IDH1(R132H)突变增加小鼠造血祖细胞并改变表观遗传学

IDH1(R132H) mutation increases murine haematopoietic progenitors and alters epigenetics.

作者信息Masato Sasaki, Christiane B Knobbe, Joshua C Munger, Evan F Lind, Dirk Brenner, Anne Brüstle, Isaac S Harris, Roxanne Holmes, Andrew Wakeham, Jillian Haight, Annick You-Ten, Wanda Y Li, Stefanie Schalm, Shinsan M Su, Carl Virtanen, Guido Reifenberger, Pamela S Ohashi, Dwayne L Barber, Maria E Figueroa, Ari Melnick, Juan-Carlos Zúñiga-Pflücker, Tak W Mak
PMID22763442
期刊Nature
发布时间2012-08-30
DOI10.1038/nature11323

实验完整度

高

包含条件敲入小鼠模型、体外分化、骨髓移植、流式分析、DNA甲基化和组蛋白修饰检测等多层级功能与机制验证

主要模型

LysM-KI小鼠(髓系特异性表达IDH1(R132H)) Vav-KI小鼠(全造血细胞表达IDH1(R132H)) IDH1(R132H)-KI胚胎干细胞

重点核对

LysM-KI小鼠基因型:Idh1LSL/WT LysMCre+/WT,对照为野生型或单杂合子 血清2HG水平:年轻(7–16周)和老年(47–56周)LysM-KI小鼠升高约10倍 流式细胞术分析骨髓和脾脏中LSK、LRP等HSC/HPC群体 竞争性骨髓移植:供体105个CD45.2+细胞与竞争细胞105个CD45.1+细胞共注射入致死剂量(10.5 Gy)照射受体 DNA甲基化测序:年轻LysM-KI(n=3)和对照(n=2)分选LSK细胞

摘要

编码异柠檬酸脱氢酶的IDH1和IDH2基因突变频繁出现在人胶质母细胞瘤和细胞遗传学正常的急性髓系白血病(AML)中。这些变异是功能获得性突变,驱动“致癌代谢物”R-2-羟基戊二酸(2HG)的合成。目前尚不清楚IDH1和IDH2突变如何改变髓系细胞发育并促进白血病发生。在此我们报道了条件性敲入(KI)小鼠的鉴定,其中最常见的IDH1突变IDH1(R132H)被插入到内源性小鼠Idh1基因座,并在所有造血细胞(Vav-KI小鼠)或特异性地在髓系谱系细胞(LysM-KI小鼠)中表达。这些突变体显示早期造血祖细胞数量增加,并发生脾肿大和贫血伴髓外造血,提示骨髓龛功能异常。此外,LysM-KI细胞具有高甲基化组蛋白和DNA甲基化改变,类似于在人IDH1或IDH2突变AML中观察到的变化。据我们所知,我们的研究首次描述了条件性IDH1(R132H)-KI小鼠的生成和鉴定,也是首次报道在小鼠模型中诱导白血病DNA甲基化特征。因此,我们的报告揭示了IDH1突变与人AML之间的机制联系。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
IDH1(R132H)突变如何改变髓系细胞发育并促进白血病发生?
核心机制
IDH1(R132H)突变产生2HG,导致DNA和组蛋白高甲基化,进而影响LSK细胞分裂和/或分化,引起早期造血祖细胞积累。
主要证据
条件性LysM-KI和Vav-KI小鼠显示LSK和LRP细胞年龄依赖性增加、脾肿大和贫血;LysM-KI细胞DNA甲基化模式与人类IDH1/IDH2突变AML相似,组蛋白H3赖氨酸残基甲基化增加。
研究意义
首次构建条件性IDH1(R132H)敲入小鼠并证明可在小鼠模型中诱导白血病DNA甲基化特征,揭示了IDH1突变与人AML之间的机制联系。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

条件性IDH1(R132H)敲入小鼠的构建

建立可在特定造血细胞中表达IDH1(R132H)的小鼠模型

使用LSL系统构建Idh1LSL/WT小鼠,与LysMCre或VavCre小鼠杂交获得LysM-KI和Vav-KI小鼠;通过PCR和Southern blot验证基因型。

2

造血祖细胞群体分析

评估IDH1(R132H)对造血干/祖细胞区室的影响

流式细胞术分析骨髓和脾脏中Lin−、LSK、LK、LRP、HSC等群体;集落形成细胞(CFC)实验和连续铺板实验。

3

骨髓移植实验

评估LysM-KI造血干细胞的再增殖能力

竞争性骨髓移植:供体CD45.2+骨髓细胞与竞争CD45.1+细胞共注射入致死照射受体,追踪外周血细胞。

4

代谢物和ROS检测

验证2HG水平及ROS、NADPH等代谢物变化

LC-MS检测血清、CD11b+细胞和BMDM中2HG、NAD+、NADH、NADP+、NADPH;流式检测CM-H2DCFDA标记的ROS。

5

DNA甲基化分析

检测LysM-KI LSK细胞的DNA甲基化改变

分选LSK细胞,提取gDNA,进行ERRBS测序,比较对照与KI细胞的CpG甲基化差异,并与人类IDH1/IDH2突变AML数据比较。

6

组蛋白甲基化分析

检测LysM-KI BMDM中组蛋白H3赖氨酸残基甲基化水平

从年轻对照和LysM-KI小鼠骨髓分化BMDM,免疫印迹检测H3K4me3、H3K9me3、H3K27me3、H3K36me3、H3K79me2和总H3。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Lipofectamine2000Invitrogen--
BD CantoII流式细胞仪BD Biosciences--
BD FACSAria细胞分选仪BD Biosciences--
FlowJo软件TreeStar--
M3434完全甲基纤维素培养基Stem Cell TechnologiesM3434
巨噬细胞集落刺激因子----
抗组蛋白H3抗体Abcamab10799
抗组蛋白H3K4me3抗体Millipore07-473
抗组蛋白H3K9me3抗体Abcamab8898
抗组蛋白H3K27me3抗体Millipore07-449
抗组蛋白H3K36me3抗体Abcamab9050
抗组蛋白H3K79me2抗体Cell Signaling Technology9757
Puregene DNA提取试剂盒Qiagen--
EZ DNA甲基化试剂盒Zymo Research--
Illumina Genome Analyzer II测序仪Illumina--
HiSeq2000测序仪Illumina--
小鼠WG-6 V2.0 BeadChip芯片Illumina--
iScan扫描仪Illumina--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小鼠模型构建与基因型
LysM-KI小鼠为Idh1LSL/WT LysMCre+/WT;Vav-KI小鼠为Idh1LSL/WT VavCre+/WT;对照为野生型或单杂合子,遗传背景为C57BL/6J(至少回交10代)
阅读提示:Methods中“Generation of LSL-Idh1R132H mice and breeding”小节
造血祖细胞流式分析
小鼠年龄分组(年轻7–16周,老年42–56周);每组样本量(n=3–14);LSK、LRP等群体的设门策略
阅读提示:Methods中“Flow cytometric analyses”及Figure 1、2图注
竞争性骨髓移植
供体细胞数10^5,竞争细胞数10^5,受体照射剂量10.5 Gy,观察时间至少170天,CD45.1/CD45.2标记
阅读提示:Methods中“Bone marrow competitive repopulation experiments”
DNA甲基化测序
LysM-KI LSK细胞n=3,对照n=2,小鼠年龄7–15周,ERRBS方法及测序深度要求(至少10×覆盖)
阅读提示:Methods中“DNA methylation analysis”和“Primary data analysis”
组蛋白甲基化免疫印迹
BMDM分化使用M-CSF 50 ng/ml培养5天;抗体货号及稀释比例(文中未明确说明稀释比例)
阅读提示:Methods中“Generation of bone marrow-derived macrophages (BMDMs)”和“Immunoblot analysis”