ZBP1而非RIPK1介导乳腺癌中的肿瘤坏死性凋亡

ZBP1 not RIPK1 mediates tumor necroptosis in breast cancer.

作者信息Jin Young Baik, Zhaoshan Liu, Delong Jiao, Hyung-Joon Kwon, Jiong Yan, Chamila Kadigamuwa, Moran Choe, Ross Lake, Michael Kruhlak, Mayank Tandon, Zhenyu Cai, Swati Choksi, Zheng-Gang Liu
PMID33976222
发布时间2021-05-11
DOI10.1038/s41467-021-23004-3

实验完整度

高

包含MVT-1、B16、MMTV-PyMT等多种小鼠模型及人乳腺癌细胞系,结合CRISPR敲除、点突变回补、体内药物处理及临床数据集分析,具备功能与机制验证。

主要模型

MVT-1小鼠乳腺癌原位移植模型 MMTV-PyMT转基因小鼠乳腺癌模型 B16小鼠黑色素瘤移植模型 人乳腺癌细胞系MCF-7和MDA-MB-231移植瘤

重点核对

ZBP1敲除(CRISPR)与RIPK1敲除(诱导型CRISPR)对肿瘤坏死和MLKL磷酸化的影响 葡萄糖剥夺(0.5 mM葡萄糖)处理36小时诱导肿瘤细胞坏死性凋亡,依赖ZBP1而不依赖RIPK1 ZBP1的Zα2结构域和RHIM A结构域点突变回补实验验证Zα2对GD诱导MLKL磷酸化和转移的重要性 NOXA敲低(siRNA/shRNA)减少GD诱导的胞质mtDNA释放和MLKL磷酸化 2DG(1 g/kg,腹腔注射,每日)处理抑制MVT-1肿瘤中MLKL磷酸化

摘要

肿瘤坏死常见于晚期实体瘤。我们曾报道坏死性凋亡在肿瘤坏死中起主要作用。尽管已鉴定出包括受体相互作用蛋白激酶1(RIPK1)在内的几个关键坏死性凋亡调节因子,但肿瘤发展过程中肿瘤坏死性凋亡的调控仍不清楚。在此,我们报告在临床前癌症模型中,Z-DNA结合蛋白1(ZBP1)而非RIPK1介导肿瘤发展过程中的肿瘤坏死性凋亡。我们发现ZBP1表达在坏死性肿瘤中显著升高。重要的是,ZBP1而非RIPK1的缺失阻断了肿瘤发展过程中的肿瘤坏死性凋亡并抑制转移。我们证明葡萄糖剥夺触发肿瘤细胞中ZBP1依赖的坏死性凋亡。葡萄糖剥夺导致线粒体DNA(mtDNA)释放到细胞质,mtDNA与ZBP1结合以BCL-2家族蛋白NOXA依赖的方式激活MLKL。因此,我们的研究揭示ZBP1是肿瘤坏死性凋亡的关键调节因子,并为控制肿瘤转移提供了潜在的药物靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肿瘤发展过程中肿瘤坏死性凋亡由什么分子介导,RIPK1是否参与其中?
核心机制
葡萄糖剥夺触发肿瘤细胞线粒体DNA释放至胞质,mtDNA与ZBP1结合,以NOXA依赖方式激活MLKL,从而诱导坏死性凋亡;该过程不依赖RIPK1,且ZBP1的Zα2结构域是关键。
主要证据
在MVT-1和B16等肿瘤模型中,ZBP1缺失而非RIPK1缺失减少肿瘤坏死和MLKL磷酸化、增加凋亡并抑制肺转移;GD在体外诱导ZBP1依赖的MLKL磷酸化和细胞死亡;Zα2突变体无法恢复ZBP1 KO细胞的坏死性凋亡和转移;NOXA敲低减少mtDNA释放和MLKL磷酸化。
研究意义
揭示ZBP1是肿瘤发展过程中肿瘤坏死性凋亡的关键调节因子,为控制肿瘤转移提供了潜在的药物靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

RIPK1在肿瘤坏死性凋亡中的作用验证

检验RIPK1是否是肿瘤发展过程中肿瘤坏死性凋亡所必需。

使用RIPK1抑制剂Nec-1处理MVT-1荷瘤小鼠,并构建RIPK1敲除MVT-1细胞进行原位移植,检测肿瘤坏死面积和MLKL磷酸化水平。

2

ZBP1在坏死性肿瘤中的表达分析

确定ZBP1是否在发生坏死的晚期肿瘤中高表达。

检测MVT-1、MMTV-PyMT、B16、LLC、MCF-7、MDA-MB-231等肿瘤中ZBP1、RIPK1、RIPK3的蛋白和mRNA表达,并分析TCGA人乳腺癌数据。

3

ZBP1对肿瘤坏死性凋亡和转移的功能验证

检验ZBP1缺失是否阻断肿瘤坏死性凋亡并抑制肺转移。

构建ZBP1敲除MVT-1细胞和B16细胞ZBP1敲低模型,进行原位移植,检测肿瘤坏死、MLKL磷酸化、凋亡标志物和肺转移灶。

4

葡萄糖剥夺诱导ZBP1依赖坏死性凋亡的体外验证

确定何种代谢应激触发ZBP1依赖的肿瘤细胞坏死性凋亡。

用葡萄糖剥夺、谷氨酰胺剥夺、缺氧或干扰素处理原代MVT-1和MMTV-PyMT肿瘤细胞,检测MLKL磷酸化和细胞死亡;并用5-AD上调ZBP1/RIPK3后验证ZBP1和RIPK1依赖性。

5

ZBP1结构域功能分析

确定ZBP1的Zα2和RHIM A结构域在GD诱导坏死性凋亡中的作用。

构建RHIM A和Zα2点突变ZBP1,转染ZBP1 KO MVT-1细胞,检测GD诱导的MLKL磷酸化;并将WT或突变体回补细胞植入小鼠,检测肿瘤坏死性凋亡和肺转移。

6

线粒体DNA释放及ZBP1结合验证

检验GD是否诱导线粒体DNA释放至胞质并与ZBP1结合,以及NOXA的作用。

通过共聚焦显微镜、胞质DNA PCR、ZBP1免疫沉淀后PCR检测mtDNA释放和结合;敲低NOXA或PUMA检测对mtDNA释放和MLKL磷酸化的影响;转染胞质DNA诱导MLKL磷酸化。

7

体内验证葡萄糖剥夺对肿瘤坏死性凋亡的作用

检验抑制糖酵解是否减少体内肿瘤坏死性凋亡。

MVT-1荷瘤小鼠接受2DG腹腔注射,检测肿瘤中MLKL磷酸化水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
坏死他汀-1Tocris bioscience--
5-氮杂-2′-脱氧胞苷SigmaA3656
2-脱氧-D-葡萄糖Sigma--
干扰素βR&D systems--
干扰素γR&D systems--
小鼠ZBP1抗体AdipoGenAG-20B-0010
小鼠磷酸化MLKL抗体Abcamab196436
MLKL抗体Abcam184718
人RIPK3抗体Abcamab72106
小鼠RIPK3抗体ProSci2283
RIPK1抗体BD Biosciences610459
Ki-67抗体Cell Signaling Technology12202S
STING抗体Cell Signaling Technology13647
PUMA抗体Cell Signaling Technology14570S
DNMT1抗体Cell Signaling Technology5032
cleaved Caspase-3抗体Cell Signaling Technology9664
Caspase-3抗体Cell Signaling Technology14220
HIF1-α抗体Cell Signaling Technology3434
人ZBP1抗体R&D systemsAF6309
ZBP1抗体Santa Cruz Biotechnologysc-271483
HA抗体Santa Cruz Biotechnologysc-80s
β-肌动蛋白抗体SigmaA3853
VECTASTIN ABC Elite试剂盒Vector Laboratories--
DAB底物试剂盒Vector Laboratories--
TUNEL试剂盒abcamab206386
基质胶Corning--
FITC BrdU流式试剂盒BD Pharmingen51-2354AK
碘化丙啶Invitrogen--
PicoGreenThermo Fisher Scientific--
MitoTracker Red CMXRosThermo Fisher Scientific--
ViewRNA™ ISH组织检测试剂盒Thermo Fisher19931
小鼠Cyb561探针Thermo FisherVB1-3029378
IraZolve-MitoCayman Chemical25910
Quick-DNA小量提取试剂盒ZYMO ResearchD3024
BisuFlash DNA亚硫酸氢盐转化试剂盒EpigentekP-1054-050
Qproteome线粒体分离试剂盒Qiagen--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
MVT-1原位移植模型
细胞接种数量2×10^6/小鼠,基质胶比例1:1,注射部位乳腺脂肪垫,小鼠品系FVB/NJ
阅读提示:Methods中Mice小节
Nec-1体内处理
剂量2.5 mg/kg,静脉注射,每周一次,从第3周至第5周
阅读提示:Methods中Mice小节及Fig. 1a图注
2DG体内处理
剂量1 g/kg,腹腔注射,每日一次,从第3周至第5周
阅读提示:Methods中Mice小节及Fig. 4e图注
葡萄糖剥夺体外处理
葡萄糖浓度0.5 mM,处理36小时(部分实验24或16小时),对照条件为常规培养基
阅读提示:Fig. 4a图注及Results中Glucose deprivation部分
ZBP1敲除细胞验证
sgRNA序列见Supplementary Table 1,选用无Cas9表达的克隆,敲除效率经DNA测序和Western blot验证
阅读提示:Methods中Generation of ZBP1 knockout cells by CRISPR小节及Supplementary Table 1
肺转移评估
尾静脉注射1×10^6细胞/小鼠,2周后收集肺;或原位移植5周后收集肺,每400 μm切片计数转移灶
阅读提示:Methods中Mice小节和Histology analysis小节