工程化FraC纳米孔尺寸
获得不同内径的FraC纳米孔以适配不同长度肽段的检测
通过W112S和W116S突变削弱纳米孔与脂质界面的相互作用,富集II型和III型纳米孔,并利用Ni-NTA亲和层析或His-Trap色谱分离不同寡聚体类型;通过单通道电生理记录测定电导和离子选择性,结合分子模型预测孔径。
FraC nanopores with adjustable diameter identify the mass of opposite-charge peptides with 44 dalton resolution.
包含纳米孔电生理单通道记录、多种工程化突变体表征、多肽电流阻断检测及分子模型构建,具备功能与机制验证
Wt-FraC I型纳米孔 W116S-FraC II型纳米孔 W112S-W116S-FraC III型纳米孔 血管紧张素等多肽分析物
纳米孔类型:Wt-FraC、W116S-FraC、W112S-W116S-FraC在pH 7.5和4.5下的I/II/III型分布比例 电生理条件:1 M KCl、0.1 M柠檬酸、pH 4.5或3.8,施加电压−30 mV(I/II型)或−50 mV(III型) 肽段添加方式:肽段加入cis侧,在负偏压(trans)下记录电流阻断 电流阻断指标:排除电流百分比Iex% = [(IO−IB)/IO]×100,由至少三次独立重复计算标准差 分辨率验证:血管紧张素II与血管紧张素A(相差44 Da)在Iex%图中形成可区分峰
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得不同内径的FraC纳米孔以适配不同长度肽段的检测
通过W112S和W116S突变削弱纳米孔与脂质界面的相互作用,富集II型和III型纳米孔,并利用Ni-NTA亲和层析或His-Trap色谱分离不同寡聚体类型;通过单通道电生理记录测定电导和离子选择性,结合分子模型预测孔径。
验证工程化纳米孔能否区分不同序列和质量的肽段
将血管紧张素I、II、III、IV加入cis侧,在−30 mV下记录单通道电流阻断,计算Iex%并绘制电流幅值标准差密度图;在混合物中同时检测四种肽段。
检验纳米孔对仅相差一个氨基酸(44 Da)的肽段的分辨能力
比较血管紧张素II(DRVYIHPF)与血管紧张素A(ARVYIHPF)的Iex%信号,并在混合物中区分两者;同时测试相差34 Da的血管紧张素III与Ile7血管紧张素III。
验证更小孔径纳米孔能否检测II型纳米孔无法采样的小肽
使用W112S-W116S-FraC III型纳米孔检测血管紧张素IV、血管紧张素4–8、endomorphin I、Met5脑啡肽和亮氨酸脑啡肽等小肽的电流阻断。
检验不同化学组成肽段在特定pH下电流阻断与质量的关系
在pH 4.5下测试多种肽段的Iex%与质量/体积关系,发现带负电的c-Myc 410–419和NLP-3偏离拟合;进一步在pH 3.8下测试,观察所有肽段Iex%与质量成比例。
评估肽段是否穿过纳米孔到trans侧,避免重复检测
在不同pH和电压下测定c-Myc 410–419的停留时间τoff的电压依赖性,推断肽段返回cis或转位至trans。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 肽段处理 | 内皮素1 | Sigma-Aldrich | 117399-94-7 |
| 内皮素2 | Sigma-Aldrich | 123562-20-9 | |
| 猪强啡肽A | Sigma-Aldrich | 80448-90-4 | |
| 血管紧张素I | Sigma-Aldrich | 70937-97-2 | |
| 血管紧张素II | Sigma-Aldrich | 4474-91-3 | |
| c-Myc 410-419肽 | Sigma-Aldrich | M2435 | |
| Asn1-Val5-血管紧张素II | Sigma-Aldrich | 20071-00-5 | |
| Ile7血管紧张素III | Sigma-Aldrich | A0911 | |
| 亮氨酸脑啡肽 | Sigma-Aldrich | L9133 | |
| 5-甲硫氨酸脑啡肽 | Sigma-Aldrich | 82362-17-2 | |
| 脂质膜制备 | 十六烷 | Sigma-Aldrich | 544-76-3 |
| 缓冲液配制 | Trizma®盐酸盐 | Sigma-Aldrich | 1185-53-1 |
| Trizma®碱 | Sigma-Aldrich | 77-86-1 | |
| 纳米孔寡聚化 | N,N-二甲基十二烷基胺N-氧化物 | Sigma-Aldrich | 1643-20-5 |
| 肽段处理 | 前血管紧张素原1–14 | Phoenix Pharmaceuticals | 002-45 |
| 血管紧张素1–9 | Phoenix Pharmaceuticals | 002-02 | |
| 血管紧张素A | Phoenix Pharmaceuticals | 002-36 | |
| 血管紧张素III | Phoenix Pharmaceuticals | 002-31 | |
| 血管紧张素IV | Phoenix Pharmaceuticals | 002-28 | |
| NLP-3(66–75)肽 | Phoenix Pharmaceuticals | 076-36 | |
| 脂质膜制备 | 1,2-二植烷酰-sn-甘油-3-磷酸胆碱 | Avanti Polar Lipids | 850356P |
| 鞘磷脂(猪脑) | Avanti Polar Lipids | 860062 | |
| 缓冲液配制 | 柠檬酸 | ACROS | 77-92-9 |
| 纳米孔寡聚化 | 正十二烷基β-D-麦芽糖苷 | Glycon Biochemical EmbH | 69227-93-6 |
| 蛋白纯化 | Ni-NTA磁珠 | Qiagen | -- |
| Micro Bio-spin柱 | Bio-Rad | -- | |
| 蛋白定量 | Nano-drop 2000分光光度计 | Thermo Scientific | -- |
| 蛋白纯化 | Branson Sonifier 450超声破碎仪 | Branson | -- |
| SDS-PAGE | InstantBlueTM考马斯染色液 | Expdedeon | -- |
| 凝胶成像 | Gel DocTM凝胶成像仪 | Bio-Rad | -- |
| 突变体制备 | REDTaq® ReadyMix™预混液 | Sigma-Aldrich | -- |
| QIAquick PCR纯化试剂盒 | Qiagen | -- | |
| Phire II酶 | Thermo Scientific | -- | |
| 电生理记录 | Axopatch 200B放大器 | Axon Instrument | -- |
| Digidata 1440模数转换器 | Axon Instrument | -- | |
| 色谱分离 | Histrap HP 1 mL柱 | General Electric | -- |
| ÄKTA pure快速蛋白液相色谱系统 | General Electric | -- | |
| PD SpinTrap G-25柱 | General Electric | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 纳米孔类型与孔径 | Wt-FraC(I型)、W116S-FraC(II型)、W112S-W116S-FraC(III型)的寡聚体组成及内径(1.6、1.1、0.84 nm) 阅读提示:Results“Engineering the size of FraC nanopores”及Fig. 1b、1g |
| 电生理缓冲液与电压 | pH 4.5使用1 M KCl、0.1 M柠檬酸和180 mM Tris base;pH 7.5使用1 M NaCl和15 mM Tris;II型施加−30 mV,III型施加−50 mV 阅读提示:Methods“Electrophysiology measurement and data analysis” |
| 肽段加入侧与采集参数 | 肽段加入cis侧,采样率50 kHz,10 kHz Bessel滤波,事件短于100 µs被忽略 阅读提示:Methods“Electrophysiology measurement and data analysis” |
| 质量识别pH条件 | pH 3.8条件下Iex%与肽段质量成比例,且信号变异性较高需严格控制pH 阅读提示:Results“A nanopore mass spectrometer for peptides”及Fig. 5、Supplementary Note 3 |
| 重复数与统计 | 电生理数据误差棒为标准差,来自至少三次独立重复 阅读提示:Fig. 1–5图注 |