建立巨噬细胞特异性RhoA敲除小鼠模型
验证Lyz2Cre+/−; RhoAflox/flox (cKO)小鼠中RhoA在巨噬细胞中的特异性敲除。
将RhoAflox/flox小鼠与Lyz2Cre小鼠杂交,获得cKO小鼠;通过免疫荧光和Western blotting检测损伤神经和培养巨噬细胞中RhoA的表达。
Macrophage-specific RhoA knockout delays Wallerian degeneration after peripheral nerve injury in mice
包含巨噬细胞特异性基因敲除小鼠模型、体内外功能验证(迁移和吞噬)、分子通路验证(Western blotting、抑制剂实验)及神经再生功能评估(电生理、组织学)等多个独立证据层级。
Lyz2Cre+/−; RhoAflox/flox (cKO)小鼠 坐骨神经横切损伤模型 坐骨神经挤压损伤模型 骨髓来源巨噬细胞
巨噬细胞特异性RhoA敲除的确认(F4/80和RhoA免疫荧光共染、Western blotting) 体内华勒氏变性评估:NF200和P0蛋白表达及轴突/髓鞘碎片长度(3和7 dpi) 体内巨噬细胞迁移评估:F4/80免疫组化计数不同时间点(0-28 dpi)的巨噬细胞数量 体外吞噬评估:荧光微球和髓鞘碎片吞噬实验(1×10^5细胞/孔,0.1 mg/mL lumispheres 3 h,1 mg/mL myelin debris 24 h) 机制验证:ROCK和MLCK表达检测及Y27632和ML7抑制剂处理
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证Lyz2Cre+/−; RhoAflox/flox (cKO)小鼠中RhoA在巨噬细胞中的特异性敲除。
将RhoAflox/flox小鼠与Lyz2Cre小鼠杂交,获得cKO小鼠;通过免疫荧光和Western blotting检测损伤神经和培养巨噬细胞中RhoA的表达。
检测巨噬细胞RhoA敲除对轴突和髓鞘碎片清除的影响。
建立坐骨神经横切损伤模型,于3和7 dpi收集远端神经段,进行Western blotting(NF200、P0)和免疫组化染色,量化轴突和髓鞘碎片长度。
检测巨噬细胞RhoA敲除对轴突再生和功能恢复的影响。
建立坐骨神经挤压损伤模型,观察3 dpi时GAP43蛋白水平和轴突生长长度;28 dpi时评估腓肠肌湿重、肌纤维面积和CMAP。
验证RhoA敲除对巨噬细胞迁移和吞噬能力的影响。
通过F4/80免疫组化计数不同时间点损伤神经中的巨噬细胞;体外Transwell实验检测迁移,荧光微球和髓鞘碎片吞噬实验检测吞噬。
探究RhoA调控巨噬细胞迁移和吞噬的下游机制。
检测cKO和Cre巨噬细胞中ROCK和MLCK的蛋白表达;使用ROCK抑制剂Y27632和MLCK抑制剂ML7处理野生型巨噬细胞,观察迁移和吞噬功能变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | B6.129P2-Lyz2tm1(cre)Ifo/J小鼠 | 上海模式动物中心 | -- |
| RhoAflox/flox小鼠 | Cyagen | -- | |
| 三溴乙醇 | -- | -- | |
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | Gibco | 11330057 |
| 胎牛血清 | Sigma | F8318 | |
| 青霉素/链霉素 | Gibco | 15140122 | |
| 巨噬细胞集落刺激因子 | R&D | 416-ML-010 | |
| 药物处理 | Y27632 | Selleck | S1049 |
| ML7 | Abcam | AB120848 | |
| 髓鞘碎片制备 | Hank's平衡盐溶液 | Gibco | C14175500BT |
| 吞噬实验 | 荧光微球 | BaseLine Chromtech | 7-3-0100 |
| 抗F4/80抗体 | Abcam | ab6640 | |
| 油红O | Solarbio | G1262 | |
| 抗MBP抗体 | Biolegend | SMI-99 | |
| 迁移实验 | Transwell小室 | Corning Costar | 3422 |
| 结晶紫 | Leagene | DZ0055 | |
| 冰冻切片和免疫组化 | OCT包埋剂 | Sakura | 4583 |
| 免疫组化 | Triton X-100 | Sigma | X100 |
| 鱼明胶 | Sigma | G7041 | |
| DAPI | Sigma | D8417 | |
| 抗NF200抗体 | Sigma | N4142 | |
| 抗P0抗体 | Millipore | ABN363 | |
| 抗GAP43抗体 | Abcam | ab16053 | |
| 抗RhoA抗体 | Santa Cruz | sc-418 | |
| Alexa 568偶联山羊抗兔二抗 | Invitrogen | A-11011 | |
| Alexa 488偶联山羊抗兔二抗 | Invitrogen | A-11008 | |
| Alexa 488偶联山羊抗小鼠二抗 | Invitrogen | A-11001 | |
| Alexa 568偶联山羊抗小鼠二抗 | Invitrogen | A-11004 | |
| Alexa 488偶联山羊抗大鼠二抗 | Invitrogen | A-11006 | |
| Alexa 568偶联山羊抗大鼠二抗 | Invitrogen | A-11077 | |
| Western blotting | RIPA裂解液 | Fdbio science | FD009 |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Fdbio | FD1001 | |
| SDS-PAGE上样缓冲液 | Fdbio science | FD006 | |
| PVDF膜 | Millipore | IPVH0010 | |
| 抗GAPDH抗体 | Abcam | ab8245 | |
| 抗ROCK2抗体 | Abcam | ab125025 | |
| 抗MLCK抗体 | Abcepta | AP7966A | |
| 山羊抗大鼠IgG二抗 | Invitrogen | 31471 | |
| 山羊抗兔IgG二抗 | Invitrogen | 31460 | |
| 山羊抗小鼠IgG二抗 | Invitrogen | 32430 | |
| 增强化学发光试剂 | Millipore | -- | |
| Lumazone成像系统 | Roper | -- | |
| 电生理检测 | Axon Digidata 1550数字转换器 | Molecular Devices | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系、年龄、性别;手术方式(横切或挤压);损伤位置(坐骨切迹远端0.3 cm);麻醉方式及剂量;镇痛药物及剂量 阅读提示:Methods: Animals, Animal surgery |
| 巨噬细胞培养和处理 | 骨髓细胞来源;培养时间(7天);MCSF浓度;Y27632和ML7浓度及处理时间 阅读提示:Methods: Culture of bone marrow-derived macrophages and pharmacological treatment |
| 迁移和吞噬实验 | Transwell孔径和预处理;细胞数量;迁移时间;吞噬物类型和浓度;孵育时间 阅读提示:Methods: Phagocytic capability assay, Migration assay |
| 华勒氏变性评估 | 损伤后时间点(3、7 dpi);NF200和P0检测;轴突和髓鞘碎片长度量化方法 阅读提示:Results: Macrophage-specific RhoA depletion retards Wallerian degeneration in the injured nerve |
| 神经再生和功能恢复评估 | GAP43蛋白水平;轴突再生长度;腓肠肌湿重;肌纤维面积;电生理参数(振幅、潜伏期) 阅读提示:Results: Macrophage-specific RhoA depletion attenuates nerve regeneration after nerve injury |