SARS-CoV-2对I型干扰素应答的激活与逃逸

Activation and evasion of type I interferon responses by SARS-CoV-2.

作者信息Xiaobo Lei, Xiaojing Dong, Ruiyi Ma, Wenjing Wang, Xia Xiao, Zhongqin Tian, Conghui Wang, Ying Wang, Li Li, Lili Ren, Fei Guo, Zhendong Zhao, Zhuo Zhou, Zichun Xiang, Jianwei Wang
PMID32733001
发布时间2020-07-30
DOI10.1038/s41467-020-17665-9

实验完整度

高

含SARS-CoV-2感染Calu-3细胞、23种病毒蛋白荧光素酶筛选、ORF6突变体及Western blot与免疫荧光机制验证

主要模型

Calu-3气道上皮细胞系 HEK293T细胞系 Vero细胞系 SARS-CoV-2临床分离株感染

重点核对

SARS-CoV-2感染Calu-3细胞的MOI为0.5,于4、8、12、24 hpi检测病毒N基因RNA和TCID50滴度 IFN-β处理剂量100或500 U/ml预处理18 h后以MOI 0.5感染SARS-CoV-2 24 h 293T细胞转染500 ng质粒,转染24 h后SeV刺激12 h检测IFN-β启动子荧光素酶活性 IFN-β处理浓度800 U/ml或1000 U/ml,分别处理12 h或30 min检测ISRE/ISG56启动子或STAT1 ORF6突变体M1(49–52位)、M2(53–55位)、M3(56–61位)丙氨酸替换

摘要

COVID-19大流行对全球公共卫生构成前所未有的威胁。然而,COVID-19的病原体SARS-CoV-2与宿主天然免疫之间的相互作用尚知之甚少。本研究表明,SARS-CoV-2诱导明显但延迟的I型干扰素(IFN)应答。通过筛选23种病毒蛋白,我们发现SARS-CoV-2 NSP1、NSP3、NSP12、NSP13、NSP14、ORF3、ORF6和M蛋白抑制仙台病毒诱导的IFN-β启动子激活,而NSP2和S蛋白则发挥相反作用。进一步分析提示,ORF6同时抑制I型IFN的产生和下游信号传导,且ORF6的C端区域对其拮抗效应至关重要。最后,我们发现IFN-β处理可有效阻断SARS-CoV-2复制。总之,本研究表明SARS-CoV-2通过其结构蛋白和非结构蛋白扰乱宿主天然免疫应答,从而为SARS-CoV-2的致病机制提供了见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
SARS-CoV-2是否以及如何拮抗宿主I型干扰素的产生与信号传导,以及SARS-CoV-2对IFN治疗是否敏感。
核心机制
SARS-CoV-2多种结构与非结构蛋白调控IFN-β产生,其中ORF6通过其C端第53–61位氨基酸同时抑制IRF3激活(IFN产生)和STAT1核转位(IFN下游信号),而不影响STAT1磷酸化。
主要证据
Calu-3细胞感染SARS-CoV-2显示IFN-β和ISG56延迟诱导;23种病毒蛋白荧光素酶报告筛选发现NSP1、NSP3、NSP12、NSP13、NSP14、ORF3、ORF6和M抑制IFN-β启动子激活;ORF6剂量依赖性抑制RIG-IN、MDA5、MAVS、IRF3-5D诱导的IFN-β启动子及IFN-β诱导的ISRE/ISG56;免疫荧光显示ORF6阻止IRF3和STAT1核转位;IFN-β预处理剂量依赖性降低病毒RNA和滴度。
研究意义
研究揭示SARS-CoV-2通过结构蛋白和非结构蛋白扰乱宿主天然免疫应答,为理解SARS-CoV-2致病机制提供线索,并提示IFN治疗可能作为COVID-19治疗的选项。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

SARS-CoV-2感染与IFN应答动力学检测

确定SARS-CoV-2感染是否诱导I型IFN及干扰素刺激基因表达。

Calu-3细胞以MOI 0.5感染SARS-CoV-2,于4、8、12、24 hpi收集细胞RNA和上清,qRT-PCR检测病毒N基因、IFNB和ISG56 mRNA,TCID50检测病毒滴度;并与SeV感染和poly(I:C)转染比较动力学。

2

23种SARS-CoV-2病毒蛋白对IFN-β启动子激活的筛选

鉴定调控宿主天然免疫应答的SARS-CoV-2病毒蛋白。

克隆密码子优化的SARS-CoV-2基因(NSP1-10、NSP12-16、S、E、M、N、ORF3、ORF6、ORF7a、ORF8,NSP3为含木瓜样蛋白酶2结构域的片段),Western blot验证表达;293T细胞共转染病毒蛋白质粒与pIFN-β-Luc及pRL-TK,24 h后SeV刺激12 h检测荧光素酶活性;并以RIG-IN或MDA5共转染验证。

3

ORF6对IFN-β产生通路的定位

确定ORF6阻断天然免疫信号通路的作用节点。

ORF6剂量依赖性共转染RIG-IN、MDA5、MAVS或IRF3-5D,检测IFN-β启动子激活;免疫荧光检测SeV诱导的IRF3核转位及ORF6亚细胞定位。

4

ORF6 C端突变体功能定位

确定ORF6 C端对其拮抗IFN产生和信号传导的关键氨基酸区域。

构建ORF6-M1(49–52位丙氨酸替换)、M2(53–55位)、M3(56–61位)突变体,检测其对RIG-IN、MDA5、MAVS、IRF3-5D诱导IFN-β启动子激活、ISRE/ISG56启动子激活及STAT1核转位的影响。

5

ORF6对I型IFN下游信号及STAT1的影响

确定ORF6是否抑制IFN-β诱导的下游信号及STAT1活化。

共转染SARS-CoV或SARS-CoV-2 ORF6与ISRE或ISG56报告质粒,IFN-β处理后检测荧光素酶活性;Western blot检测STAT1磷酸化;免疫荧光检测STAT1核转位并以SOCS1作为对照。

6

IFN-β对SARS-CoV-2复制的抑制效果

评估SARS-CoV-2对IFN-β预处理的敏感性。

Calu-3细胞以100或500 U/ml重组人IFN-β预处理18 h,qRT-PCR验证ISG54/ISG56上调后,以MOI 0.5感染SARS-CoV-2 24 h,检测病毒RNA和TCID50滴度。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证病毒复制与IFN应答动力学
验证病毒蛋白表达
验证蛋白亚细胞定位与转位
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
Dulbecco改良Eagle培养基Invitrogen--
胎牛血清HyClone--
定点突变试剂盒Stratagene--
Flag抗体Sigma-AldrichF3165
β-actin抗体Sigma-AldrichA5441
HA抗体Sigma-AldrichH9658
STAT1抗体Cell Signaling technology9172
磷酸化STAT1抗体Thermo Fisher700349
仙台病毒抗体MBLPD029C1
双荧光素酶报告基因检测系统Promega--
IRDye 800标记IgG二抗Li-Cor Biosciences--
IRDye 680标记IgG二抗Li-Cor Biosciences--
IRF3抗体Cell Signaling technology11904
STAT1抗体Cell Signaling technology14994
磷酸化STAT1抗体Cell Signaling technology9167
钙联蛋白抗体Cell Signaling technology2679
GolgiB1抗体Sigma-AldrichHPA011008
DAPI核染料Sigma--
TRIzol试剂Invitrogen--
M-MLV逆转录酶Promega--
TB Green预混液Takara--
opti-MEM培养基----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
SARS-CoV-2感染Calu-3细胞
感染MOI 0.5、时间点4/8/12/24 hpi、BSL-3实验室条件、对照mock/SeV/poly(I:C)-HMW
阅读提示:Methods Cell lines and viruses;Fig. 1图注
病毒蛋白筛选报告基因实验
HEK293T细胞、500 ng质粒/24孔、转染24 h后SeV刺激12 h、三技术重复、至少重复两次
阅读提示:Methods Reporter assays;Fig. 2图注
ORF6突变体实验
ORF6-M1/M2/M3氨基酸替换位点(49–52、53–55、56–61)、质粒转染量、检测时间
阅读提示:Fig. 4a图注及Results ORF6 suppresses IRF3 activation via its C-terminus
IFN-β刺激下游信号实验
IFN-β浓度800 U/ml处理12 h或1000 U/ml处理30 min、细胞系HEK293T或Vero
阅读提示:Fig. 5、Fig. 6图注及Methods
IFN-β抑制SARS-CoV-2复制
IFN-β剂量100/500 U/ml、预处理18 h、感染MOI 0.5、感染后24 h、ISG54/ISG56验证
阅读提示:Fig. 8图注