RIPK1在肿瘤坏死性凋亡中的作用验证
检验RIPK1是否是肿瘤发展过程中肿瘤坏死性凋亡所必需。
使用RIPK1抑制剂Nec-1处理MVT-1荷瘤小鼠,并构建RIPK1敲除MVT-1细胞进行原位移植,检测肿瘤坏死面积和MLKL磷酸化水平。
ZBP1 not RIPK1 mediates tumor necroptosis in breast cancer.
包含MVT-1、B16、MMTV-PyMT等多种小鼠模型及人乳腺癌细胞系,结合CRISPR敲除、点突变回补、体内药物处理及临床数据集分析,具备功能与机制验证。
MVT-1小鼠乳腺癌原位移植模型 MMTV-PyMT转基因小鼠乳腺癌模型 B16小鼠黑色素瘤移植模型 人乳腺癌细胞系MCF-7和MDA-MB-231移植瘤
ZBP1敲除(CRISPR)与RIPK1敲除(诱导型CRISPR)对肿瘤坏死和MLKL磷酸化的影响 葡萄糖剥夺(0.5 mM葡萄糖)处理36小时诱导肿瘤细胞坏死性凋亡,依赖ZBP1而不依赖RIPK1 ZBP1的Zα2结构域和RHIM A结构域点突变回补实验验证Zα2对GD诱导MLKL磷酸化和转移的重要性 NOXA敲低(siRNA/shRNA)减少GD诱导的胞质mtDNA释放和MLKL磷酸化 2DG(1 g/kg,腹腔注射,每日)处理抑制MVT-1肿瘤中MLKL磷酸化
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
检验RIPK1是否是肿瘤发展过程中肿瘤坏死性凋亡所必需。
使用RIPK1抑制剂Nec-1处理MVT-1荷瘤小鼠,并构建RIPK1敲除MVT-1细胞进行原位移植,检测肿瘤坏死面积和MLKL磷酸化水平。
确定ZBP1是否在发生坏死的晚期肿瘤中高表达。
检测MVT-1、MMTV-PyMT、B16、LLC、MCF-7、MDA-MB-231等肿瘤中ZBP1、RIPK1、RIPK3的蛋白和mRNA表达,并分析TCGA人乳腺癌数据。
检验ZBP1缺失是否阻断肿瘤坏死性凋亡并抑制肺转移。
构建ZBP1敲除MVT-1细胞和B16细胞ZBP1敲低模型,进行原位移植,检测肿瘤坏死、MLKL磷酸化、凋亡标志物和肺转移灶。
确定何种代谢应激触发ZBP1依赖的肿瘤细胞坏死性凋亡。
用葡萄糖剥夺、谷氨酰胺剥夺、缺氧或干扰素处理原代MVT-1和MMTV-PyMT肿瘤细胞,检测MLKL磷酸化和细胞死亡;并用5-AD上调ZBP1/RIPK3后验证ZBP1和RIPK1依赖性。
确定ZBP1的Zα2和RHIM A结构域在GD诱导坏死性凋亡中的作用。
构建RHIM A和Zα2点突变ZBP1,转染ZBP1 KO MVT-1细胞,检测GD诱导的MLKL磷酸化;并将WT或突变体回补细胞植入小鼠,检测肿瘤坏死性凋亡和肺转移。
检验GD是否诱导线粒体DNA释放至胞质并与ZBP1结合,以及NOXA的作用。
通过共聚焦显微镜、胞质DNA PCR、ZBP1免疫沉淀后PCR检测mtDNA释放和结合;敲低NOXA或PUMA检测对mtDNA释放和MLKL磷酸化的影响;转染胞质DNA诱导MLKL磷酸化。
检验抑制糖酵解是否减少体内肿瘤坏死性凋亡。
MVT-1荷瘤小鼠接受2DG腹腔注射,检测肿瘤中MLKL磷酸化水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | 坏死他汀-1 | Tocris bioscience | -- |
| 5-氮杂-2′-脱氧胞苷 | Sigma | A3656 | |
| 2-脱氧-D-葡萄糖 | Sigma | -- | |
| 细胞培养 | 干扰素β | R&D systems | -- |
| 干扰素γ | R&D systems | -- | |
| Western blot | 小鼠ZBP1抗体 | AdipoGen | AG-20B-0010 |
| 小鼠磷酸化MLKL抗体 | Abcam | ab196436 | |
| MLKL抗体 | Abcam | 184718 | |
| 人RIPK3抗体 | Abcam | ab72106 | |
| 小鼠RIPK3抗体 | ProSci | 2283 | |
| RIPK1抗体 | BD Biosciences | 610459 | |
| Ki-67抗体 | Cell Signaling Technology | 12202S | |
| STING抗体 | Cell Signaling Technology | 13647 | |
| PUMA抗体 | Cell Signaling Technology | 14570S | |
| DNMT1抗体 | Cell Signaling Technology | 5032 | |
| cleaved Caspase-3抗体 | Cell Signaling Technology | 9664 | |
| Caspase-3抗体 | Cell Signaling Technology | 14220 | |
| HIF1-α抗体 | Cell Signaling Technology | 3434 | |
| 人ZBP1抗体 | R&D systems | AF6309 | |
| ZBP1抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-271483 | |
| HA抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-80s | |
| β-肌动蛋白抗体 | Sigma | A3853 | |
| 免疫组化 | VECTASTIN ABC Elite试剂盒 | Vector Laboratories | -- |
| DAB底物试剂盒 | Vector Laboratories | -- | |
| TUNEL检测 | TUNEL试剂盒 | abcam | ab206386 |
| 细胞培养 | 基质胶 | Corning | -- |
| 流式细胞术 | FITC BrdU流式试剂盒 | BD Pharmingen | 51-2354AK |
| 碘化丙啶 | Invitrogen | -- | |
| 共聚焦显微镜 | PicoGreen | Thermo Fisher Scientific | -- |
| MitoTracker Red CMXRos | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| mtDNA FISH | ViewRNA™ ISH组织检测试剂盒 | Thermo Fisher | 19931 |
| 小鼠Cyb561探针 | Thermo Fisher | VB1-3029378 | |
| IraZolve-Mito | Cayman Chemical | 25910 | |
| 甲基化特异性PCR | Quick-DNA小量提取试剂盒 | ZYMO Research | D3024 |
| BisuFlash DNA亚硫酸氢盐转化试剂盒 | Epigentek | P-1054-050 | |
| 胞质分离 | Qproteome线粒体分离试剂盒 | Qiagen | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| MVT-1原位移植模型 | 细胞接种数量2×10^6/小鼠,基质胶比例1:1,注射部位乳腺脂肪垫,小鼠品系FVB/NJ 阅读提示:Methods中Mice小节 |
| Nec-1体内处理 | 剂量2.5 mg/kg,静脉注射,每周一次,从第3周至第5周 阅读提示:Methods中Mice小节及Fig. 1a图注 |
| 2DG体内处理 | 剂量1 g/kg,腹腔注射,每日一次,从第3周至第5周 阅读提示:Methods中Mice小节及Fig. 4e图注 |
| 葡萄糖剥夺体外处理 | 葡萄糖浓度0.5 mM,处理36小时(部分实验24或16小时),对照条件为常规培养基 阅读提示:Fig. 4a图注及Results中Glucose deprivation部分 |
| ZBP1敲除细胞验证 | sgRNA序列见Supplementary Table 1,选用无Cas9表达的克隆,敲除效率经DNA测序和Western blot验证 阅读提示:Methods中Generation of ZBP1 knockout cells by CRISPR小节及Supplementary Table 1 |
| 肺转移评估 | 尾静脉注射1×10^6细胞/小鼠,2周后收集肺;或原位移植5周后收集肺,每400 μm切片计数转移灶 阅读提示:Methods中Mice小节和Histology analysis小节 |