内源性甲醛清除细胞谷胱甘肽导致氧化还原紊乱和细胞毒性

Endogenous formaldehyde scavenges cellular glutathione resulting in redox disruption and cytotoxicity.

作者信息Carla Umansky, Agustín E Morellato, Matthias Rieckher, Marco A Scheidegger, Manuela R Martinefski, Gabriela A Fernández, Oleg Pak, Ksenia Kolesnikova, Hernán Reingruber, Mariela Bollini, Gerry P Crossan, Natascha Sommer, María Eugenia Monge, Björn Schumacher, Lucas B Pontel
PMID35136057
发布时间2022-02-08
DOI10.1038/s41467-022-28242-7

实验完整度

高

含人细胞系、秀丽隐杆线虫及DNA修复缺陷细胞多层级证据,并有氧化应激、GSH比值及回复实验验证

主要模型

人Nalm6前B淋巴母细胞白血病细胞 人HCT116结直肠癌细胞 秀丽隐杆线虫adh-5突变体 鸡DT40细胞及人PD20成纤维细胞

重点核对

FA处理浓度与时间:Nalm6和HCT116细胞48 h,FA 0、15、22.5、30、60、90、120、150、180 μmol L−1等 L-BSO浓度与处理时间:Nalm6 50 μmol L−1,HCT116 100 μmol L−1或500 μmol L−1 NAC处理方式:500 μmol L−1共处理或1/10 mmol L−1预加载24 h 秀丽隐杆线虫L1期FA浓度10和12 mmol L−1,NAC 10 mmol L−1共孵育 UPLC-HRMS检测GSH、GSSG和HSMGSH,样本n=9(未处理)或n=5(FA处理)

摘要

甲醛(FA)是一种普遍存在的内源性和环境代谢物,被认为通过DNA和DNA-蛋白交联发挥细胞毒性,可能参与人类DNA修复疾病范可尼贫血的发生。编码FA解毒酶的基因突变构成一种人类遗传性骨髓衰竭综合征(IBMFS),即使DNA修复功能正常也会发生,这提出了FA是否在遗传毒性之外造成相关细胞损伤的问题。在此,我们报道FA在人类细胞和秀丽隐杆线虫中触发细胞氧化还原失衡。机制上,FA与谷胱甘肽(GSH)的氧化还原活性硫醇基团反应,改变GSH:GSSG比值并引起氧化应激。FA的细胞毒性可被乙醇脱氢酶5(ADH5/GSNOR)预防,该酶代谢FA-GSH产物,最终产生还原型GSH。此外,我们显示GSH合成保护人类细胞免受FA影响,表明GSH在预防FA毒性中具有主动作用。这些发现可能与携带FA解毒系统突变的患者相关,并可能提示富含硫醇的抗氧化剂如N-乙酰-L-半胱氨酸的治疗益处。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
在DNA修复功能正常时,FA是否通过遗传毒性之外的机制造成细胞损伤,以及GSH和ADH5在此过程中的作用。
核心机制
FA与GSH的硫醇基团自发反应生成HSMGSH,改变GSH:GSSG比值并引起氧化应激;ADH5代谢HSMGSH回收还原型GSH,GSH合成则提供GSH以限制FA毒性。
主要证据
人Nalm6、HCT116等细胞及秀丽隐杆线虫adh-5突变体中,FA诱导氧化应激标志物(H2DCFDA、DHE、roGFP、Grx1-roGFP2、ESR、Pgst-4::GFP)并降低GSH:GSSG比值;ADH5缺失加重FA敏感性;NAC、GSH-MEE及GCLM回复可改变FA毒性。
研究意义
研究提示GSH在预防FA毒性中的作用,可能对携带FA解毒系统突变的IBMFS/AMeD患者、范可尼贫血患者、BRCA2突变携带者及应对血液FA的癌细胞具有意义。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建ADH5缺失细胞并评估FA敏感性

验证ADH5在DNA修复正常时限制FA细胞毒性。

用CRISPR/Cas9在HCT116构建ΔADH5、ΔGCLM、ΔTP53 ΔADH5等细胞,在Nalm6中使用ΔADH5和ΔFANCB细胞,检测FA处理后的活力、γ-H2AX、p-p53、凋亡、细胞周期和3D球形成。

2

在秀丽隐杆线虫中验证adh-5功能

确认H24K24.3为ADH5线虫同源基因并参与FA耐受。

用CRISPR/Cas9生成adh-5(sbj21)缺失突变体,表达ADH-5::GFP融合蛋白,检测L1期和成虫对FA的存活及发育。

3

检测FA诱导的氧化应激

验证FA是否引起细胞氧化还原失衡和ROS积累。

使用H2DCFDA、DHE、roGFP、Grx1-roGFP2、PBSF、ESR自旋探针CMH及线虫HyPer和Pgst-4::GFP报告氧化应激。

4

测试硫醇类抗氧化剂对FA毒性的影响

验证外源硫醇抗氧化剂能否预防FA细胞毒性。

在HCT116细胞和秀丽隐杆线虫中联合使用NAC、GSH-MEE、Trolox与FA,检测活力、3D球形成和线虫存活发育。

5

遗传和药理抑制GSH合成

验证内源性GSH合成对FA耐受的贡献。

用L-BSO抑制GSH合成,用CRISPR/Cas9构建ΔGCLM及ΔADH5 ΔGCLM细胞,检测FA处理后活力和集落形成。

6

检测FA与GSH反应产物及GSH:GSSG比值

验证细胞内FA与GSH反应生成HSMGSH并影响GSH稳态。

体外合成HSMGSH,用UPLC-HRMS检测细胞提取物中GSH、GSSG和HSMGSH,计算GSH:GSSG比值,并用Grx1-roGFP2报告氧化还原电位。

7

在DNA修复缺陷细胞中评估GSH作用

验证GSH合成是否保护范可尼贫血通路缺陷细胞免受FA毒性。

在鸡DT40 ΔFANCI、ΔBRCA2细胞、人PD20 FANCD2−/−成纤维细胞和Nalm6 ΔFANCB细胞中联合FA与L-BSO检测活力。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Dulbecco改良Eagle培养基Thermo Scientific12100061
Roswell Park Memorial Institute 1640培养基Thermo Scientific31800105
胎牛血清Natocor--
鸡血清Gibco16010167
胎牛血清Gibco16110082
甲醛Pierce28908
L-丁硫氨酸亚砜亚胺Sigma-AldrichB2515
N-乙酰-L-半胱氨酸Sigma-AldrichA7250
谷胱甘肽单乙酯Santa Cruzsc-203974
TroloxSigma-Aldrich238813
顺铂Santa Cruzsc-200896
羟基脲Santa Cruzsc-29061
2′,7′-二氯二氢荧光素二乙酸酯Sigma-AldrichD6883
二氢乙锭检测试剂盒CaymanChem601290
PE Annexin V凋亡检测试剂盒BD Pharmigen579563
刃天青Sigma-AldrichR7017
CellTiter(MTS)PromegaG3582
GSH-Glo谷胱甘肽检测PromegaV6911
GCLM抗体Atlas antibodiesHPA023696
FLAG抗体Abcamab49763
p53抗体CST9282
磷酸化p53抗体CST9284
磷酸化组蛋白H2A.X抗体CST9718
磷酸化CHK1抗体CST2348
磷酸化CHK2抗体CST2661
Vinculin抗体Santa Cruzsc-73614
Lipofectamine 3000Thermo ScientificL3000015
pX458载体Addgene48138
Cas9NEB--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞活力检测
细胞接种密度(HCT116 3000细胞/孔,Nalm6 5000细胞/孔)、FA浓度范围、处理时间(HCT116 3天,Nalm6 4–5天)、L-BSO和NAC浓度
阅读提示:Methods“Viability and survival assays”及图1、图4、图5图注
3D球形成
琼脂糖包被、细胞接种数(2×10^3或4×10^3细胞/孔)、FA/L-BSO/NAC/GSH-MEE/Trolox浓度、检测时间5–7天
阅读提示:Methods“3D-Spheroid assay”及图4、图5图注
ROS检测
H2DCFDA、DHE、PBSF、CMH浓度、处理时间48 h、阳性对照L-BSO和抗霉素A浓度
阅读提示:Methods“ROS measurements”及图3图注
UPLC-HRMS代谢物检测
细胞数(1×10^6或1.25×10^6细胞/皿)、FA 150 μmol L−1处理48 h、样本数(未处理n=9,FA处理n=5)、归一化方式
阅读提示:Methods“Sample preparation for UPLC-HRMS analysis”及图6图注
秀丽隐杆线虫FA处理
线虫同步化方法、L1期FA浓度10和12 mmol L−1、NAC 10 mmol L−1、孵育4 h、存活和发育评分时间点
阅读提示:Methods“Survival and development assays in C. elegans”及图2、图4图注