构建中间体相互作用组
鉴定中间体蛋白质相互作用网络
对10个中间体关键组分进行亲和纯化-质谱(AP-MS),在HeLa细胞中表达GFP/Flag/AcGFP标签的诱饵蛋白,同步化至末期,纯化中间体并进行质谱鉴定。
The midbody interactome reveals unexpected roles for PP1 phosphatases in cytokinesis.
包含体外细胞模型、酵母表达、体外磷酸酶实验及多种功能验证
HeLa细胞 hTERT RPE-1细胞 HeLa S3细胞 酿酒酵母表达系统
siRNA敲低PP1β、MYPT1后多核细胞比例分别增加4.2倍和7.2倍 MYPT1敲低导致MKLP1 S708磷酸化显著增加 PP1β在体外去磷酸化MKLP1 S708,VQF基序突变降低结合与去磷酸化效率 MKLP1AQA突变体 rescue 内源MKLP1敲低的效果显著低于野生型 GFP-MKLP1 pull-down显示MYPT1敲低减少MKLP1与PP1β及PRC1的相互作用
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定中间体蛋白质相互作用网络
对10个中间体关键组分进行亲和纯化-质谱(AP-MS),在HeLa细胞中表达GFP/Flag/AcGFP标签的诱饵蛋白,同步化至末期,纯化中间体并进行质谱鉴定。
确定CIT-K在胞质分裂中的相互作用变化及招募作用
利用稳定表达CIT-K::AcGFP的HeLa细胞进行AP-MS,比较不同细胞周期阶段的相互作用组;用SILAC定量MS比较CIT-K敲低后中间体蛋白质组变化。
确定PP1家族磷酸酶在胞质分裂中的作用
对PP1α、PP1β、PP1γ和MYPT1进行siRNA敲低,检测多核细胞比例、中间体定位和蛋白质磷酸化水平。
研究MYPT1-PP1β对中心纺锤体和中间体结构的调控
MYPT1敲低后,通过免疫荧光、活细胞延时成像和电子显微镜分析中心纺锤体稳定性、中间体组装和胞质分裂完成情况。
确定PP1β是否直接去磷酸化MKLP1 S708
体外磷酸酶实验:Aurora B磷酸化GST-MKLP1(620-858)后,与MBP-PP1β或催化失活突变体孵育,检测S708磷酸化;酵母双杂交和pull-down验证相互作用;构建MKLP1AQA突变体进行rescue实验。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 分子克隆 | Gateway技术 | ThermoFisher | -- |
| QuikChange Lightning定点突变试剂盒 | Agilent | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Sigma | -- |
| 胎牛血清 | Sigma | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Invitrogen | -- | |
| RNA干扰 | Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Invitrogen | -- |
| 细胞转染 | Neon转染系统 | ThermoFisher | -- |
| FuGENE转染试剂 | -- | -- | |
| 细胞同步化 | 胸苷 | Sigma-Aldrich | -- |
| 诺考达唑 | Sigma-Aldrich | -- | |
| MG132 | Sigma | -- | |
| 中间体纯化 | 紫杉醇 | Sigma-Aldrich | -- |
| Roche Complete蛋白酶抑制剂 | Roche | -- | |
| 亲和纯化 | GFP-Trap_MA磁珠 | ChromoTek | -- |
| 质谱分析 | NuPAGE LDS 4×上样缓冲液 | Invitrogen | -- |
| NuPAGE Novex 4–12% Bis-Tris蛋白质凝胶 | Invitrogen | -- | |
| 考马斯亮蓝G-胶体浓缩液 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 测序级胰蛋白酶 | Roche | -- | |
| LTQ Orbitrap Velos质谱仪 | Thermo Scientific | -- | |
| Ultimate 3000快速分离液相纳米超高压HPLC系统 | Dionex | -- | |
| PepMap C18预柱 | Dionex | -- | |
| PepMap分析柱 | Dionex | -- | |
| 荧光显微镜 | 含DAPI的VECTASHIELD封片剂 | Vector Laboratories | -- |
| Zeiss Axiovert落射荧光显微镜 | Zeiss | -- | |
| Western blot | 小鼠单克隆抗α-微管蛋白抗体(克隆DM1A) | Sigma | T9026 |
| 兔多克隆抗β-微管蛋白抗体 | Abcam | ab6046 | |
| 小鼠单克隆抗cyclin B1抗体(克隆GNS1) | Santa Cruz | sc-245 | |
| 小鼠单克隆抗PP1α抗体(克隆G-4) | Santa Cruz | sc-271762 | |
| 小鼠单克隆抗PP1β抗体(克隆A-6) | Santa Cruz | sc-365678 | |
| 小鼠单克隆抗PP1γ抗体(克隆A-4) | Santa Cruz | sc-515943 | |
| 小鼠单克隆抗CIT-K抗体 | BD Transduction Laboratories | 611377 | |
| 小鼠单克隆抗MYPT1抗体(克隆C-6) | Santa Cruz | sc-514261 | |
| 兔多克隆抗Aurora A抗体 | Abcam | ab1287 | |
| 兔多克隆抗TPX2抗体 | Novus Biologicals | NB500-179 | |
| 兔多克隆抗KIF14抗体 | Bethyl Laboratories | A300-233A | |
| 兔多克隆抗MKLP1抗体(克隆N19) | Santa Cruz Biotechnology | sc-867 | |
| 兔多克隆抗磷酸化MKLP1 pS708抗体 | -- | -- | |
| 兔多克隆抗三磷酸化CHMP4C pS210 pS214 pS215抗体 | -- | -- | |
| 小鼠单克隆抗Aurora B抗体(克隆AIM-1) | BD Transduction Laboratories | 611082 | |
| 小鼠单克隆抗PRC1抗体(克隆C-1) | Santa Cruz | sc-376983 | |
| 兔单克隆抗磷酸化PRC1 pT481抗体 | Abcam | ab62366 | |
| 兔多克隆抗磷酸化组蛋白H3 pS10抗体 | Merck | 06-570 | |
| 兔多克隆抗单磷酸化MRLC pS19抗体 | Cell Signaling Technology | 3671 | |
| 兔多克隆抗双磷酸化MRLC pT18 pS19抗体 | Cell Signaling Technology | 3674 | |
| 山羊多克隆抗RacGAP1抗体 | Abcam | ab2270 | |
| 小鼠单克隆抗GST抗体 | Abcam | ab92 | |
| 小鼠单克隆抗MBP抗体 | NEB | E8032 | |
| 蛋白质纯化 | 淀粉糖树脂 | New England Biolabs | -- |
| 谷胱甘肽Sepharose 4B | GE Healthcare | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 中间体相互作用组构建 | 诱饵蛋白标签类型、细胞系、同步化阶段、AP-MS重复次数 阅读提示:Methods中Affinity purification (AP)小节及Table 1 |
| PP1磷酸酶敲低 | siRNA序列、转染试剂、敲低时间(48小时)、多核细胞计数标准 阅读提示:Methods中Cell culture and treatments小节及Fig. 4h图注 |
| MKLP1去磷酸化验证 | MKLP1AQA突变位点(VQF786-788)、体外磷酸酶反应时间(10-60分钟)、酶量(200 ng) 阅读提示:Methods中In vitro GST pull-down and phosphatase assays小节及Fig. 7f图注 |
| 活细胞延时成像 | 细胞系(HeLa Kyoto表达GFP::tubulin和H2B::mCherry)、拍摄间隔(2分钟)、z轴切片数(14)、细胞计数 阅读提示:Methods中Time-lapse imaging小节及Fig. 6b,c图注 |