SETD2缺失扰乱肾癌表观遗传景观以促进转移,并产生对组蛋白伴侣复合物的可操作依赖性

SETD2 loss perturbs the kidney cancer epigenetic landscape to promote metastasis and engenders actionable dependencies on histone chaperone complexes

作者信息Yuchen Xie, Merve Sahin, Sonali Sinha, Yufeng Wang, Amrita M Nargund, Yang Lyu, Song Han, Yiyu Dong, James J Hsieh, Christina S Leslie, Emily H Cheng
PMID35115713
发布时间2022-02
DOI10.1038/s43018-021-00316-3

实验完整度

包含患者样本测序、细胞系体外实验、异种移植小鼠模型、多组学分析及功能验证,具有多层级证据。

主要模型

JHRCC12细胞系(SETD2突变转移性ccRCC患者来源) 小鼠肾包膜下原位异种移植模型 小鼠心内注射转移模型 CAKI-2细胞系(SETD2野生型ccRCC)

重点核对

SETD2突变状态及H3K36me3水平 H3K36me3恢复对转移的影响(原位和心内注射模型) MMP1表达及增强子活性 ASF1A/B和SUPT16H敲除对细胞凋亡的影响 CBL0137处理对肿瘤生长的影响(SETD2突变vs野生型PDX)

摘要

SETD2是一种H3K36三甲基转移酶,在透明细胞肾细胞癌(ccRCC)中具有高突变率(13%)。对原发ccRCC肿瘤的基因组分析显示SETD2突变与转移呈正相关。然而,SETD2缺失是否以及如何促进转移仍不清楚。在本研究中,我们使用了SETD2突变的转移性ccRCC患者来源细胞系和异种移植模型,并表明H3K36me3的恢复以MMP1依赖性方式大大减少了小鼠中ccRCC的远处转移。使用ATAC-seq、ChIP-seq和RNA-seq的综合多组学分析建立了一个肿瘤抑制模型,其中SETD2介导的H3K36me3缺失通过调节染色质可及性激活增强子以驱动致癌转录输出。此外,我们发现了针对SETD2缺陷癌症的基于机制的治疗策略,通过靶向特定的组蛋白伴侣复合物,包括ASF1A/B和SPT16。总的来说,SETD2缺失为协同致癌驱动因子放大转录输出创造了许可性表观遗传景观,提供了独特的治疗机会。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
SETD2缺失是否以及如何促进肾癌转移,并探索针对SETD2缺陷肿瘤的治疗策略。
核心机制
SETD2缺失导致H3K36me3减少,增加染色质可及性和增强子激活,上调MMP1等转移相关基因,同时增加组蛋白伴侣ASF1A/B的染色质招募,维持开放染色质状态,从而放大致癌转录输出。
主要证据
通过患者样本测序、细胞系体外实验、原位和心内注射小鼠模型、ATAC-seq/ChIP-seq/RNA-seq多组学分析,以及基因敲除和药物抑制实验,证实了SETD2缺失促进转移及对组蛋白伴侣的依赖性。
研究意义
揭示了SETD2作为肿瘤抑制因子的表观遗传机制,并为SETD2缺陷癌症(包括肾癌及其他癌症)提供了靶向组蛋白伴侣的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本测序分析

评估SETD2突变与ccRCC转移的相关性。

对90例原发和51例转移性ccRCC肿瘤进行靶向测序,另对286例原发肿瘤进行MSK-IMPACT分析,统计各基因突变率。

2

细胞系建立与H3K36me3恢复

确定SETD2ΔN能否恢复H3K36me3并用于功能研究。

在JHRCC12细胞中转导SETD2ΔN,通过免疫印迹验证H3K36me3恢复。

3

体内转移实验

检验H3K36me3恢复对ccRCC转移的影响。

将荧光素酶标记的JHRCC12细胞(对照或SETD2ΔN)注入NSG小鼠肾包膜下或心内,通过生物发光成像监测转移。

4

转录组和表观遗传分析

揭示SETD2缺失对转录组和染色质可及性的影响。

对JHRCC12细胞(对照或SETD2ΔN)进行RNA-seq、ATAC-seq和ChIP-seq(组蛋白修饰),并整合分析。

5

MMP1功能验证

验证MMP1是否为SETD2缺失促进转移的关键靶点。

通过CRISPR/Cas9敲除MMP1,检测对细胞增殖、原位肿瘤生长和转移的影响;通过报告基因和ChIP-qPCR验证增强子。

6

组蛋白伴侣功能研究

探究SETD2缺失是否影响组蛋白伴侣招募及细胞对组蛋白伴侣抑制的敏感性。

通过免疫印迹检测ASF1A/B和SPT16的染色质结合;通过CRISPR敲除或药物抑制,检测细胞凋亡。

7

PDX模型治疗实验

评估CBL0137对SETD2突变和野生型ccRCC的体内疗效。

在NSG小鼠中建立多种PDX模型,给予CBL0137或对照,监测肿瘤生长。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
高级DMEM/F12培养基Thermo Fisher Scientific--
Liberase酶Sigma--
表皮生长因子R & D Systems--
氢化可的松Sigma--
胰岛素-转铁蛋白-硒Thermo Fisher Scientific--
膜联蛋白VBioVision--
抗H3K36me3抗体Abcamab9050
抗CA-IX抗体Novus BiologicalsNB100-417
pBABE-puro载体Addgene--
lentiCRISPRv2载体Addgene--
LRG载体Addgene--
dCas9-KRAB-MeCP2质粒Addgene--
Trizol试剂Thermo Fisher Scientific--
Superscript II逆转录酶Thermo Fisher Scientific--
SYBR green预混液Thermo Fisher Scientific--
ViiA 7实时荧光定量PCR系统Thermo Fisher Scientific--
BCA蛋白定量试剂盒Pierce--
蛋白酶抑制剂Roche--
NuPAGE凝胶Thermo Fisher Scientific--
PVDF膜Immobilon-P, Millipore--
增强化学发光试剂PerkinElmer--
LAS-3000成像系统FUJIFILM--
抗SETD2抗体SigmaHPA042451
抗H3K4me3抗体Abcamab8580
抗H3K9me3抗体Abcamab8898
抗H3K27me3抗体Cell Signaling Technology9733
抗H3K27ac抗体Abcamab4729
抗H3K36me3抗体Abcamab9050
抗H3抗体Cell Signaling Technology14269
抗ASF1A抗体Cell Signaling Technology2990S
抗ASF1B抗体Cell Signaling Technology2902S
抗SPT16抗体Cell Signaling Technology12191
抗MMP1抗体Proteintech10371-2-AP
抗Actin抗体SigmaA1978
抗Tubulin抗体MilliporeMAB1637
抗BCL-2抗体文中未明确说明6C8
抗BCL-XL抗体Cell Signaling Technology2762
抗MCL-1抗体Santa Cruz Biotechnologysc-819
抗BAK抗体Cell Signaling Technology12105
抗BAX抗体Santa Cruz Biotechnologysc-493
抗BIM抗体Covance--
抗PUMA抗体Cell Signaling Technology12450S
抗NOXA抗体Thermo Fisher ScientificMA1-41000
pGL2-Promoter载体Promega--
pRL-SV40载体Promega--
Lipofectamine 2000转染试剂Thermo Fisher Scientific--
双荧光素酶报告基因检测系统Promega--
MinElute PCR纯化试剂盒Qiagen--
AMPure磁珠Beckman Coulter--
RNeasy Mini试剂盒Qiagen--
SMART-seq V4超低起始量RNA试剂盒Clontech--
Kapa DNA文库制备试剂Kapa Biosystems--
HiSeq 2500测序仪Illumina--
HiSeq 4000测序仪Illumina--
D-荧光素Xenogen--
IVIS成像系统Xenogen--
Living Image软件Xenogen--
FastPrep-24匀浆器MP Biomedicals--
FACSDiva软件BD Biosciences--
LSRFortessa流式细胞仪BD Biosciences--
CBL0137Selleck Chemicals--
CCS1477文中未明确说明--
磁珠Thermo Fisher Scientific--
抗H3K4me1抗体Abcamab8895
抗H3K56ac抗体Millipore07-677
兔IgGAbcamab171870

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞系培养
细胞系来源和培养条件(如JHRCC12、CAKI-2、786-O)
阅读提示:Methods:Cell culture and viability assay
H3K36me3恢复实验
SETD2ΔN载体构建和转导效率
阅读提示:Methods:Plasmid construction and CRISPR/Cas9-mediated genome editing;Results:Fig. 1b
原位肾包膜下注射
细胞接种数量(1×10^5)、小鼠品系(NSG)、观察时间(5-6周)
阅读提示:Methods:Mice and in vivo procedures;Results:Fig. 1c
心内注射模型
细胞数量(1×10^5)、注射途径(左心室)、小鼠品系(裸鼠)
阅读提示:Methods:Mice and in vivo procedures;Results:Fig. 1e
MMP1敲除实验
sgRNA序列、敲除验证方法
阅读提示:Methods:Plasmid construction and CRISPR/Cas9-mediated genome editing;Results:Fig. 4h-j
组蛋白伴侣敲除实验
sgRNA靶标(ASF1A、ASF1B、SUPT16H)、细胞凋亡检测方法
阅读提示:Methods:Cell culture and viability assay;Results:Fig. 5f-i
PDX治疗实验
PDX模型选择(JHRCC12、JHX3、JHX491、JHRCC228)、CBL0137剂量(60 mg/kg)和给药频率(每周两次)
阅读提示:Methods:Mice and in vivo procedures;Results:Fig. 6d-e
ATAC-seq
细胞数量(50,000)、Tn5转座酶处理条件(37°C 30分钟)、PCR循环数
阅读提示:Methods:ATAC-seq and analysis
ChIP-seq
抗体选择(组蛋白修饰特异性抗体)、染色质片段化条件
阅读提示:Methods:ChIP-seq and analysis
RNA-seq
RNA提取方法、文库制备试剂盒(SMART-seq V4)、测序深度
阅读提示:Methods:RNA-seq and analysis