患者临床与病理鉴定
确认患者表型及肌肉病理特征
对两个无关家系患者进行临床评估、肌肉活检H-E、Masson trichrome、ATPase pH4.3、TEM及肌肉MRI。
Recessive mutations in muscle-specific isoforms of FXR1 cause congenital multi-minicore myopathy.
含患者样本、原代肌细胞、两种CRISPR小鼠模型及条件敲除小鼠,并进行组织病理、蛋白定位、RNA-seq和功能验证
患者原代肌母细胞及分化肌管(V-4) 患者肌肉活检组织(家庭2 II-4) Fxr1 exon-15突变CRISPR小鼠(delACAG和dupA) Myf5-Cre;Fxr1条件敲除小鼠
delACAG小鼠体重较野生型降低(6、9、12周龄雌性分别−15.56%、−20.94%、−16.43%) delACAG小鼠肌纤维最小Feret直径较野生型降低41.56%(vastus lateralis) delACAG小鼠NADH-TR染色显示多发性核心病变,dupA小鼠罕见 delACAG小鼠P82,84蛋白主要位于非可溶性组分并形成环形颗粒 RNA-seq鉴定delACAG小鼠肌肉233个差异表达基因(150上调、83下调)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认患者表型及肌肉病理特征
对两个无关家系患者进行临床评估、肌肉活检H-E、Masson trichrome、ATPase pH4.3、TEM及肌肉MRI。
定位致病基因及突变
家系1采用纯合子定位和全外显子测序,家系2采用全外显子测序和Sanger测序验证;使用SNP-array、aCGH和MLPA排除SMN1/2缺失。
研究delACAG突变对FXR1P蛋白的影响
从V-4肌肉活检分离原代肌母细胞,分化5天形成肌管;WB分析可溶/不可溶组分,免疫荧光观察亚细胞定位。
在体内重现人类突变并比较不同突变严重程度
利用CRISPR-Cas9构建delACAG和dupA小鼠;进行体重、抓力、悬挂、转棒、MRI、DXA、X射线及肌肉组织学分析。
确定骨骼肌谱系中所有FXR1P异构体缺失是否导致新生儿死亡
将Fxr1cko/cko与Myf5-Cre+/−;Fxr1+/ko小鼠交配,统计P0-1新生鼠致死率和基因型;WB验证E18.5组织特异性缺失。
确定delACAG颗粒的组成及其与应激颗粒和P小体的区别
分离EDL肌纤维进行免疫荧光和RNA-FISH;用 arsenite 诱导应激颗粒,共染TIAR、FXR2P、RCK;在HeLa中转染EGFP:FXR1P-iso-e突变体。
揭示delACAG突变破坏的分子通路
对P15小鼠腓肠肌+比目鱼肌进行RNA-seq,筛选差异表达基因,GO/KEGG富集,并用qRT-PCR和WB验证候选基因。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 患者原代肌母细胞培养与分化 | 肌母细胞代数(4–7代)、分化培养基(Ham’s F10 + 2%马血清 + 1% P/S)及分化时间(5天) 阅读提示:Methods – Cell culture |
| CRISPR小鼠构建与表型分析 | 小鼠遗传背景(C57BL/6J)、突变类型(delACAG、dupA)、用于功能测试的性别和周龄(14周龄雌性) 阅读提示:Methods – Transgenic mice;Figure 3 legend;Figure 4 legend |
| 应激颗粒诱导与免疫荧光 | ARS浓度(0.5 mM)和处理时间(45分钟);一抗稀释比例及来源 阅读提示:Methods – Cell culture;Methods – Isolation of EDL fibers and confocal microscopy |
| RNA-FISH | Cy3-oligo(dT)30探针浓度(1 ng/µl)、杂交温度(37°C)和时间(2小时) 阅读提示:Methods – RNA-FISH |
| RNA-seq差异表达分析 | 样本量(3 vs 3)、小鼠周龄(P15)、差异基因筛选阈值(fold change ≥1.9或≤−1.9,FDR校正P≤0.05) 阅读提示:Methods – Transcriptomics;Figure 10 legend |
| qRT-PCR验证 | 内参基因(Tbp,部分实验用Gusb、β2M)、小鼠周龄(1.5月龄用于多数基因,2.5月龄用于Fxr1)、技术重复(三复孔) 阅读提示:Methods – qRT-PCR |