Arpp19突变体体外磷酸化
制备S67/S71或S109/S113位点磷酸化的Arpp19突变体用于后续去磷酸化和结合实验。
使用纯化的GST-K72M Greatwall激酶和γ33P ATP或ATPγS对6His-Arpp19野生型及突变体进行体外磷酸化;使用6His-PKA催化亚基对S109/S113位点进行磷酸化。
The study of the determinants controlling Arpp19 phosphatase-inhibitory activity reveals an Arpp19/PP2A-B55 feedback loop.
体外卵提取物去磷酸化与结合实验、纯化PP2A-B55、卵母细胞显微注射及体内GVBD功能验证
非洲爪蟾卵母细胞 非洲爪蟾卵提取物(激酶失活间期提取物和CSF提取物) 纯化PP2A-B55磷酸酶
Arpp19突变体在激酶失活卵提取物中的S67/S71去磷酸化动力学(放射自显影,n=3) His-Arpp19 pulldown检测PP2A-B55结合(B55/Arpp19比值,n=3-8) Arpp19耗竭卵提取物中突变体恢复有丝分裂进入的能力(Gwl磷酸化和Cdk1 Tyr15去磷酸化) 非洲爪蟾卵母细胞注射50 ng Arpp19突变体后孕酮诱导的GVBD动力学 S109/S113去磷酸化对S67/S71磷酸化的依赖性(激酶失活提取物和纯化PP2A-B55)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
制备S67/S71或S109/S113位点磷酸化的Arpp19突变体用于后续去磷酸化和结合实验。
使用纯化的GST-K72M Greatwall激酶和γ33P ATP或ATPγS对6His-Arpp19野生型及突变体进行体外磷酸化;使用6His-PKA催化亚基对S109/S113位点进行磷酸化。
测量Arpp19突变体S67/S71或S109/S113的去磷酸化动力学,并验证PP2A-B55的参与。
将体外磷酸化的Arpp19野生型或突变体加入激酶失活间期卵提取物中,在指示时间点取样,通过放射自显影或磷酸化特异性抗体Western blot检测去磷酸化;在B55免疫耗竭提取物或加入纯化PP2A-B55的条件下重复实验。
检测Arpp19突变体与PP2A-B55的相互作用。
将6His-Arpp19野生型或突变体结合到HisPur Ni-NTA磁珠上,与CSF提取物孵育,洗涤后通过Western blot检测结合的B55和Arpp19水平。
评估Arpp19突变体恢复有丝分裂进入的能力。
在Arpp19耗竭的卵提取物中加入外源Arpp19突变体和K72M Gwl,通过Western blot检测Gwl磷酸化和Cdk1 Tyr15去磷酸化。
在体内验证Arpp19突变体对减数分裂恢复的影响。
将50 ng野生型或突变体His-Arpp19注射到前期I阻滞的卵母细胞中,1小时后加入37 μM孕酮,记录GVBD时间;收集卵母细胞裂解液用于Western blot检测Gwl和Cdk1 Tyr15磷酸化。
确定S109/S113去磷酸化是否受S67/S71磷酸化调控。
在激酶失活提取物中分别或同时加入PKA磷酸化(S109/S113)和Gwl磷酸化(S67/S71)的Arpp19,监测两个位点的去磷酸化;使用纯化PP2A-B55和B55耗竭提取物验证PP2A-B55的作用;通过两轮去磷酸化实验分析S67/S71对S109/S113去磷酸化的调控。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 免疫耗竭 | Protein G磁珠 | Life Technologies | -- |
| 蛋白纯化 | TALON Superflow金属亲和树脂 | -- | -- |
| Western blot | Protran硝酸纤维素膜 | Amersham | -- |
| Immobilon膜 | Millipore | -- | |
| 凝胶过滤层析 | HiLoad 16/60 Superdex 200凝胶过滤柱 | GE Healthcare, Life Science | -- |
| 离子交换层析 | MonoQ 5/50GL离子交换柱 | GE Healthcare, Life Science | -- |
| PP2A-B55结合实验 | HisPur Ni-NTA磁珠 | Life Technologies | -- |
| Western blot | 兔多克隆磷酸化Cdc2 (Tyr15)抗体 | Cell Signaling Technology | 9111 |
| 兔多克隆抗PP2A/B55δ抗体 | Cell Signaling Technology | 2290 | |
| 兔单克隆磷酸化PP1 Thr320抗体 | Abcam | 62334 | |
| 小鼠单克隆磷酸化Erk抗体 | Cell Signaling | 9106 S | |
| 兔多克隆抗磷酸化Arpp19 (S67)抗体 | Cell Signaling | 5240 S | |
| 兔多克隆抗PRC1抗体 | Santa Cruz | 376982 | |
| 山羊多克隆抗磷酸化PRC1 (T481)抗体 | Santa Cruz | 11768 | |
| 小鼠单克隆抗PP2A (C)亚基α抗体 | Merck Millipore | 05-42 | |
| 大鼠多克隆PP2A (A)亚基抗体 | Cell Signaling | 2260 | |
| 抗PP4c抗体 | Bethyl | A300-835A | |
| 抗PP6抗体 | Santa Cruz | 393294 | |
| 山羊抗大鼠IgG-辣根过氧化物酶(HRP)抗体 | Santa Cruz | 2006 | |
| HRP标记抗兔二抗 | Cell Signalling Technology | 7074 | |
| 驴抗山羊IgG-HRP抗体 | Santa Cruz | sc-2020 | |
| 卵母细胞注射 | Chorulon(人绒毛膜促性腺激素) | -- | -- |
| 卵母细胞分离 | 胶原酶 | -- | -- |
| 卵母细胞处理 | 孕酮 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 激酶失活卵提取物去磷酸化实验 | 提取物透析去除ATP;反应体系NaCl浓度300 mM;取样时间点0-40分钟;B55耗竭时补充0.5 μg非放射性预磷酸化Arpp19 阅读提示:Methods 'Dephosphorylation reactions in ATP-devoid interphase egg extracts'小节及图1B、2A、2B图注 |
| PP2A-B55结合实验 | 每管1 μg 6His-Arpp19;20 μl HisPur Ni-NTA磁珠;与25 μl CSF提取物在21°C孵育20分钟;RIPA缓冲液洗涤3次 阅读提示:Methods 'PP2A-B55-binding assays'小节及图1C、3A-C、4C、4E、5C-D、5F图注 |
| 卵母细胞显微注射和GVBD | 注射50 ng(10 nl)Arpp19蛋白;孕酮终浓度37 μM;注射后1小时加孕酮;GVBD通过色素重排评分 阅读提示:Methods 'Xenopus oocytes and egg extracts'小节及图3D-E图注 |
| S109/S113去磷酸化对S67/S71依赖性 | PKA磷酸化Arpp19 2 μl + Gwl磷酸化Arpp19 2 μl + 20 μl激酶失活提取物;取样时间点0-45分钟;B55耗竭和纯化PP2A-B55验证 阅读提示:Methods 'Dephosphorylation reactions in ATP-devoid interphase egg extracts'小节及图7A-E图注 |
| 体外磷酸化 | Arpp19终浓度0.5 μg/μl;GST-K72M Gwl终浓度45 ng/μl;ATP终浓度1 mM;反应缓冲液含2 mM MgCl2、100 mM NaCl、50 mM Tris pH 7.5;室温孵育1小时 阅读提示:Methods 'In vitro phosphorylation'小节 |