体外RNA捕获筛选移码元件互作蛋白
鉴定与SARS-CoV-2 –1PRF RNA元件直接结合的宿主蛋白。
将SARS-CoV-2基因组13456-13570位RNA与感染及未感染Calu-3细胞和HEK293细胞裂解液孵育,通过生物素化反义DNA寡核苷酸捕获,LC-MS/MS鉴定互作蛋白。
The short isoform of the host antiviral protein ZAP acts as an inhibitor of SARS-CoV-2 programmed ribosomal frameshifting.
包含体外RNA捕获、细胞荧光报告、感染模型、体外翻译、单分子光学镊子等多层级功能与机制验证。
SARS-CoV-2感染Calu-3细胞 HEK293细胞双荧光移码报告系统 ZAP-S过表达Huh7细胞感染模型 兔网状红细胞裂解物体外翻译系统
双荧光报告系统中ZAP-S过表达使移码效率降低最多50% ZAP-S过表达使Huh7细胞中SARS-CoV-2病毒滴度降低约20倍 体外翻译中3 µM ZAP-S使移码效率从46%降至约26% MST显示ZAP-S与野生型移码RNA结合KD=110±9 nM 光学镊子显示ZAP-S存在时野生型PK RNA再折叠工作显著减少
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定与SARS-CoV-2 –1PRF RNA元件直接结合的宿主蛋白。
将SARS-CoV-2基因组13456-13570位RNA与感染及未感染Calu-3细胞和HEK293细胞裂解液孵育,通过生物素化反义DNA寡核苷酸捕获,LC-MS/MS鉴定互作蛋白。
评估候选RNA结合蛋白对SARS-CoV-2移码效率的影响。
将候选蛋白与ECFP融合表达,与EGFP-mCherry双荧光移码报告质粒共转染HEK293细胞,流式细胞术检测mCherry/EGFP比值计算移码效率。
验证ZAP-S在感染细胞中对病毒复制的作用。
用稳定过表达ALFA标签ZAP-S的Huh7细胞感染SARS-CoV-2,感染前1小时用干扰素处理或未处理,24小时后收集上清进行噬斑滴定。
确定ZAP-S是否直接作用于天然SARS-CoV-2 mRNA移码,无需辅因子。
在兔网状红细胞裂解物中翻译含SARS-CoV-2基因组12686-14190位和N端FLAG标签的报告mRNA,滴定ZAP-S浓度,Western blot检测0帧和–1帧产物。
验证ZAP-S与SARS-CoV-2移码RNA的直接结合及对RNA结构的影响。
用微量热泳动(MST)测定ZAP-S与野生型及突变移码RNA的结合亲和力;EMSA分析结合化学计量;DMS-MaPseq分析RNA结构变化。
研究ZAP-S是否改变移码RNA的折叠与再折叠机械特性。
将SARS-CoV-2 PK RNA(13475-13542位)与DNA手柄杂交并固定于聚苯乙烯珠,用光学镊子进行力-距离曲线测量,分析ZAP-S存在下的展开和再折叠。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞双荧光移码报告检测 | 转染后检测时间24小时;质粒共转染摩尔比1:1;以ECFP空载体为对照;每组3次独立实验 阅读提示:Methods流式细胞术部分及Fig. 2C图注 |
| ZAP-S过表达抑制病毒复制 | 感染剂量20,000 PFU/ml(MOI 0.03);感染后24小时收样;干扰素处理浓度IFN-β 500 U/ml、IFN-γ 500 U/ml、IFN-λ1 5 ng/ml;每组4次独立实验 阅读提示:Methods SARS-CoV-2感染部分及Fig. 2D图注 |
| 体外翻译滴定ZAP-S | RRL浓度75% v/v;模板mRNA约50 µg/ml;ZAP-S浓度0–3 µM;30°C孵育1小时;每个条件至少3次独立实验 阅读提示:Methods体外翻译检测部分及Fig. 3B、3C图注 |
| MST结合亲和力测定 | RNA浓度5 nM;ZAP-S浓度40 pM–2 µM;25°C;5% LED强度;中等MST功率;MST on-time 2.5 s;3次测量 阅读提示:Methods微量热泳动部分及Fig. 4C–H图注 |
| 光学镊子单分子分析 | ZAP-S浓度400 nM;拉伸速度0.05 µm/s;阱刚度0.31和0.24 pN/nm;数据采集频率78125 Hz;每条曲线来自指定分子数 阅读提示:Methods光学镊子数据收集与分析部分及Fig. 5D–K图注 |