建立成熟CD8+ T细胞特异性Tcf1/Lef1双敲除模型
在成熟外周CD8+ T细胞中特异性敲除Tcf1和Lef1,避免胸腺发育阶段的影响。
将hCD2-Cre与Tcf7fl/fl和Lef1fl/fl杂交,利用Rosa26GFP标记敲除细胞,分选GFP+TCRβ+CD8+CD62L+CD44lo-med naïve CD8+ T细胞。
Tcf1 and Lef1 provide constant supervision to mature CD8+ T cell identity and function by organizing genomic architecture.
包含体外细胞模型、Hi-C、ChIP-seq、DNase-seq、RNA-seq多组学及体内 adoptive transfer 和病毒感染功能验证
hCD2-Cre介导的Tcf7/Lef1条件性敲除小鼠成熟CD8+ T细胞 P14 TCR转基因CD8+ T细胞过继转移及LCMV-Armstrong感染模型
hCD2-Cre+Rosa26GFP Tcf7fl/fl Lef1fl/fl(dKO)与WT小鼠,分析GFP+TCRβ+CD8+CD62L+CD44lo-med naïve CD8+ T细胞 Hi-C使用3e Hi-C方法,4×10^6细胞/重复,WT和dKO各两个生物学重复 Tcf1 ChIP-seq使用重组全长Tcf1蛋白免疫制备的抗血清,以Tcf7−/− CD8+ T细胞为阴性对照 DNase-seq WT 3个重复、dKO 2个重复,每重复3×10^5细胞 Adoptive transfer:1×10^6 CTV标记P14细胞经尾静脉转移至CD45.1+受体,LCMV-Armstrong 1×10^6 PFU感染
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在成熟外周CD8+ T细胞中特异性敲除Tcf1和Lef1,避免胸腺发育阶段的影响。
将hCD2-Cre与Tcf7fl/fl和Lef1fl/fl杂交,利用Rosa26GFP标记敲除细胞,分选GFP+TCRβ+CD8+CD62L+CD44lo-med naïve CD8+ T细胞。
检测Tcf1/Lef1缺失对CD8+ T细胞基因组组织多个尺度的影响。
对WT和dKO naïve CD8+ T细胞进行3e Hi-C,分析A/B区室、TAD、染色质环和相互作用枢纽。
全基因组定位Tcf1结合位点并区分直接与间接结合。
使用重组全长Tcf1蛋白免疫制备的抗血清进行ChIP-seq,以Tcf7−/− CD8+ T细胞为阴性对照,MACS2鉴定峰,HOMER进行motif分析。
检测Tcf1/Lef1缺失对染色质开放状态和超级增强子活性的影响。
对WT和dKO naïve CD8+ T细胞进行DNase-seq和H3K27ac ChIP-seq,鉴定差异染色质可及性位点和超级增强子。
确定Tcf1/Lef1缺失对基因表达和免疫细胞谱系富集基因的影响。
对WT和dKO naïve CD8+ T细胞进行RNA-seq,鉴定差异表达基因,并使用免疫细胞谱系富集基因集进行GSEA。
将染色质可及性、超级增强子、染色质环和相互作用枢纽的变化与靶基因表达联系起来。
采用基因中心方法,将差异表达基因和差异谱系富集基因与差异染色质可及性位点、超级增强子和染色质相互作用枢纽关联。
评估Tcf1/Lef1缺失对CD8+ T细胞归巢、记忆表型、增殖和效应分化的影响。
将WT和dKO P14 CD8+ T细胞过继转移至CD45.1+受体,LCMV-Armstrong感染,检测CTV稀释、CD25诱导、效应细胞扩增和细胞因子产生。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养与刺激 | 佛波酯 | -- | -- |
| 离子霉素 | -- | -- | |
| 流式分析 | Foxp3/转录因子染色缓冲液套装 | eBiosciences, Thermo Fisher Scientific | -- |
| PE Annexin V凋亡检测试剂盒 | BD Biosciences | 559763 | |
| Hi-C | 蛋白酶抑制剂混合物 | MilliporeSigma | -- |
| CutSmart缓冲液 | NEB | -- | |
| CviQ I限制性内切酶 | NEB | -- | |
| CviA II限制性内切酶 | NEB | -- | |
| Bfa I限制性内切酶 | NEB | -- | |
| Dynabeads MyOne链霉亲和素C1磁珠 | Invitrogen, Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Covaris S2超声破碎仪 | Covaris | -- | |
| ChIP-seq | Q125超声破碎仪 | QSonica | -- |
| 抗H3K27ac抗体 | Abcam | ab4729 | |
| DNase-seq | End-It DNA修复试剂盒 | Lucigen | ER81050 |
| Klenow片段(3'->5'外切酶-) | NEB | -- | |
| RNA-seq | SMARTer超低输入RNA试剂盒 | Takara Bio | 634848 |
| 免疫沉淀与免疫印迹 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Life Technologies | -- |
| Dynabeads Protein G磁珠 | Life Technologies | -- | |
| 抗FLAG抗体(克隆M2) | Millipore/Sigma-Aldrich | F3165 | |
| 抗Tcf1抗体(C46C7) | Cell Signaling Technology | 2206 S | |
| 抗c-MYB多克隆抗体 | Proteintech | 17800-1-AP | |
| 抗CLL5抗体(R6G9) | ThermoFisher Scientific | 14-7085-82 | |
| 抗β-actin抗体(I-19) | Santa Cruz Biotechnology | -- | |
| 过继转移 | 细胞追踪染料Violet | ThermoFisher Scientific | C34557 |
| 组织消化 | II型胶原酶 | Life Technologies | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 成熟CD8+ T细胞特异性Tcf1/Lef1敲除 | hCD2-Cre+Rosa26GFP Tcf7fl/fl Lef1fl/fl与WT小鼠品系、6–12周龄、GFP+TCRβ+CD8+CD62L+CD44lo-med naïve细胞分选门 阅读提示:Methods的Mice和Cell isolation and flow cytometry小节 |
| Hi-C | 3e Hi-C酶切组合(CviQ I、CviA II、Bfa I各20单位)、4×10^6细胞/重复、WT和dKO各两个生物学重复、10 kb分辨率分析 阅读提示:Methods的High-resolution chromosome-conformation-capture (Hi-C)小节 |
| Tcf1 ChIP-seq | 抗Tcf1抗血清、Tcf7−/− CD8+ T细胞阴性对照、MACS2标准(fold enrichment ≥4,p < 10−5,FDR < 0.05)、Motif+阈值log odds ratio >7 阅读提示:Methods的Tcf1 ChIP-seq和Tcf1 ChIP-seq data processing小节 |
| DNase-seq和H3K27ac ChIP-seq | DNase-seq WT 3重复/dKO 2重复、3×10^5细胞/重复;H3K27ac ChIP-seq WT 4重复/dKO 3重复;edgeR FDR < 0.05 阅读提示:Methods的DNase-seq和H3K27ac ChIP-seq小节 |
| 过继转移和LCMV感染 | P14细胞数量(1×10^6或2×10^4)、CTV浓度10 μM、LCMV-Armstrong剂量(1×10^6 PFU静脉或2×10^5 PFU腹腔)、检测时间点(48-60小时或第8天) 阅读提示:Methods的Adoptive transfer and viral infection小节 |