小鼠肠道上皮CD47对体内黏膜修复至关重要

Epithelial CD47 is critical for mucosal repair in the murine intestine in vivo.

作者信息Michelle Reed, Anny-Claude Luissint, Veronica Azcutia, Shuling Fan, Monique N O'Leary, Miguel Quiros, Jennifer Brazil, Asma Nusrat, Charles A Parkos
PMID31676794
发布时间2019-11
DOI10.1038/s41467-019-12968-y

实验完整度

高

包含Cd47全敲、IEC特异性敲除及诱导敲除小鼠体内模型,DSS和活检损伤实验,体外原代肠类器官迁移实验及信号通路验证。

主要模型

Cd47−/−小鼠及Cd47f/f对照小鼠 VillinCre;Cd47f/f(Cd47ΔIEC)和VillinERT2-Cre;Cd47f/f(Cd47ERΔIEC)小鼠 小鼠小肠类器官来源的原代上皮2D单层 人LGR5+干细胞来源结肠类器官的2D上皮单层

重点核对

DSS处理方案:2.5% w/v DSS饮水,Cd47ΔIEC小鼠4天、Cd47ERΔIEC小鼠3天,随后5天正常饮水恢复,共3个循环 活检损伤模型:在麻醉小鼠降结肠背侧制造5–7个活检伤口,于伤后24和72小时量化伤口面积 抗体中和实验:miap301或miap410腹腔注射400 µg,或伤口局部注射10 µg;体外使用10 µg/ml B6H12.2或miap301/miap410处理24小时 CD47诱导敲除:8周龄Cd47ERΔIEC小鼠连续5天腹腔注射1 mg/100 µl他莫昔芬,末次注射后15天使用 基因型对照:Cd47f/f同窝对照,每组5–6只小鼠,至少两次独立实验

摘要

CD47是一种广泛表达的跨膜糖蛋白,调节炎症反应和组织修复。本研究表明,用抗CD47抗体处理的正常小鼠以及Cd47缺失小鼠的肠道黏膜伤口愈合受损。此外,肠道上皮细胞(IEC)特异性缺失CD47不会自发诱发免疫介导的肠道屏障破坏,但会导致活检诱导的结肠伤口或葡聚糖硫酸钠(DSS)诱导的黏膜损伤后的黏膜修复缺陷。使用CD47缺陷的小鼠结肠IEC原代培养物或经CD47阻断抗体处理的人结肠类器官衍生IEC进行的体外分析表明,在伤口愈合实验中上皮细胞迁移受损。CD47缺失后的伤口修复缺陷与上皮β1整合素和黏着斑信号减少,以及血小板反应蛋白-1和TGF-β1减少有关。这些结果表明IEC表达的CD47在调节黏膜修复中起关键作用,并提示治疗性靶向CD47可能继发伤口愈合改变的重要考虑。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CD47在肠道黏膜损伤后的修复过程中是否发挥作用,以及上皮细胞表达的CD47是否直接调控黏膜伤口愈合。
核心机制
上皮CD47通过与β1整合素相互作用促进FAK-Src-p130Cas依赖的黏着斑形成和上皮细胞迁移,并正向调节TSP-1和活性TGF-β1水平以促进黏膜修复。
主要证据
Cd47−/−小鼠、抗CD47抗体处理小鼠及IEC特异性Cd47敲除小鼠均显示活检伤口闭合和DSS损伤后修复受损;体外小鼠和人原代上皮单层划痕实验中CD47缺失或阻断抑制迁移;PLA显示CD47与β1整合素靠近,CD47缺失降低β1整合素、p-SrcY416、p-FAKY397/Y861、p130CasY410及TSP-1、成熟TGF-β1和p-Smad2/3水平。
研究意义
揭示IEC表达的CD47在黏膜修复中的关键作用,并提示临床治疗性靶向CD47可能继发伤口愈合改变,尤其在接受胃肠道手术的癌症患者中。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体内黏膜损伤修复模型建立与CD47功能验证

验证CD47缺失或阻断是否损害肠道黏膜伤口愈合。

利用微型视频内镜和活检钳在小鼠降结肠背侧制造5–7个黏膜伤口,于伤后24和72小时测量伤口面积;比较Cd47−/−小鼠、腹腔或局部注射抗CD47抗体miap301/miap410的C57Bl/6小鼠与对照组的伤口闭合。

2

IEC特异性CD47敲除小鼠的构建与基线表型分析

确定上皮细胞特异性CD47缺失是否影响肠道稳态及是否自发引起免疫介导损伤。

将Cd47f/f小鼠与VillinCre或VillinERT2-Cre小鼠杂交获得Cd47ΔIEC和Cd47ERΔIEC小鼠;通过免疫荧光和Western blot验证IEC中CD47缺失;检测体重、肠道通透性、组织学及固有层免疫细胞组成。

3

IEC特异性CD47缺失对黏膜伤口修复的影响

验证上皮CD47缺失是否直接导致黏膜伤口闭合缺陷。

对Cd47ΔIEC和诱导型Cd47ERΔIEC小鼠实施活检诱导的结肠黏膜伤口,于伤后24和72小时量化伤口闭合;伤后3天取材进行E-Cadherin、Villin和Ki67染色,评估再上皮化和增殖。

4

慢性DSS诱导结肠炎及黏膜修复评估

在第二种黏膜损伤模型中验证CD47缺失对黏膜修复的影响。

对Cd47ΔIEC和Cd47ERΔIEC小鼠给予三个循环的2.5% DSS饮水后正常饮水恢复,每日评估疾病活动指数(DAI),实验终点取结肠进行H&E染色和损伤/溃疡面积评分,并检测PMN浸润。

5

体外上皮细胞迁移功能验证

验证CD47缺失或阻断是否直接影响上皮细胞迁移而非增殖。

由小鼠CD47(+/−)肠类器官或人结肠类器官制备2D上皮单层,进行划痕伤口实验,用活细胞显微成像定时记录伤口闭合;并用CD47阻断抗体或非阻断抗体处理人及小鼠单层。

6

CD47与β1整合素相互作用及下游信号检测

阐明CD47调控上皮迁移的分子机制。

用原位邻近连接实验(PLA)检测小鼠结肠中CD47与β1整合素的靠近;Western blot检测新鲜分离IEC和划伤后单层中β1整合素、p-SrcY416、p-FAKY397/Y861、p130CasY410及总蛋白水平;免疫荧光检测伤口旁上皮pFAKY861与β1整合素共定位及板状伪足黏着斑。

7

CD47对TSP-1/TGF-β1通路及胶原沉积的调控检测

验证CD47缺失是否影响TSP-1、TGF-β1活化及下游Smad信号和胶原沉积。

Western blot检测新鲜分离IEC中TSP-1、TGF-β1成熟/前体形式、p-Smad2/3和总Smad2/3;Masson三色染色检测活检伤口和慢性DSS结肠炎后的胶原沉积。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
他莫昔芬SigmaT5648
玉米油SigmaC8267
葡聚糖硫酸钠Affymetrix14489
miap301抗CD47抗体BioXCellBE0270
miap410抗CD47抗体BioXCellBE0283
纯化大鼠IgG2A(克隆2A3)BioXCellBP0089
抗CD47抗体(克隆B6H12.2)ATCC hybridoma--
抗小鼠CD47抗体(克隆2D3)Thermofisher Scientific14-0478-82
抗β1整合素抗体(克隆KMI6)AbCamab95623
抗血小板反应蛋白-1抗体AbCamab85762
抗Ki67抗体AbCamab15580
抗磷酸化FAK(Tyr397)抗体Cell Signaling Technology3283
抗FAK抗体Cell Signaling Technology3285
抗磷酸化p130CAS(Tyr410)抗体Cell Signaling Technology4011
抗p130CAS抗体(E1L9H)Cell Signaling Technology13846
磷酸化Src(Tyr416)抗体(克隆D49G4)Cell Signaling Technology6943
抗Src抗体(克隆32G6)Cell Signaling Technology2123
磷酸化SMAD2(Ser465/Ser467,克隆E8F3R)抗体Cell Signaling Technology18338
磷酸化Smad3(Ser423/425,克隆C25A9)抗体Cell Signaling Technology9520
抗Smad2/3抗体Cell Signaling Technology5678
抗磷酸化FAK(Tyr861)抗体Millipore07-832
抗TGF-β1抗体(克隆7F6)Novus BiologicalsNBP2-22114
抗小鼠CD47抗体R&D systemsAF1866
抗小鼠E-钙黏蛋白抗体R&D systemsAF748
大鼠抗小鼠β1整合素抗体R&D systemsMAB2405
抗β-肌动蛋白抗体(克隆AC-15)Sigma AldrichA5441
抗GAPDH抗体Sigma AldrichG9545
抗Villin抗体GeneTexGTX109940
PerCP抗小鼠CD45抗体(克隆30-F11)BD Pharmingen557235
PE-Cy7抗小鼠CD3e抗体(克隆145-2C11)BD Pharmingen552774
BV421抗小鼠Siglec F抗体(克隆E50-2440)BD Pharmingen562681
BV510抗小鼠CD4抗体(克隆RM4-5)BD Pharmingen563106
PE-Cyanine7抗小鼠F4/80抗体(克隆BM8)Invitrogen25-4801-82
PE抗小鼠CD19抗体(克隆1D3)Invitrogen12-0193-83
PE抗小鼠CD11b抗体(克隆M1/70)InvitrogenRM2804
APC抗小鼠CD11c抗体(克隆N418)Invitrogen17-0114-82
PE抗CD11b抗体(克隆M1/70)Invitrogen12-0112-83
FITC抗CD8a抗体(克隆53-6.7)Invitrogen11-0081-85
抗人β1整合素抗体(克隆HUTS-21)BD Pharmingen556048
抗小鼠Ly6G抗体(克隆1A8)Biolegend127602
PE/Cy7抗小鼠Ly6C抗体(克隆HK1.4)Biolegend128018
PerCP抗小鼠Ly6G抗体(克隆1A8)Biolegend127654
Alexa Fluor 555鬼笔环肽InvitrogenA34055
DAPIInvitrogenD1306
Zenon-Alexa Fluor 488小鼠IgG2a标记试剂盒Thermofisher ScientificZ25102
DuoLink PLA探针和试剂Sigma Aldrich--
Anti-Goat plus/DUO92003Sigma AldrichDUO92003
probemaker minus/DUO92010Sigma AldrichDUO92010
Matrigel基质胶BD Biosciences--
重组人EGFR&D Systems--
抗生素-抗真菌剂(100×)Corning--
z-4-羟基他莫昔芬Sigma AldrichH7904
IV型胶原SigmaC5533
胰蛋白酶/EDTA(0.05%胰蛋白酶/0.5 mM EDTA)Invitrogen--
Advanced DMEM/F12培养基Invitrogen--
SB202190StemCell Tech--
A83-01StemCell Tech--
Liberase TMRoche Applied Science--
DNase ISigma Aldrich--
Polymorphprep密度梯度分离液Cosmo Bio Usa IncAXS1114683
Clarity Western ECL底物BioRad--
BioRad DC蛋白定量试剂BioRad--
Pro-Long抗淬灭封片剂Thermo Fisher--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
慢性DSS诱导结肠炎及修复
DSS浓度2.5% w/v、分子量40 kDa;Cd47ΔIEC每循环DSS 4天+水5天,Cd47ERΔIEC每循环DSS 3天+水5天;共3个循环;Cd47ERΔIEC在末次他莫昔芬后2周开始DSS;每组5–6只小鼠,两次独立实验。
阅读提示:Methods 'Dextran sulfate sodium treatment'及Fig. 4图注
活检诱导黏膜伤口模型
每只小鼠5–7个伤口,位于降结肠背侧;麻醉剂氯胺酮100 mg/kg+赛拉嗪5 mg/kg;伤后24和72小时量化伤口面积;每组5–6只小鼠,两次独立实验。
阅读提示:Methods 'Wound healing assays'及Fig. 1、Fig. 3图注
抗CD47抗体体内中和
腹腔注射400 µg或伤口局部注射10 µg miap301/miap410,对照为rat IgG2A(克隆2A3);局部注射在伤后24小时进行;每组5只小鼠,两次独立实验。
阅读提示:Methods 'Wound healing assays'及Fig. 1图注
CD47诱导敲除
8周龄Cd47ERΔIEC小鼠连续5天腹腔注射1 mg/100 µl他莫昔芬(溶于玉米油),末次注射后15天使用;验证IEC中CD47缺失。
阅读提示:Methods 'Mice'及Fig. 2图注
体外上皮单层划痕实验
小鼠CD47敲除用1 µM 4-羟基他莫昔芬处理类器官72小时;人单层用10 µg/ml IgG、B6H12.2或2D3处理24小时;小鼠单层用10 µg/ml rat IgG2A、miap301或miap410处理24小时;划痕后10分钟间隔成像,24小时量化;三次独立实验,每组三个重复。
阅读提示:Methods 'Wound healing assays'及Fig. 5图注