、IL-1β处理软骨外植体和软骨细胞、多种OA动物模型),并对人OA软骨及小鼠软骨进行免疫组化和染色

2

体外验证SEPHS1缺失对硒蛋白和ROS的影响

验证SEPHS1缺失是否减少应激相关硒蛋白并升高ROS

分离Sephs1fl/fl与Sephs1fl/fl; Col2a1-Cre小鼠原代软骨细胞,进行Western blot、qRT-PCR、CM-H2DCFDA和DHE染色;并用siRNA敲低Sephs1

3

验证SEPHS1缺失诱导软骨细胞衰老

验证ROS升高是否导致DNA损伤和细胞衰老

检测γ-H2AX焦点、SA-β-Gal活性、SASP因子表达,并进行RNA测序和GSEA;用NAC处理验证ROS的作用

4

体内验证Sephs1缺失对衰老相关OA的影响

验证成年软骨中Sephs1缺失是否加速衰老相关OA

使用他莫昔芬诱导的软骨特异性Sephs1敲除小鼠(Sephs1-iCKO),在12月龄注射TMX,18月龄分析OA表型

5

体内验证Sephs1缺失对创伤后OA的影响及NAC挽救

验证Sephs1缺失是否加重DMM诱导的创伤后OA,以及NAC能否挽救

12周龄Sephs1-iCKO小鼠行DMM手术,给予NAC或硒酸盐补充,分析组织学、μCT和疼痛行为

6

验证硒缺乏饮食与Sephs1缺失的协同作用

验证膳食硒缺乏是否与SEPHS1缺失协同加剧OA

12周龄小鼠喂饲硒缺乏饮食或对照饮食,行DMM手术,分析OA表型

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
他莫昔芬Sigma Aldrich--
玉米油Sigma Aldrich--
N-乙酰半胱氨酸----
组织基因组DNA提取SV小量制备试剂盒MG MED--
SEPHS1抗体Santa Cruzsc-365945
p16INK4a抗体Proteintech10883-1-AP
MMP13抗体Abcamab51072
GPX1抗体Abcamab22604
SELENOW抗体Rockland600-401-A29
4-羟基壬烯醛抗体Abcamab46545
IL-6抗体Santa Cruzsc-130326
GROα抗体R&D systemsMAB453
ADAMTS5抗体Abcamab41037
CTX-II抗体NovusNBP2-59386
NITEGE抗体MD Bioproducts1042003
HMGB1抗体Abcamab18256
II型胶原抗体Sigma AldrichMAB8887
NBT/BCIP即用型片剂Roche--
RIPA裂解液Sigma Aldrich--
硝酸纤维素膜GE Healthcare--
ECL底物Thermo Scientific--
iBright FL1000成像系统Thermo Scientific--
Dulbecco改良Eagle培养基----
胎牛血清Gibco--
METAFECTENE PRO转染试剂Biontex--
CM-H2DCFDA荧光探针Thermo Scientific--
二氢乙锭Thermo Scientific--
FACS Canto II流式细胞仪BD Biosciences--
EVOS FL细胞成像系统Thermo Scientific--
TRI试剂Molecular Research Center, Inc.--
EasyScript逆转录酶TransGen Biotech--
Power SYBR Green PCR预混液Thermo Scientific--
StepOnePlus实时PCR系统Applied Biosystems--
TruSeq链特异性mRNA样本制备试剂盒Illumina--
NovaSeq 6000测序仪Illumina--
Kapa文库定量试剂盒Kapa Biosystems--
Agilent 2100生物分析仪Agilent--
动态负重系统Bioseb--
incapacitance测痛仪IITC Life Science600MR
热板镇痛仪Columbus Instruments--
活体微型CT扫描仪BrukerSkyscan 1276

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
人OA软骨样本分析
样本来源为接受全膝关节置换术的OA患者,仅使用女性患者样本;OA损伤区取胫骨平台内侧,对照取外侧相对未损伤区
阅读提示:Methods的Collection of human tissue samples及Fig. 1b、c图注
软骨细胞Sephs1敲除或敲低
原代软骨细胞来自5日龄ICR小鼠;siRNA 50 nM转染12 h后换液48 h,转染两次
阅读提示:Methods的Cell culture及RNA sequencing小节
ROS与衰老检测
CM-H2DCFDA 5 μM 30 min、DHE 1 μM 15 min;SA-β-Gal 37 °C 12–16 h;NAC处理浓度见图注
阅读提示:Methods的ROS detection与SA-β-Gal staining小节及Fig. 2k、l图注
诱导性Sephs1敲除小鼠
12周龄或12月龄小鼠腹腔注射TMX 80 μg/g体重,连续5天,溶于玉米油
阅读提示:Methods的Mice小节及Fig. 3a–c图注
DMM创伤后OA模型与补充处理
12周龄(WT)或13周龄(Sephs1fl/fl或CreERT2)小鼠行DMM;NAC 1 mg/ml或硒酸钠1 ppm饮水,从术前5天开始;术后6或8周取材
阅读提示:Methods的Experimental OA in mice小节及Fig. 4、5图注
硒缺乏饮食实验
硒缺乏饮食0.026 μg/g Se,对照0.4 μg/g Se;从DMM术前5天开始,术后继续6周
阅读提示:Methods的Selenium-deficient diet in mice小节及Fig. 6图注