BBRF2及BBRF2-BSRF1复合物的重组表达与纯化
获得用于晶体学和生化分析的纯化蛋白。
在大肠杆菌中表达带N端6×His标签的BBRF2(全长及17–278)和GST标签的BSRF134–159及BSRF120–218,经Ni-NTA、GST亲和层析和SEC纯化;复合物按1:1摩尔比混合后经Superdex 200纯化。
Structure of Epstein-Barr virus tegument protein complex BBRF2-BSRF1 reveals its potential role in viral envelopment.
包含晶体结构解析、体外结合与突变验证、细胞内共定位及病毒基因组拷贝数功能验证等多层级证据。
HEK293 M81细胞(稳定携带重组EBV M81株) CNE2-EBV细胞(持续EBV感染的人鼻咽癌细胞) HeLa细胞(过表达BBRF2/BSRF1及糖蛋白) HEK293T细胞(共免疫沉淀)
BBRF2Δ(M205K)突变体在SEC和BLI中均不能与BSRF1Δ结合 TAT-P1肽在5 μM浓度下使CNE2-EBV细胞中EBV基因组拷贝数降低75% BSRF1Δ与BBRF2Δ的SPR结合KD在纳摩尔范围 SEC-RALS显示BBRF2Δ与BSRF1Δ形成1:1异源二聚体,BBRF2Δ与BSRF120–218形成2:2异源四聚体 共免疫沉淀验证BBRF2与MCP、BPLF1以及BSRF1与gH-gL、gB的结合
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得用于晶体学和生化分析的纯化蛋白。
在大肠杆菌中表达带N端6×His标签的BBRF2(全长及17–278)和GST标签的BSRF134–159及BSRF120–218,经Ni-NTA、GST亲和层析和SEC纯化;复合物按1:1摩尔比混合后经Superdex 200纯化。
揭示BBRF2新型折叠及与BSRF1相互作用的分子细节。
通过悬滴气相扩散法获得SeMet-BBRF2Δ晶体(分辨率1.6 Å)和经α-胰凝乳蛋白酶处理的BBRF2Δ-BSRF1Δ复合物晶体(分辨率3.1 Å),收集X射线衍射数据,用SAD法解析BBRF2Δ相位,用分子置换法解析复合物结构。
验证晶体结构中观察到的异源二聚体界面及关键残基。
用SEC、SEC-RALS、SPR和BLI分析BBRF2Δ与BSRF1Δ的结合亲和力与化学计量比;构建BBRF2 M205K/F209K及BSRF1 N59K/M63D等突变体,通过SEC和BLI检测其对复合物形成的影响。
验证破坏BBRF2-BSRF1界面的功能后果。
设计覆盖BSRF1 N-loop和αA/αB的5条肽(P1–P5),用BLI检测其与BBRF2Δ的结合及与BSRF1Δ的竞争;将TAT-P1加入CNE2-EBV细胞,用qPCR检测EBV基因组拷贝数。
确定复合物在细胞内的定位及其与衣壳和糖蛋白的关联。
在HeLa细胞中共转染BBRF2-Myc和BSRF1-Flag,用共聚焦免疫荧光观察其与高尔基体标志β-1,4-GALT和内质网标志Bip-RFP-KDEL的共定位;在HEK293T细胞中用共免疫沉淀验证BBRF2与MCP、BPLF1以及BSRF1与gH-gL、gB的结合。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 蛋白纯化 | 镍柱 | GE Healthcare | -- |
| HiLoad 16/60 Superdex 75柱 | GE Healthcare | -- | |
| HiLoad 16/60 Superdex 200柱 | GE Healthcare | -- | |
| GST融合PreScission蛋白酶 | -- | -- | |
| 结晶 | α-胰凝乳蛋白酶 | -- | -- |
| SPR分析 | Biacore T200 | Biacore | -- |
| NTA芯片 | GE | 28995043 | |
| BLI分析 | OctetRED生物层干涉系统 | FortéBio | -- |
| NTA传感器 | FortéBio | -- | |
| 链霉亲和素包被传感器 | -- | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| RPMI1640培养基 | GIBCO | -- | |
| 胎牛血清 | GIBCO | -- | |
| G418 | -- | -- | |
| 质粒转染 | Lipofectamine 2000 | Invitrogen | -- |
| Western blot | ANTI-FLAG® M2抗体 | Sigma | 3165 |
| DYKDDDK标签抗体 | CST | 14793 | |
| Myc标签单克隆抗体 | CST | 2278 | |
| HA标签单克隆抗体 | CST | C29F4/6E2 | |
| 辣根过氧化物酶标记的山羊抗小鼠/兔二抗 | CST | 7076/7071 | |
| 免疫荧光 | Alexa Fluor 488/647标记的山羊抗兔或小鼠 | Thermo | 11008/21205 |
| Alexa Fluor 549标记的山羊抗兔或小鼠 | CST | 8889/8890 | |
| 共免疫沉淀 | ANTI-FLAG® M2亲和凝胶 | Sigma | A2220 |
| 抗c-Myc标签亲和凝胶 | BioLegend | 9E10 | |
| 抗HA磁珠 | Pierce | 88836 | |
| Western blot | BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- |
| 聚偏二氟乙烯膜 | Millipore | -- | |
| qPCR | QIAamp DNA组织试剂盒 | QIAGEN | -- |
| 肽处理 | TAT-P1肽 | Sangon Bio | -- |
| 脂质体漂浮实验 | 200 nm孔径聚碳酸酯滤膜 | Avanti Polar Lipids, Inc. | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| BBRF2-BSRF1复合物结晶 | BBRF2Δ-BSRF1Δ复合物经α-胰凝乳蛋白酶1:1000 m/m于4 °C过夜处理;结晶条件为0.1 M magnesium acetate, 0.05 M MES pH 5.6, 20% MPD 阅读提示:Methods结晶小节及Table 1 |
| BLI结合亲和力分析 | His-BBRF2Δ固定浓度10 μg/ml;BSRF1Δ浓度范围及缓冲液组成(20 mM HEPES pH 7.0, 600 mM NaCl, 10% glycerol, 1 mM DTT) 阅读提示:Methods生物层干涉术小节及Fig. 4b, 4d |
| TAT-P1处理CNE2-EBV细胞 | 肽处理2小时,洗涤后培养基含2.5 mM sodium butyrate和20 ng/ml PMA诱导12小时,48小时后检测;TAT-P1浓度5 μM及其他浓度 阅读提示:Methods肽转染实验及EBV基因组拷贝数测定小节,Fig. 4f |
| 共免疫沉淀 | 使用ANTI-FLAG M2 Affinity Gel(A2220, Sigma)、Anti-c-Myc Tag Affinity Gel(9E10, BioLegend)或Anti-HA Magnetic Beads(88836, Pierce)4 °C过夜;裂解缓冲液含25 mM Tris-HCl pH 7.4, 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 1% NP40, 5% glycerol 阅读提示:Methods共免疫沉淀小节及Fig. 2a, 6a, 6c, 7b, 7c |
| 免疫荧光共定位 | 细胞转染后12–16小时固定;一抗及Alexa Fluor二抗种类;高尔基体标志β-1,4-GALT和内质网标志Bip-RFP-KDEL 阅读提示:Methods免疫荧光共聚焦显微镜小节及Fig. 5 |